|
|
---|---|
Reduced fertility and spermatogenesis defects in mice lacking chromosomal protein Hmgb2Lorenza Ronfani, Marco Ferraguti , Laura Croci , Catherine E. Ovitt , Hans R. Scholer ,
G. Giacomo Consalez and Marco E. Bianchi Development 128, 1265-1273 (2001) |
ЛитератураAgrawal, A. and Schatz, D. G. (1997). RAG1 and RAG2 form a stable post-cleavage synaptic complex with DNA containing signal ends in V(D)J recombination. Cell 89, 43-53. Aidinis, V., Bonaldi, T., Beltrame, M., Santagata, S., Bianchi, M. E. and
Spanopoulou, E. (1999). The RAG1 homeodomain recruits HMG1 and
HMG2 to facilitate Recombination Signal Sequence binding and to enhance
the intrinsic DNA-bending activity of RAG1-RAG2. Mol. Cell. Biol. 19,
6532-6542.
Baker, S. M., Bronner, C. E., Zhang, L., Plug, A. W., Robatzek, M.,
Warren, G., Elliott, E. A., Yu, J., Ashley, T., Arnheim, N. et al. (1995).
Male mice defective in the DNA mismatch repair gene PMS2 exhibit
abnormal chromosome synapsis in meiosis. Cell 82, 309-319.
Bianchi, M. E. and Beltrame, M. (2000). Upwardly mobile proteins. The role
of HMG proteins in chromatin structure, gene expression and neoplasia.
EMBO Reports 1, 109-114.
Boonyaaratanakornkit, V., Melvin, V., Prendergast, P., Altmann, M.,
Ronfani, L., Bianchi, E. M., Tarasaviciene, A., Nordeen, S. K.,
Allegretto, E. A. and Edwards, D. P. (1998). High mobility group
chromatin proteins -1 and -2 functionally interact with steroid hormone
receptors to enhance their DNA binding in vitro and transcriptional activity
in mammalian cells. Mol. Cell. Biol. 18, 4471-4487.
Bustin, M. (1999). Regulation of DNA-dependent activities by the functional
motifs of the high-mobility-group chromosomal proteins. Mol. Cell. Biol.
19, 5237-5246.
Calogero, S., Grassi, F., Aguzzi, A., Voigtlander, T., Ferrier, P., Ferrari, S.
and Bianchi, M. E. (1999). The lack of chromosomal protein HMG1 does
not disrupt cell growth, but causes lethal hypoglycaemia in newborn mice.
Nat. Genet. 22, 276-280.
Chaganti, R. S. and German, J. (1979). Human male infertility, probably
genetically determined, due to defective meiosis and spermatogenic arrest.
Am. J. Hum. Genet. 31, 634-641.
Chirgwin, J. M., Przybyla, A. E., MacDonald, R. J. and Rutter, W. J.
(1979). Isolation of biologically active ribonucleic acid from sources
enriched in ribonuclease. Biochemistry 18, 5294-5299.
Clincke, G. and Werbrouck, L. (1993). Two-way active avoidance. In:
Behavioural Neuroscience: A Practical Approach (ed. A. Sahgal), Vol. I, pp.
71-79. Oxford: Oxford University Press.
Esteban, C., Gerard, A., Larrib, S., Toran, N., Gerard, H. and Reventos,
J. (1997). Sertoli cell-specific expression of rat androgen binding protein in
transgenic mice: effect on somatic cell lineages. Mol. Cell. Endocrinol. 132,
127-136.
Ferrari, S., Ronfani, L., Calogero, S. and Bianchi, M. E. (1994). The mouse
gene coding for high mobility group 1 protein (HMG1). J. Biol. Chem. 269,
28803-28808.
Ferrari, S., Finelli, P., Rocchi, M. and Bianchi, M. E. (1996). The active
gene that encodes high mobility group 1 protein (HMG1) contains introns
and maps to chromosome 13. Genomics 35, 367-371.
Huang, J. C., Zamble, D. B., Reardon, J. T., Lippard, S. J. and Sancar, A.
(1994). HMG-domain proteins specifically inhibit the repair of the major
DNA adduct of the anticancer drug cisplatin by human excision nuclease.
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91, 10394-10398.
Kwon, J., Imbalzano, A. N., Matthews, A. and Oettinger, M. A. (1998).
Accessibility of nucleosomal DNA to V(D)J cleavage is modulated by RSS
positioning and HMG1. Mol. Cell 2, 829-839.
Lu, Q., Gore, M., Zhang, Q., Camenisch, T., Boast, S., Casagranda, F., Lai,
C., Skinner, M. K., Klein, R., Matsushima, G. K. et al. (1999). Tyro-3
family receptors are essential regulators of mammalian spermatogenesis.
Nature 398, 723-728.
Lubahn, D. B., Moyer, J. S., Golding, T. S., Couse, J. F., Korach, K. S. and
Smithies, O. (1993). Alteration of reproductive function but not prenatal
sexual development after insertional disruption of the mouse estrogen
receptor gene. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90, 11162-11166.
Ly, D. H., Lockhart, D. J., Lerner, R. A. and Schultz, P. G. (2000). Mitotic
misregulation and human aging. Science 287, 2486-2492.
Manly, K. F. and Elliott, R. W. (1991). RI Manager, a microcomputer
program for analysis of data from recombinant inbred strains. Mamm.
Genome 1, 123-126.
Seyedin, S. M. and Kistler, W. S. (1979). Levels of chromosomal proteins
high mobility group 2 parallel the proliferative activity of testis, skeletal
muscle, and other organs. J. Biol. Chem. 254, 11264-11271.
Shirakawa, H. and Yoshida, M. (1992). Structure of a gene coding for human
HMG2 protein. J. Biol. Chem. 267, 6641-6645.
Stewart, C. A. and Morris, R. G. M. (1993). The watermaze. In: Behavioural
Neuroscience, A Practical Approach (ed. A. Sahgal), Vol. I, pp. 107-121.
Oxford: Oxford University Press.
Vaccari, T., Beltrame, M., Ferrari, S. and Bianchi, M. E. (1998). Hmg4, a
new member of the Hmg1/2 gene family. Genomics 49, 247-252.
van Gent, D. C., Hiom, K., Paull, T. and Gellert, M. (1997). Stimulation
of V(D)J cleavage by high mobility group proteins. EMBO J. 16, 2665-
2670.
Wanschura, S., Schoenmakers, E. F. P. M., Huysmans, C., Bartnitzke, S.,
Van de Ven, W. J. M. and Bullerdiek, J. (1996). Mapping of the HMG2
gene to 4q31. Genomics 31, 264-265.
Yamazaki, F., Nagatsuka, Y., Shirakawa, H. and Yoshida, M. (1995).
Repression of cell cycle progression by antisense HMG2 RNA. Biochem.
Biophys. Res. Commun. 210, 1045-1051.
Zappavigna, V., Falciola, L., Helmer Citterich, M., Mavilio, F. and
Bianchi, M. E. (1996). HMG1 cooperates with HOX proteins in DNA
binding and transcriptional activation. EMBO J. 15, 4981-4991.
Zwilling, S., Konig, H. and Wirth, T. (1995). High mobility group protein 2
functionally interacts with the POU domains of octamer transcription
factors. EMBO J. 14, 1198-1208.
]
|
Hmgb2 является членом одного из 3-х семейств high
mobility group (HMG) белков ( Bustin, 1999; Bianchi and Beltrame, 2000). Номенклатура HMGs
Клетки без Hmgb1 могут выживать, но
мутантные мыши погибают сразу же после
рождения. Т.к. Hmgb2 присутствует во всех
культивируемых клетках и обилен в тимусе,
главном источнике HMGB белков, то он
рассматривается как повсеместный вариант Hmgb1.
У взрослых мышей Hmgb2 ограничен в основном
лимфоидными органами и тестисами, хотя во
время эмбриогенеза распространен широко.
Мыши без Hmgb2 жизнеспособны. Однако, самцы Hmgb2 -/-
мыши имеют сниженную фертильность,
которая коррелирует с дегенерацией
Сертоли и зародышевых клеток в
семявыносящих протоках и неподвижностью
спермиев. Hmgb2 экспрессируется на очень
высоком уровне в первичных сперматоцитах,
тогда как едва обнаружим в сперматогониях
и удлиняющихся сперматидах.
Hmgb2 по сравнению с Hmgb1 имеет
ограниченный паттерн экспрессии, только в
специфических клетках и специфических
условиях. Самая простая интерпртетация
полученных данных та, что Hmgb1 и Hmgb2
действительно функционально эквивалентны
и минимум их необходим всегда.
Специализированный паттерн экспрессии Hmgb2
м. просто указывать на то, что общее
количество Hmgb1 + Hmgb2 , необходимое определенным клеткам или в
определенных условиях развития, варьирует.
Общий пул Hmgb затем модулируется за счет
изменчивости концентрации Hmgb2, тогда как
экспрессия Hmgb1 относительно постоянна все
время . Делеция Hmgb1 не оказывает влияния на
экспрессию Hmgb2, и наоборот. Hmgb2
экспрессируется широко у эмбрионов, но
присутствует на низком уровне в
большинстве взрослых, а комбинированное
отсутствие Hmgb1 и Hmgb2 может приводить к
дегенерации клеток.
Hmgb2 -/- имеют пониженную
фертильность, которая коррелирует с
потерей зародышевых клеток, дефектами
сперматид и неподвижностью спермиев. В
тестисах Hmgb2 экспрессируется на высоком
уровне. Это м. объяснить высокую
эффективность cisplatin, противо-опухолевого
лекарства, связывающегося ковалентно с
ДНК, при лечении тестикулярных опухолей:
both Hmgb1 и 2 специфически связывают cisplatin
adducts, и препятствуют их репарации (Huang et al., 1994). Hmgb2
белок начинает экспрессироваться
внезапно на стадии сперматоцитов, На
стадии же сперматид и транскрипция и
количество белка резко снижаются.
Hmgb1 и Hmgb2 стабильные белки со временем
замены через несколько дней, поэтому
исчезновение Hmgb2 указывает на его
целенаправленную деструкцию. Корреляция
между уровнем Hmgb2 и пролиферацией клеток м.
указывать на то, что сперматоциты страдают
от дефекта в репликации ДНК и
мейотического ареста; однако,
мейотический арест должен редуцировать
количество спермиев, но не вызывать
структурные нарушения (Baker et al., 1995; Chaganti and German, 1979). Кроме того мейоз у самок не нарушен.
Нарушения Hmgb2-null сперматид и спермиев
указывает на то, что дефект в процессе
дифференцировки. Hmgb2 вряд ли необходим для
конденсации хроматина, скорее он м.
нарушать транскрипцию генов ,
экспрессирующихся одновременно с мейозом
у самцов, или в сперматидах
непосредственно перед конденсацией
хроматина.
|