Посещений:
Динеин

Структура и Механизм Действия

Recent progress in dynein structure and mechanism
Kazuhiro Oiwa and Hitoshi Sakakibara
Current Opinion in Cell Biology Volume 17, Issue 1 , February 2005, Pages 98-103

Dynein является направленным к минус-концу микротрубочек мотором, критическим для разнообразных клеточных процессов. Громоздкие размеры молекулы и трудности с экспрессией и очисткой мутантных молекул препятсвуют изучению. Недавние успехи проливают свет на ключевой нерешенный вопрос, связанный с тем, как молекуля организованы в действительности, какие конформационные изменения сопровождают гидролиз АТф и имеется два или три домена, участвующих в координации его движений.

Enlarge Image
Рис.1.  |  Figure 1. Structural organization of single-headed axonemal dynein. (a) Dynein-c purified from Chlamydomonas flagellar axoneme in the apo state was observed by negative-stain electron microscopy followed by single-particle image processing (reproduced with permission from [19]). The head has seven lobes of density forming an asymmetric ring. Two elongated structures extend from the head ring. The stalk carries at its distal end the microtubule binding domain. The tail (called the stem in earlier papers) is the cargo binding domain. Scale bar: 30 nm. (b) A schematic drawing of the dynein molecule indicates that motor domain is composed of the stalk, the head ring and the putative linker (colored yellow).

Enlarge Image
Рис.2.  |  Figure 2. Proposed mechanisms of power stroke of dynein. Release of Pi and ADP from the catalytic site causes (a) tilting of the stalk [17,31,44] or (b) tilting of the tail [34]. (c) Alternatively, the first AAA domain swings a putative linker connecting the first AAA domain and the tail [18]. The small conformational change between the first AAA domain and its neighbors is amplified by the linker and possibly stabilized by docking onto the head. (d) A speculative model for the mechano-chemical cycle of dynein based upon the EM observations [18,43]. The ATPase mechanism was most thoroughly studied with three-headed 22 S dynein of Tetrahymena axonemes (reviewed in [62]). We start at the state where dynein without nucleotide tightly binds to a microtubule. ATP binds to the motor domain and this binding promotes dissociation of dynein from the microtubule. The detached dynein quickly hydrolyzes ATP and re-primes its conformation for a power stroke. Microtubule movement is then initiated by tight binding to the tip of the stalk, which promotes a concerted conformational change in the head ring, thereby activating release of ADP and phosphate from the ATP binding site. Force generation and the power stroke follow microtubule binding (from the lower left to the upper left panel). Thus, rigid coupling among several mechanical components causes a rolling of the head towards the tail. The first AAA domain is colored white in the no-nucleotide state, blue in the ATP state and red in the ADP-Pi state.

Прошло 40 лет с тех пор, как был выделен dynein из ресничек Tetrahymena в качестве силы-генерирующей ATPase [1]. Dynein ATPases формируют морфологически униформное, но функционально разнообразное семейство белков, чьи члены являются критическими для разнообразных клеточных процессов. Dyneins содержат от одной до трех тяжелых цепей: каждая тяжелая цепь состоит из C-терминальной глобулярной головки вместе с двумя удлиннеными гибкими структурами, называемыми стержнями (stalk) (домен, связывающий микротрубочки) N-терминальным хвостом (домен, связывающий груз) (Figure 1). Dyneins относятся к двум большим классам, аксонемные и цитоплазматические.
Аксонемный dynein обеспечивает сгибающие движения, которые распространются вдоль ресничек и flagella (rev. [2,3]. Они располагаются на наружных дублетах микротрубочек в аксонеме и формируют проекции, называемые dynein плечами, каждое из которых состоит из множественных молекул dynein. Эти dynein молекулы организованы таким образом, что немногие тяжелые цепи формируют гетеродимеры, гетеротримеры или мономеры. Тяжелые цепи имеют разные аминокислотные последовательности, каждая с разной функцией; любая из этих функций является критической для собственно аксонемных операций [3,4] и даже способны генерировать вращающий момент [5,6] и осцилляции [7].
Цитоплазматический dynein управляет разнообразными фундаментальными клеточными процессами, включая миграцию ядер, организацию митотического веретена, разделение хромосом во время митоза и позиционирование и функционирование многих внутриклеточных органелл (rev. [8-10]. Цитоплазматический dynein, как полагают, является гомодимером с двумя тяжелыми цепями, каждая из которых представлена головным доменом, соединенным с хвостом. Этот цитоплазматический динеин содержит несколько дополнительных субъединиц, называемых промежуточными, легкими промежуточными и легкими цепями.

The structure of a motor domain


Отсутствие какой-либо кристаллической структуры делает dynein бедным родственником kinesin и myosin. На базе биохимических и молекулярно биологических исследований было установлено, что тяжелая цепь dynein (молекулярная масса >500 kDa) содержит крупный фундаментальный моторный домен в С-концевом фрагменте в 380-kDa [11-13], включающий сайты гидролиза АТФ и связывания микротрубочек. Анализ последовательностей показал, что dynein является членом сверхсемейства AAA+ белков (где AAA означает ATPase associated with various cellular activities) [14]; его сходство с др. членами этого семейства касается характеристик его вторичной структуры ATPase домена, а также кго первичной структуры (rev.[15]). ЭМ наблюдения [16-19] показали, что dynein имеет сложную морфологию, в которой имеется 6 последовательно связанных AAA+ ATPase-подобных доменов (AAA модули), каждый в 35-40 kDa, которые образуют кольцо, возможно вместе с седьмым доменом.
Первые 4 AAA модуля, каждый содержит высоко законсервированный Walker A мотив (GXXGXGKT/S, называемый также P-петля) и Walker B мотив (DEXX) [20-23], и каждый модуль, как полагают, связывает нуклеотиды [24,25]. Принципиальный сайт гидролиза АТФ, ранее был картирован в первом Walker мотиве с помощью vanadate-обусловленного фоторасщепления тяжелой цепи аксонемного dynein [26]. Дальнейшим подтверждением важной функциональной роли первого Walker мотива явилось исследование цитоплазматических dyneins, у которых мутации в P-петле устраняли из моторную активность [27,28].
Какжтся очень возможным, что дополнительные Walker мотивы действуют регулирующим способом путём связывания или FLA или АТФ. В некоторых изоформах dynein присутствие АДФ, как известно, является существенным для двигательной активности in vitro, а в др. FLA увеличивает скорость движения микротрубочек, управляемого с помощью dynein [29,30], указывая тем самым, что АДФ связывается, по крайней мере, с одним из этих AAA модулей. Гипотетическая атомная структура, продуцируемая при гомологичного моделирования AAA модулей динеина, подтверждает, что нуклеотид-связывающие Walker A мотивы расположены близко к интерфейсу (обращенным др. к др. сторонам) между соседними молекулами [31]. Взаимодействия между соседними AAA модулями посредством их нуклеотидных карманов подтверждает идею, что они могут действовать в сочетании с продукцией функционального мотора [32].
Функция этих дополнительных Walker мотивов сегодня раскрыта дальше на примере молекулярного исследования экспрессирующегося цитоплазматического dynein [27,28] и с помощью измерений ATPase активности укороченных цитоплазматических динеинов и их мутаций, экспрессируемых у E. coli [3]. Манипуляции с Walker A мотивом в третьем AAA модуле цитоплазматического динеина, показали, что возникающая в результате конструкция не способна высвобождаться из плотной связи с микротрубочками с помощью АТФ [27,28] и теряет своей активированной микротрубочками ATPase активности [27]. Моторная активность конструкции сохранялась, хотя скорость скольжения вдоль микротрубочек в 20 раз ниже скорости, связанной с конструкцией дикого типа[27]. Мутации во втором и четвертом Walker мотивах не затрагивают очевидного связывающего сродства к микротрубочкам в присутствии АТФ, но редуцируют и ATPase и моторную активность [27]. Эти результаты чётко указывают на то, что дополнительные Walker мотивы регулируют моторную активность dynein посредством связывания и гидролиза нуклеотидов.

The stalk


Стебель или стержень свыше 15 nm в длину и является антипараллельным суперскрученным, он находится между четвертым и пятым AAA модулями [11,33]. Небольшой глобулярный домен на его кончике является чувствительным к АТФ доменом, связывающим микротрубочки [11,12], его последовательности обнаруживают слабую консервацию [34]. Связывающая микротрубочки область на кончике стержня недавно была изучена с помощью рекомбинантного stalk tip пептида [35]. Кончики стержня обнаруживают связывание с тубулиновыми димерами с периодичностью в 8 nm и имеют общую связывающую область с kinesin. Т.к. сайт связывания микротрубочек у dynein отделен от первичного сайта гидролиза АТФ, то архитектура dynein заметно отлична от таковой у хорошо охарактеризованных моторных белков. таких как kinesin и myosin.
Хотя структура стержня выяснена не до конца, может предсказать передачу конформационных изменений вдоль его длины, предполагая их необходимость для динамических изменений взаимодействий между спиралями. Более специфично, связывание АТФ с первым ААА доменом вызывает диссоциацию dynein от микротрубочки. Мы недавно установили, что гибкость стержня редуцируется в apo-молекулах, указывая тем самым, что этот домен имеет более высокую жесткость [18,19]. Т.о., д. существовать некий механизм, который запускает изменения в стабильности, а , следовательно, и в жесткости стержня.
Последовательности леворучной (left-handed) супер-спирали характеризуются периодичностью в 7 остатков (heptad повторы), представляющей выражение (a-b-c-d-e-f-g), и последовательность области стержня имеет такую же периодичность [36]. Аполярные остатки преимущественно появляются в первой (a) и четвертой (d) позициях heptad. Упаковка типа 'knobs-into-holes' аполярных боковых цепочек в гидрофобную сердцевину является главным механизмом, с помощью которого стабилизируются coiled-coils. На базе аминокислотных последовательностей, предсказывается прерывистость в heptad повторах из-за half-pitch сдвига [37] (см. Figure 2b) в [34] на полпути вдоль along the outward ?-спирали стебля цитоплазматических динеинов. Напротив, heptad повтор является высоко упорядоченным вдоль всей inward ?-спирали. Эта дискретность, по-видимому, модулирует стабильность супер-спирализованного стебля, хотя large-scale melting супер-спирали в нуклеотид-связанном состоянии, по-видимому, мало вероятно. В нуклеотид-связанном состоянии ЭМ аксонем указывает на то, что стебель остается интактным и сохраняет контакты с микротрубочкой даже тогда, когда аксонемы фиксированы в присутствии АТФ [38,39] и стебель остаётся той же самой длины в изолированном dynein [18].

Суперскрученный пептид обладает ригидностью к изгибам порядка 400 pN·nm2 [40]. Он сгибается под действием силы F на рассотояние y подобно ригидному лучу длиной L, где y = FL3/3EI, где E является Young's модулем, а I вторым моментом инерции поперечника (cross-section). Продукт E и I является ригидностью к изгибу. Т.о., суперскрученный пептид длиной 15nm, закрепленный с одного конца обладает жесткостью not, vert, similar0.36 pN·nm-1. Т.к. пределы конформаций для аксонемной молекулы dynein, наблюдаемые в негативно окрашенных выборках [18,19], зависят от распределения тепловой энергии, то эти пределы позволят подсчитать жесткость стебля. Жесткость было определена равной 0.5 pN·nm-1 у apo молекул и 0.14 pN·nm-1 у АТФ-vanadate молеекул [41]. Поперечная сила в 1-5 pN, соответствующая максимальной силе dynein [7,42,43], приложенная к свободному концу суперспирали отклоняет её на расстояние not, vert, similar3-14 nm. Негативно окрашенные ЭМ картины также показывают, что хвост молекулы динеина обладает гибкостью при жесткости 0.1 pN·nm-1 [41]. Т.к. жесткость стебля и хвоста связаны последовательно (in series), то это даёт общую ригидность в 0.05-0.08 pN·nm-1 [41], которая сходна с той, что определена с помощью экспериментов оптических ловушек [43]. Т.о., dynein является довольно гибкой молекулой, это указывает на то, что в условиях низкой или нулевой нагрузки он способен делать более крупные шажки, чем средний размер шага в 15 nm, выявляемый при ЭМ [19]

Conformational changes of dynein coupled with ATP hydrolysis


Базируясь на законсервированных последовательностях и структурном сходстве между аксонемным и цитоплазматическом dynein, можно предположить, что оба подсемейства dynein используют один и тот же механизм для генерации силы. Предложено, по крайней мере, три модели генерации силы dynein (Figure 2). Во-первых, ротация вокруг соединения между головным кольцом и стеблем, возникающая в результате связанной с ATPase перестройки AAA модулей в голвном кольце, как предполагается поворачивает связывающий микротрубочку стержень относительно хвоста (Figure 2a) [17,31,44]. Вторая модель предполагает, что связанная с ATPase ротация вокруг соединения между головным кольцом и хвостом также поворачивает головку и связывающий микротрубочки стержень (Figure 2b) [34]. Согласно третьей модели скоординированные множественные конформационные изменения умножают небольшие конформационные изменения между первым ААА доменом и его соседями по путем закрепления (docking) головного кольца на линкере, который соединяет хвост и головное кольцо [18]. В результате ротация головного кольца поворачивает стержень (Figure 2c).
Не смотря на Гауссовское распределение угла стержня аксонемного динеина [18,19], стержень цитоплазматического динеина обнаруживает три дискретных угловых распределения в apo состоянии [17]. Угловые изменения в положении стержня, по-видимому, скоррелированы с позиционными сдвигами среди семи основных плотностей кольца. Вероятности наблюдений в трех угловых состояниях были, однако, почти равными, указывая тем самым, что (согласно правилу Boltzmann's), что энергетические различия между тремя состояниями составляют 0.2-1.3 kBT. Если эти угловые изменения отражают разные механохимические состояния dynein, то эти энергетические различия кажутся слишком маленькими, чтобы приписать им конформационные изменения, связанные с гидролизом АТФ.
Ключевой структурой третьей модели является линкер [18]. Если этот механизм присущ всем dyneins, то последовательности линкерного домена д.б. у них законсервированы. Vanadate фоторасщепление рекомбинантных тяжелых цепей dynein [11,12] показало, что ключевые последовательности содержат остатки 1137-1455 в цитоплазматическом dynein крыс. Консервативный элемент, R/KXRHWXXI/L, обнаружен внутри существенной последовательности. Хотя потенциальный вклад этой последовательности в структуру или функцию динеина пока неясен, он может быть частью линкера.

Mechanical properties of dyneins


С помощью техники оптических ловушек механические свойства некоторых dyneins были измерены с пространственно-временными разрешениями в нанометрах и миллисекундах. Одно-головчатый inner-arm dynein-c обнаруживает поступательность движения и размеры шага в 8 nm [43]. Оuter-arm dynein ресничек Tetrahymena - гетеротримерный 22S dynein - обнаруживает поступательный момент с размером шага в 8 nm при низких концентрациях АТФ, тогда как при высоких концентрациях он обнаруживает пульсо-подобную генерацию сил, сходную с той, что наблюдается в скелетно-мышечном миозине [42]. В обоих случаях эти dyneins часто пропускают шаг вперед и обнаруживают соскальзывание назад при тяжелых грузах[42,43]. Недавно движение одиночного цитоплазматического динеина было измерено и размер его шага снижался с 32 nm до 8 nm с увеличением груза или концентрации АТФ [45].
Некоторые inner-arm dyneins обладают способностью генерировать вращательный момент, который вызывает ротацию микротрубочек во время перемещения вперед [5,6]. Покрытые цитоплазматическим динеином кусочки осуществляют крупные и более частые боковые перемещения между протофиламентами микротрубочек, чем те, что наблюдаются с кинезином [46]. Следовательно, они лишены привязки к одной протофиламенте.
Эти механические эксперименты ставят множество вопросов. Напр., как осуществляет мономер поступательное движение? Поступательное движение одно-головчатых моторов по микротрубочке было описано для кинезин-подобного мотора KIF1A [47,48]. В этом случае, поступательное движение достигалось посредством электростатических взаимодействий между негативно заряженным т. наз. 'E-hook' тубулина и позитивно заряженной K-петлей в KIF1A [49]. Сходный механизм может быть приложим и к dynein-c. В самом деле, outer arm dynein, как было установлено, взаимодействует с микротрубочками таким способом, который позволяет последнему диффундировать только вдоль их продольных осей [50]. Однако, эквивалентные K-петле последовательности не были выявлены в dynein.
Дополнительные вопросы касаются того, как димер или тример координирует свои множественные моторные домены во время вышагивания и как размеры шагов изменяются в зависимости от груза. При изучении др. поступательных моторов, таких как myosin V (rev. [51]) и конвенционного kinesin (rev. [52]), были предположены механизмы, согласно которым два идентичных моторных домена альтернативно поворачиваются (swing) в направлении каждого шага, при этом один моторный домен остается прикрепленным к треку. Моторные домены альтернативно используют идентичные треки. Экспериментальное подтверждение для такого hand-over-hand механизма представлено [51]
Однако, dynein существенно отличается от kinesin или myosin своими большими размерами, он, по-видимому, освобожден от потребности перемещаться вдоль одного и того же трека, и своей значительной гибкостью. Хотя физиологическое значение гибкости dynein's пока неясно, но учитывая его огромные размеры и предполагаемый рабочий ход в связи с тубулиновой решеткой [18,19], он может осуществлять шаги разной длины даже без альтернативного поворачивания крупных моторных доменов. Это контрастирует с hand-over-hand походкой, т.к. размер шага у моторов, за исключением myosin VI [53], может быть предположен пропорциональным длине его рабочего хода [54,55]. Более того, моторные домены динеиновых гетеродимеров не имеют нужды вести себя таким же образом. Хотя поступательное движение dynein может быть описано просто с помощью модели гусеницы (inchworm), согласно которой dynein перемещается медленной походкой путем выдвижения своей ведущей головки и подтягивания тыла до встречи с ней в купе с diffusion search.
В аксонемах активность молекул динеина распространяется по линейным или двумерным наборам динеиновых молекул, плотно упакованных на периферических дублетах микротрубочек. Поведение аксонемного динеина интегрировано по большому счету, оно вызывает биение flagellum и распространение волн. Описаны некоторые важные исследования этого типа сочетанных операций множественных динеинов (включая смеси из разных типов динеинов). Одиночное динеиновое плечо dynein на выпячиваемом (extruded) дублете микротрубочек способно к осциллирующим движениям [7]. Аксонемы, обездвиженные на поверхности стекла вдоль всей своей длины обнаруживают осцилляции взад-вперед пучка наружных дублетов с высокими частотами, управляемыми динеинами [56]. Эти продольные осцилляции аксонем сочетаются с поперечными осцилляциями [57]. Кроме того, реальные подсчеты скоординированных движений ресничек и flagella были проведены на базе солидных доказательств механики и биохимии динеина и аксонем [58-61]. При этих подсчетах силы, осуществляемые динеинами на эластичных компонентах аксонем, были оценены и движения аксонем компьютеризированы. Эти подсчеты позволяют нам сделать новые предположения, которые не могут быть получены за счет прямого описания механических частей и их взаимоотношений.

Conclusions


Data presented to date indicate that the structure and force-generating mechanisms of dynein are quite different from those of the other linear motors, kinesins and myosins. We now have a powerful armory of techniques enabling the expression of recombinant cytoplasmic dynein with full motor activity [13] and molecular dissection of cytoplasmic dynein [27,28]. Although axonemal dynein awaits the establishment of an expression system, this armory will bring us to a better understanding of the dynein conformational cycle during motility and of the mechanism for transmission of conformational changes through the stalk.
Important questions awaiting further work concern the possible coordination between two or three motor domains connected by a presumably flexible tail and the mechanical feedback or modulation of force generation in dynein, which may play an important role in the bending and propagation of flagella. To describe the coordinated sequence of conformational changes and kinetics of two heads, single-molecule studies combined with the expression of genetically engineered dyneins will be a powerful experimental approach
Сайт создан в системе uCoz