Когда HS клетки были протестированы в серии трансплантационных экспериментов, то полное восстановление крови происходило в течение несколдьки периодов жизни у мышей
, a старые HS клетки были столь же эффективны, как и молодые HS в восстановлении ростков крови после трансплантаций
. Кроме того, размер индивидуальных клонов стволовых клеток у реципиентов, получавших одиночную competitive-repopulation единицу, не зависел от возраста
. Однако, старые HS клетки, по-видимому, были менее эффективны в возвращении и прививке
, указывая тем самым, что внутренне присущее старение HS клеток может быть выявлено при такого типа анализе. Степень прирожденного старения HS клеток также, по-видимому, зависит от линии
. Эти внутренне присущие клеткам изменения могут быть эпигенетическими, т.к. они могут быть восстановлены, когда клетки помещаются в соответствующие условия
. При этом подходе клетки разных генетических фонов отвечали по-разному, подчеркивая тем самым важность генетического влияния на процесс старения. Недавно прямой молекулярный анализ очищенных HS клеток выявил различия в генной экспрессии между клетками от молодых и старых мышей
. Интересно, что изменения в специфических генах коррелировали с отмеченным отклонением клонального потенциала старых HS клеток
. Было бы интересно протестировать, являются ли эти внутренне присущие изменения также обратимыми и зависят ли от среды, в которой они располагаются.
Первичные скелетно-мышечные стволовые клетки (сателлитные клетки) являются молчащими во взрослых мышцах, но они активируются к пролиферации и генерируют предетерминированное потомство в ответ на повреждение или болезнь53. Подсчеты количеств саталлитных клеток с возрастом варьируют в зависимости от использованного метода, колеблясь в пределах от легкого увеличения, как в случае HS клеток, до минимальных изменений55 или уменьшения54,56. Однако, существует значительное ухудшение регенеративного потенциала с возрастом, чем может бы предположить исходя из любого снижения в количестве57. Это связанное с возрастом снижение регенеративного потенциала приписывается ухудшению в старых мышцах пути передачи сигналов Notch, который существенен для нормальной активации сателлитных клеток у молодых животных55.
Первоначальные
in vitro исследования сателлитных клеток от молодых и старых животных подтвердили внутренне присущее старение этой популяции стволовых клеток , т.к. старые клетки генерировали значительно меньше потомства
58,59. Однако, эта интерпретация не соответствовала находкам, что регенерация, обеспечиваемая старыми сателлитными клетками была высоко эффективной, когда клетки трансплантировали в молодых животных в виде трансплантатов целых мышц
30. Фактически, результаты были неотличимы от регенерации, обусловленной трансплантацией молодых мышц. Эти данные подтверждают обратимость эпигенетических модификаций стволовых клеток старых мышц, эта интерпретация была подтверждена недавними данными, показавшими, что стволовые клетки старых мышц, будучи экспозированными молодой системной средой с помощью действительно парабиотического соединения старых и молодых мышей, активируют и репарируют мышцы почти также хорошо, как и молодые сателлитные клетки
31. Т.о., кажется, что уменьшение регенеративного потенциала старых мышц не обусловлено в первую очередь прирожденным старением сателлитных клеток, а скорее эффектами стареющей среды на функцию сателлитных клеток. Исследования генной экспрессии клеток, произошедших из сателлитных клеток, выявили изменения с возрастом
60. Однако, как и в случае HS клеток, осталось неясно, обусловлены ли эти изменения транскрипционных профилей необратимыми генетическими изменениями или обратимыми эпигенетическими эффектами.
Fantasies and realities concerning stem-cell therapeutics
Регенеративная медицина д. использовать или улучшение эндогенных стволовых клеток или трансплантации экзогенных стволовых клеток, которые размножаются в культуре. Трансплантации экзогенных стволовых клеток в поврежденную ткань д. бы формально базироваться на принципах трансплантационной биологии и иммунологии. Однако, высокая оценка важности ниш, особенно старых ниш, может быть критической для успешности трансплантаций стволовых клеток для усиления тканевой репарации при ряде острых повреждений. Важность среды хозяина становится ещё сложнее, если учитывать использование стволовых клеток для лечения хронических дегенеративных заболеваний.
Несмотря на исторические вопросы по бессмертию и продолжающийся интерес к удлинению продолжительности жизни людей61, использование 'therapeutics' стволовыми клетками для задержки самого процесса старения является даже более далеким. Учитывая универсальность процесса старения и выраженное влияние системной среды на клетки внутри тканей, теоретическая база такого использования неясна. Любая трансплантация от животных к человеку для увеличения продолжительности жизни возникнет скорее всего из понимания системной координации и регуляции метаболической активности клеток и клеточной защиты, так как любое увеличение продолжительности жизни д. происходить за определенную цену.
Тем не менее потенциал стволовых клеток может быть использован как терапевтическое средство в будущей регенеративной медицине. Супрессия пролиферации стволовых клеток взрослых с помощью системной среди у старых животных, хотя она и ограничивает регенеративный потенциал ткани и возможно способствует старению или апоптозу, может быть критической защитой от развития рака, склонность к которому увеличивается с накоплением мутаций в геноме стволовых клеток с возрастом. Терапевтическое использование стволовых клеток взрослых для репарации взрослых тканей в контексте регенеративной медицины нуждается в повышении знания биологии стволовых клеток, среды старых тканей и взаимодействия между этими двумя.
1.Phelan, J. P. & Austad, S. N. Natural selection, dietary restriction, and extended longevity. Growth Dev. Aging 53, 4–6 (1989). | PubMed | ISI
2.Kirkwood, T. B. Understanding the odd science of aging. Cell 120, 437–447 (2005). | Article | PubMed | ISI |
3.Medawar, P. B. An Unsolved Problem of Biology (H. K. Lewis, London, 1952).
4.Williams, G. C. Pleiotropy, natural selection, and the evolution of senescence. Evolution 11, 398–411 (1957). | Article |
5.Leroi, A. M. et al. What evidence is there for the existence of individual genes with antagonistic pleiotropic effects? Mech. Ageing Dev. 126, 421–429 (2005). | Article | PubMed |
6.Hayflick, L. How and Why We Age (Ballantine Books, New York, 1994).
Friedman, D. B. & Johnson, T. E. A mutation in the age-1 gene in Caenorhabditis elegans lengthens life and reduces hermaphrodite fertility. Genetics 118, 75–86 (1988). | PubMed | ISI |
7.Kenyon, C. , Chang, J. , Gensch, E. , Rudner, A. & Tabtiang, R. A C. elegans mutant that lives twice as long as wild type. Nature 366, 461–464 (1993). | Article | PubMed | ISI |
8.Tissenbaum, H. A. & Guarente, L. Increased dosage of a sir-2 gene extends lifespan in Caenorhabditis elegans. Nature 410, 227–230 (2001). | Article | PubMed | ISI |
9.Clancy, D. J. et al. Extension of life-span by loss of CHICO, a Drosophila insulin receptor substrate protein. Science 292, 104–106 (2001). | Article | PubMed | ISI |
10.Tatar, M. et al. A mutant Drosophila insulin receptor homolog that extends life-span and impairs neuroendocrine function. Science 292, 107–110 (2001). | Article | PubMed | ISI |
11.Flurkey, K. , Papaconstantinou, J. , Miller, R. A. & Harrison, D. E. Lifespan extension and delayed immune and collagen aging in mutant mice with defects in growth hormone production. Proc. Natl Acad. Sci. USA 98, 6736–6741 (2001). | Article | PubMed |
12.Ikeno, Y. , Bronson, R. T. , Hubbard, G. B. , Lee, S. & Bartke, A. Delayed occurrence of fatal neoplastic diseases in ames dwarf mice: correlation to extended longevity. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 58, 291–296 (2003). | PubMed |
13.Kirkwood, T. B. Evolution of ageing. Nature 270, 301–304 (1977). | Article | PubMed | ISI |
14.Partridge, L. , Gems, D. & Withers, D. J. Sex and death: what is the connection? Cell 120, 461–472 (2005). | Article | PubMed |
15.Migliaccio, E. et al. The p66shc adaptor protein controls oxidative stress response and life span in mammals. Nature 402, 309–313 (1999). | Article | PubMed | ISI |
16.Thorndyke, M. C. , Chen, W. C. , Beesley, P. W. & Patruno, M. Molecular approach to echinoderm regeneration. Microsc. Res. Tech. 55, 474–485 (2001). | Article | PubMed |
17.Brockes, J. P. & Kumar, A. Appendage regeneration in adult vertebrates and implications for regenerative medicine. Science 310, 1919–1923 (2005). | Article | PubMed |
18.Holstein, T. W. , Hobmayer, E. & Technau, U. Cnidarians: an evolutionarily conserved model system for regeneration? Dev. Dyn. 226, 257–267 (2003). | Article | PubMed |
19.Reddien, P. W. , Bermange, A. L. , Murfitt, K. J. , Jennings, J. R. & Sanchez, A. A. Identification of genes needed for regeneration, stem cell function, and tissue homeostasis by systematic gene perturbation in planaria. Dev. Cell 8, 635–649 (2005). | Article | PubMed | ISI |
20.Enver, T. et al. Cellular differentiation hierarchies in normal and culture-adapted human embryonic stem cells. Hum. Mol. Genet. 14, 3129–3140 (2005). | Article | PubMed | ISI |
21.Park, Y. & Gerson, S. L. DNA repair defects in stem cell function and aging. Annu. Rev. Med. 56, 495–508 (2005). | Article | PubMed |
Keller, G. Embryonic stem cell differentiation: emergence of a new era in biology and medicine. Genes Dev. 19, 1129–1155 (2005). | Article | PubMed | ISI |
22.Reya, T. , Morrison, S. J. , Clarke, M. F. & Weissman, I. L. Stem cells, cancer, and cancer stem cells. Nature 414, 105–111 (2001). | Article | PubMed | ISI |
23.Lombard, D. B. et al. DNA repair, genome stability, and aging. Cell 120, 497–512 (2005). | Article | PubMed | ISI |
24.Xie, T. & Spradling, A. C. A niche maintaining germ line stem cells in the Drosophila ovary. Science 290, 328–330 (2000). | Article | PubMed | ISI |
25.Kiger, A. A. , Jones, D. L. , Schulz, C. , Rogers, M. B. & Fuller, M. T. Stem cell self-renewal specified by JAK–STAT activation in response to a support cell cue. Science 294, 2542–2545 (2001). | Article | PubMed | ISI |
26.Harrison, D. E. , Astle, C. M. & Doubleday, J. W. Cell lines from old immunodeficient donors give normal responses in young recipients. J. Immunol. 118, 1223–1227 (1977). | PubMed |
27.Hotta, T. , Hirabayashi, N. , Utsumi, M. , Murate, T. & Yamada, H. Age-related changes in the function of hemopoietic stroma in mice. Exp. Hematol. 8, 933–936 (1980). | PubMed | ISI |
28.Carlson, B. M. & Faulkner, J. A. Muscle transplantation between young and old rats: age of host determines recovery. Am. J. Physiol. 256, C1262–C1266 (1989). | PubMed | ISI |
29.Conboy, I. M. et al. Rejuvenation of aged progenitor cells by exposure to a young systemic environment. Nature 433, 760–764 (2005). | Article | PubMed |
30.Van Zant, G. & Liang, Y. The role of stem cells in aging. Exp. Hematol. 31, 659–672 (2003). | Article | PubMed |
31.Snyder, E. Y. & Loring, J. F. A role for stem cell biology in the physiological and pathological aspects of aging. J. Am. Geriatr. Soc. 53, S287–S291 (2005). | Article | PubMed |
32.Lin, S. J. , Defossez, P. A. & Guarente, L. Requirement of NAD and SIR2 for life-span extension by calorie restriction in Saccharomyces cerevisiae. Science 289, 2126–2128 (2000). | Article | PubMed | ISI |
33.Klass, M. R. Aging in the nematode Caenorhabditis elegans: major biological and environmental factors influencing life span. Mech. Ageing Dev. 6, 413–429 (1977). | Article | PubMed | ISI |
34.Chapman, T. & Partridge, L. Female fitness in Drosophila melanogaster: an interaction between the effect of nutrition and of encounter rate with males. Proc. Biol. Sci. 263, 755–759 (1996). | PubMed |
35.Weindruch, R. , Walford, R. L. , Fligiel, S. & Guthrie, D. The retardation of aging in mice by dietary restriction: longevity, cancer, immunity and lifetime energy intake. J. Nutr. 116, 641–654 (1986). | PubMed | ISI |
36.Hornsby, P. J. Cellular senescence and tissue aging in vivo. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 57, B251–B256 (2002). | PubMed | ISI |
37.Rubin, H. The disparity between human cell senescence in vitro and lifelong replication in vivo. Nature Biotechnol. 20, 675–681 (2002). | Article |
38. Parrinello, S. , Coppe, J. P. , Krtolica, A. & Campisi, J. Stromal–epithelial interactions in aging and cancer: senescent fibroblasts alter epithelial cell differentiation. J. Cell Sci. 118, 485–496 (2005). | Article | PubMed | ISI |
39.Gomez, C. R. , Boehmer, E. D. & Kovacs, E. J. The aging innate immune system. Curr. Opin. Immunol. 17, 457–462 (2005). | PubMed |
40.Carmel, R. Anemia and aging: an overview of clinical, diagnostic and biological issues. Blood Rev. 15, 9–18 (2001). | Article | PubMed |
41.Sudo, K. , Ema, H. , Morita, Y. & Nakauchi, H. Age-associated characteristics of murine hematopoietic stem cells. J. Exp. Med. 192, 1273–1280 (2000). | Article | PubMed | ISI |
42.Morrison, S. J. , Wandycz, A. M. , Akashi, K. , Globerson, A. & Weissman, I. L. The aging of hematopoietic stem cells. Nature Med. 2, 1011–1016 (1996). | Article |
43. Harrison, D. E. & Astle, C. M. Loss of stem cell repopulating ability upon transplantation. Effects of donor age, cell number, and transplantation procedure. J. Exp. Med. 156, 1767–1779 (1982). | Article | PubMed | ISI |
44.Harrison, D. E. Long-term erythropoietic repopulating ability of old, young, and fetal stem cells. J. Exp. Med. 157, 1496–1504 (1983). | Article | PubMed | ISI |
45.Ogden, D. A. & Micklem, H. S. The fate of serially transplanted bone marrow cell populations from young and old donors. Transplantation 22, 287–293 (1976). | PubMed | ISI |
46.Liang, Y. , Van Zant, G. & Szilvassy, S. J. Effects of aging on the homing and engraftment of murine hematopoietic stem and progenitor cells. Blood 106, 1479–1487 (2005). | Article | PubMed |
47.Chen, J. , Astle, C. M. & Harrison, D. E. Genetic regulation of primitive hematopoietic stem cell senescence. Exp. Hematol. 28, 442–450 (2000). | Article | PubMed | ISI |
48.Van Zant, G. , Scott-Micus, K. , Thompson, B. P. , Fleischman, R. A. & Perkins, S. Stem cell quiescence/activation is reversible by serial transplantation and is independent of stromal cell genotype in mouse aggregation chimeras. Exp. Hematol. 20, 470–475 (1992). | PubMed |
49.Rossi, D. J. et al. Cell intrinsic alterations underlie hematopoietic stem cell aging. Proc. Natl Acad. Sci. USA 102, 9194–9199 (2005). | Article | PubMed |
50.Linton, P. J. & Dorshkind, K. Age-related changes in lymphocyte development and function. Nature Immunol. 5, 133–139 (2004). | Article |
51.Charge, S. B. & Rudnicki, M. A. Cellular and molecular regulation of muscle regeneration. Physiol. Rev. 84, 209–238 (2004). | Article |
52.Gibson, M. C. & Schultz, E. Age-related differences in absolute numbers of skeletal muscle satellite cells. Muscle Nerve 6, 574–580 (1983). | Article | PubMed |
53.Conboy, I. M. , Conboy, M. J. , Smythe, G. M. & Rando, T. A. Notch-mediated restoration of regenerative potential to aged muscle. Science 302, 1575–1577 (2003). | Article | PubMed | ISI |
54.Brack, A. S. , Bildsoe, H. & Hughes, S. M. Evidence that satellite cell decrement contributes to preferential decline in nuclear number from large fibres during murine age-related muscle atrophy. J. Cell Sci. 118, 4813–4821 (2005). | Article | PubMed |
55.Conboy, I. M. & Rando, T. A. Aging, stem cells and tissue regeneration: lessons from muscle. Cell Cycle 4, 407–410 (2005). | PubMed |
56.Schultz, E. & Lipton, B. H. Skeletal muscle satellite cells: changes in proliferation potential as a function of age. Mech. Ageing Dev. 20, 377–383 (1982). | Article | PubMed | ISI |
57.Bockhold, K. J. , Rosenblatt, J. D. & Partridge, T. A. Aging normal and dystrophic mouse muscle: analysis of myogenicity in cultures of living single fibers. Muscle Nerve 21, 173–183 (1998). | Article | PubMed |
58.Bortoli, S. et al. Gene expression profiling of human satellite cells during muscular aging using cDNA arrays. Gene 321, 145–154 (2003). | Article | PubMed |
59.de Grey, A. A strategy for postponing aging indefinitely. Stud. Health Technol. Inform. 118, 209–219 (2005). | PubMed |
60.Fabrizio, P. et al. Sir2 blocks extreme life-span extension. Cell 123, 655–667 (2005). | Article | PubMed |
61.Morgan, J. E. & Partridge, T. A. Muscle satellite cells. Int. J. Biochem. Cell Biol. 35, 1151–1156 (2003). | Article | PubMed | ISI |
62.Sigal, S. H. , Brill, S. , Fiorino, A. S. & Reid, L. M. The liver as a stem cell and lineage system. Am. J. Physiol. 263, G139–G148 (1992). | PubMed | ISI |
63.Oh, S. H. , Hatch, H. M. & Petersen, B. E. Hepatic oval 'stem' cell in liver regeneration. Semin. Cell Dev. Biol. 13, 405–409 (2002). | Article | PubMed | ISI |
64.Gage, F. H. Stem cells of the central nervous system. Curr. Opin. Neurobiol. 8, 671–676 (1998). | Article | PubMed | ISI |
65.Leri, A. , Kajstura, J. & Anversa, P. Cardiac stem cells and mechanisms of myocardial regeneration. Physiol. Rev. 85, 1373–1416 (2005). | Article | PubMed | ISI |
66.Ben Porath, I. & Weinberg, R. A. The signals and pathways activating cellular senescence. Int. J. Biochem. Cell Biol. 37, 961–976 (2005). | PubMed |
Сайт создан в системе
uCoz