Enteric Nervous System

ЭНТЕРИЧЕСКАЯ НЕРВНАЯ СИСТЕМА

Development of the mammalian enteric nervous system
Stavros Taraviras, Vassilis Pachnis
Current Opinion in Genetics & Development 1999, 9 No. 3:321-327.
CNS—central nervous system;
DomDominant megacolon;
ENS—enteric nervous system;
GDNF—glial cell line derived neurotrophic factor;
NC—neural crest;
NCSC—NC stem cell;
PNS—peripheral nervous system;
RTK—receptor tyrosine kinase.


Кишечная нервная система (ENS) позвоночных представлена большим числом взаимосвязанных ганглиев (enteric ganglia), которые располагаются по всей стенке кишки двумя концентричческими кругами; наружный myenteric и внутренний подслизистый [1]. Основаня функция ENS заключается в контроле за перистальтикой стенки кишечника — путем регуляции сократимости внутренних гладких мышц — и в модуляции активности секреторных желез, присутствующих внутри или ассоциированных с ЖКТ .

Многие годы энтерические ганглии рассматривались как специализированные парасимпатические ганглии [2]Однако теперь стало ясно, что ENS является независимой ветвью периферической нервной системы (ПНС)[3]. Многие свойства ENS, однако, отличаются от других частей ПНС. Она характеризуется большим числом нейронов и глиальных клеток, высокой степенью различий в\нейрональных фенотипов и прежде всего своей функционалной независимостью от ЦНС [3]. ENS состоит из локальных рефлекторных петель, котрые перерабатывают информацию в соответствии с состоянием просвета и стенки кишечника и контролируют мышечную сократимость и секрецию[1] [3]. Во многих отношениях ENS позвоночных сходна с ЦНС, что позволяет ее характеризовать как "вторичный головной мозг" ('second brain') [4].

  • Furness JB, Costa M: The Enteric Nervous System. Edinburgh:Churchill Livingstone,1987,
  • Kuntz A: The Autonomic Nervous System. Philadelphia:Lea & Febiger,1953,
  • Gershon MD, Kirchgessner AL, Wade PR: Physiology of the Gastrointestinal Tract (vol. 1). Edited by Johnson LR.New York: Raven Press,1994, 381–422.
  • Gershon MD: The Second Brain. New York:HarperCollins,1998,
  • Le Douarin N: The Neural Crest. Cambridge:Cambridge University Press,1982,
  • Le Douarin NM, Teillet MA:
    The migration of neural crest cells to the wall of the digestive tract in avian embryo.
    J Embryol Exp Morphol1973,30:31–48.
  • Durbec PL, Larsson-Blomberg LB, Schuchardt A, Costantini F, Pachnis V:
    Common origin and developmental dependence on c-ret of subsets of enteric and sympathetic neuroblasts.
    Development1996,122:349–358.
  • Pomeranz HD, Rothman TP, Gershon MD:
    Colonization of the post-umbilical bowel by cells derived from the sacral neural crest: direct tracing of cell migration using an intercalating probe and a replication-deficient retrovirus.
    Development1991,111:647–655.
  • Pomeranz HD, Gershon MD:
    Colonization of the avian hindgut by cells derived from the sacral neural crest.
    Dev Biol1990,137:378–394.
  • Serbedzija GN, Burgan S, Fraser SE, Bronner-Fraser M:
    Vital dye labelling demonstrates a sacral neural crest contribution to the enteric nervous system of chick and mouse embryos.
    Development1991,111:857–866.
  • • Burns AJ, Douarin NM:
    The sacral neural crest contributes neurons and glia to the post-umbilical gut: spatiotemporal analysis of the development of the enteric nervous system.
    Development1998,125:4335–4347.
  • Lin LF, Doherty DH, Lile JD, Bektesh S, Collins F:
    GDNF: a glial cell line-derived neurotrophic factor for midbrain dopaminergic neurons.
    Science1993,260:1130–1132.
  • Kotzbauer PT, Lampe PA, Heuckeroth RO, Golden JP, Creedon DJ, Johnson EM Jr, Milbrandt J:
    Neurturin, a relative of glial-cell-line-derived neurotrophic factor.
    Nature1996,384:467–470.
  • Milbrandt J, de Sauvage FJ, Fahrner TJ, Baloh RH, Leitner ML, Tansey MG, Lampe PA, Heuckeroth RO, Kotzbauer PT, Simburger KS et al.:
    Persephin, a novel neurotrophic factor related to GDNF and neurturin.
    Neuron1998,20:245–253.
  • Baloh RH, Tansey MG, Lampe PA, Fahrner TJ, Enomoto H, Simburger KS, Leitner ML, Araki T, Johnson EM Jr, Milbrandt J:
    Artemin, a novel member of the GDNF ligand family, supports peripheral and central neurons and signals through the GFRalpha3-RET receptor complex.
    Neuron1998,21:1291–1302.
  • Jing S, Wen D, Yu Y, Holst PL, Luo Y, Fang M, Tamir R, Antonio L, Hu Z, Cupples R, Louis JC et al.:
    GDNF-induced activation of the ret protein tyrosine kinase is mediated by GDNFR-alpha, a novel receptor for GDNF.
    Cell1996,85:1113–1124.
  • Treanor JJ, Goodman L, de Sauvage F, Stone DM, Poulsen KT, Beck CD, Gray C, Armanini MP, Pollock RA, Hefti F et al.:
    Characterization of a multicomponent receptor for GDNF.
    Nature1996,382:80–83.
  • Pasini B, Ceccherini I, Romeo G:
    RET mutations in human disease.
    Trends Genet1996,12:138–144.
  • Schuchardt A, D'Agati V, Larsson-Blomberg L, Costantini F, Pachnis V:
    Defects in the kidney and enteric nervous system of mice lacking the tyrosine kinase receptor Ret.
    Nature1994,367:380–383.
  • Moore MW, Klein RD, Farinas I, Sauer H, Armanini M, Phillips H, Reichardt LF, Ryan AM, Carver-Moore K, Rosenthal A:
    Renal and neuronal abnormalities in mice lacking GDNF.
    Nature1996,382:76–79.
  • Pichel JG, Shen L, Sheng HZ, Granholm AC, Drago J, Grinberg A, Lee EJ, Huang SP, Saarma M, Hoffer BJ et al.:
    Defects in enteric innervation and kidney development in mice lacking GDNF.
    Nature1996,382:73–76.
  • Sanchez MP, Silos-Santiago I, Frisen J, He B, Lira SA, Barbacid M:
    Renal agenesis and the absence of enteric neurons in mice lacking GDNF.
    Nature1996,382:70–73.
  • •• Cacalano G, Farinas I, Wang LC, Hagler K, Forgie A, Moore M, Armanini M, Phillips H, Ryan AM, Reichardt LF et al.:
    GFRα1 is an essential receptor component for GDNF in the developing nervous system and kidney.
    Neuron1998,21:53–62.
  • •• Enomoto H, Araki T, Jackman A, Heuckeroth RO, Snider WD, Johnson EM Jr, Milbrandt J:
    GFR alpha1-deficient mice have deficits in the enteric nervous system and kidneys.
    Neuron1998,21:317–324.
  • •• Natarajan D, Grigoriou M, Marcos-Gutierrez CV, Atkins C, Pachnis V:
    Multipotential progenitors of the mammalian enteric nervous system capable of colonising aganglionic bowel in organ culture.
    Development1999,126:157–168.
  • Chalazonitis A, Rothman TP, Chen J, Lamballe F, Barbacid M, Gershon MD:
    Neurotrophin-3 induces neural crest-derived cells from fetal rat gut to develop in vitro as neurons or glia.
    J Neurosci1994,14:6571–6584.
  • Lo L, Anderson DJ:
    Postmigratory neural crest cells expressing c-RET display restricted developmental and proliferative capacities.
    Neuron1995,15:527–539.
  • • Chalazonitis A, Rothman TP, Chen J, Gershon MD:
    Age-dependent differences in the effects of GDNF and NT-3 on the development of neurons and glia from neural crest-derived precursors immunoselected from the fetal rat gut: expression of GFRα-1 in vitro and in vivo.
    Dev Biol1998,204:385–406.
  • •• Hearn CJ, Murphy M, Newgreen D:
    GDNF and ET-3 differentially modulate the numbers of avian enteric neural crest cells and enteric neurons in vitro.

  • •• Rossi J, Luukko K, Poteryaev D, Laurikainen A, Sun YF, Laakso T, Eerikainen S, Tuominen R, Lakso M, Rauvala H et al.:
    Retarded growth and deficits in the enteric and parasympathetic nervous system in mice lacking GFR α2, a functional neurturin receptor.
    Neuron1999,22:243–252.
  • •• Heuckeroth RO, Enomoto H, Grider JR, Golden JP, Hanke JA, Jackman A, Molliver DC, Bardgett ME, Snider WD, Johnson EM Jr, Milbrandt J:
    Gene targeting reveals a critical role for neurturin in the development and maintenance of enteric, sensory, and parasympathetic neurons.
    Neuron1999,22:253–263.
  • Widenfalk J, Nosrat C, Tomac A, Westphal H, Hoffer B, Olson L:
    Neurturin and glial cell line-derived neurotrophic factor receptor-beta (GDNFR-beta), novel proteins related to GDNF and GDNFR-alpha with specific cellular patterns of expression suggesting roles in the developing and adult nervous system and in peripheral organs.
    J Neurosci1997,17:8506–8519.
  • Pevny LH, Lovell-Badge R:
    Sox genes find their feet.
    Curr Opin Genet Dev1997,7:338–344.
  • Doolittle DP, Davisson MT, Guidi JN, Green MC: Genetic Variants and Strains of the Laboratory Mouse (vol. 1). Edited by Lyon MF, Rastan S, Brown SDM. Oxford:Oxford University Press,1996,194:
  • •• Southard-Smith EM, Kos L, Pavan WJ:
    Sox10 mutation disrupts neural crest development in Dom Hirschsprung mouse model.
    Nat Genet1998,18:60–64.
  • •• Herbarth B, Pingault V, Bondurand N, Kuhlbrodt K, Hermans Borgmeyer I, Puliti A, Lemort N, Goossens M, Wegner M:
    Mutation of the Sry-related Sox10 gene in Dominant megacolon, a mouse model for human Hirschsprung disease.
    Proc Natl Acad Sci USA1998,95:5161–5165.
  • Kuhlbrodt K, Schmidt C, Sock E, Pingault V, Bondurand N, Goossens M, Wegner M:
    Functional analysis of Sox10 mutations found in human Waardenburg- Hirschsprung patients.
    J Biol Chem1998,273:23033–23038.
  • •• Pingault V, Bondurand N, Kuhlbrodt K, Goerich DE, Prehu MO, Puliti A, Herbarth B, Hermans-Borgmeyer I, Legius E, Matthijs G et al.:
    SOX10 mutations in patients with Waardenburg-Hirschsprung disease.
    Nat Genet1998,18:171–173.
  • Kuhlbrodt K, Herbarth B, Sock E, Hermans-Borgmeyer I, Wegner M:
    Sox10, a novel transcriptional modulator in glial cells.
    J Neurosci1998,18:237–250.
  • Hirata Y:
    Endothelin peptides.
    Curr Opin Nephrol Hypertension1996,5:12–15.
  • Puffenberger EG, Hosoda K, Washington SS, Nakao K, deWit D, Yanagisawa M, Chakravart A:
    A missense mutation of the endothelin-B receptor gene in multigenic Hirschsprung's disease.
    Cell1994,79:1257–1266.
  • Hosoda K, Hammer RE, Richardson JA, Baynash AG, Cheung JC, Giaid A, Yanagisawa M:
    Targeted and natural (piebald-lethal) mutations of endothelin-B receptor gene produce megacolon associated with spotted coat color in mice.
    Cell1994,79:1267–1276.
  • Baynash AG, Hosoda K, Giaid A, Richardson JA, Emoto N, Hammer RE, Yanagisawa M:
    Interaction of endothelin-3 with endothelin-B receptor is essential for development of epidermal melanocytes and enteric neurons.
    Cell1994,79:1277–1285.
  • Gershon MD:
    Neural crest development. Do developing enteric neurons need endothelins?
    Curr Biol1995,5:601–604.
  • • Yanagisawa H, Yanagisawa M, Kapur RP, Richardson JA, Williams SC, Clouthier DE, de Wit D, Emoto N, Hammer RE:
    Dual genetic pathways of endothelin-mediated intercellular signaling revealed by targeted disruption of endothelin converting enzyme-1 gene.
    Development1998,125:825–836.
  • Lahav R, Dupin E, Lecoin L, Glavieux C, Champeval D, Ziller C, Le Douarin NM:
    Endothelin 3 selectively promotes survival and proliferation of neural crest-derived glial and melanocytic precursors in vitro.
    Proc Natl Acad Sci USA1998,95:14214–14219.
  • • Wu JJ, Chen JX, Rothman TP, Gershon MD:
    Inhibition of in vitro enteric neuronal development by endothelin-3: mediation by endothelin B receptors.
    Development1999,126:1161–1173.
  • Pomeranz HD, Rothman TP, Chalazonitis A, Tennyson VM, Gershon MD:
    Neural crest-derived cells isolated from the gut by immunoselection develop neuronal and glial phenotypes when cultured on laminin.
    Dev Biol1993,156:341–361.
  • Rothman TP, Le Douarin NM, Fontaine-Perus JC, Gershon MD:
    Developmental potential of neural crest-derived cells migrating from segments of developing quail bowel back-grafted into younger chick host embryos.
    Development1990,109:411–423.
  • Rothman TP, Le Douarin NM, Fontaine-Perus JC, Gershon MD:
    Colonization of the bowel by neural crest-derived cells remigrating from foregut backtransplanted to vagal or sacral regions of host embryos.
    Dev Dyn1993,196:217–233.
  • •• Morrison SJ, White PM, Zock C, Anderson DJ:
    Prospective identification, isolation by flow cytometry, and in vivo self-renewal of multipotent mammalian neural crest stem cells.
    Cell1999,96:737–749.
  • Stemple DL, Anderson DJ:
    Isolation of a stem cell for neurons and glia from the mammalian neural crest.
    Cell1992,71:973–985.
  • Taraviras S, Marcos-Gutierrez, Durbee P, Jani H, Grigorlou M, Sukumaran M, Wang L-C, Hynes M, Raisman G, Pachnis V:
    Signalling by the RET tyrosine kinase receptor and its role in the development of the mammalian enteric nervous system.
    Development1999,in press.

  • Origin of the ENS
    Несмотря на высокую сложность и ее сходство с ЦНС ENS она происходит из нейрального гребня (neural crest (NC)), источника и всех других ветвей ПНС [5]. Проспективные энтерические NC клетки мигрируют из двух основных областей нервной трубки: vagal области, которая соответствует сомитам 1–7, и копчиковой (sacral) области ниже сомита 28. Производные vagal ENS — которые дают большинство нейронов и гшлии энтерических ганглиев — вступают в мезенхиму передней кишки и мигрирруют в передне-заднем направлении, колонизируя кишку по всей длине [6]. Клональные и генетические исследования эмбрионов мыши показали, что энтерический компонент vagal NC генерирует два отдельных клона: первый, симпатоэнтерический клон, который происходит из нервной трубки на уровне сомитов 1–5 и вносит вклад в формирование энтерических ганглиев (по всей длине кишечника) и верхних шейных ганглиев симпатической цепи; и второй, симпатоадренальный клон, дающий потомство, которое колонизирует сначала энтерические ганглии передней кишки (пищевода и желудка) [7] (Fig. 1).

    Рис. 1 Схематическое представление вклада vagal и sacral NC в формирование ENS. c-Ret-зависимый симпатоэнтерический (SE) клон (показан красным), происходит из vagal NC заднего мозга (соответствует уровню сомитов 1–5) и мигрирует вентрально, занимая весь кишечник и верхние шейные ганглии (SCG, первые ганглии симпатической цепи). c-Ret-независимый симпатоадренальный (SA) клон (показан голубым), происходит из туловищной части нервного гребня и занимает переднюю кишку (он исходит из НГ на уровне сомитов 6 и 7) а также ганглии симпатической цепи ниже SCG (голубые). Передняя кишка обеспечивается производными как SE так и SA. sacral нервный гребень (оранжевый) происходит из спиннгого мозга ниже уровня сомита 28 и колонизирует в основном заднюбю кишку . FG, пердняя кишкаt; HG, задняя кишка; MG, средняя; OV, слуховой пузырек ; SC, симпатическая цепь; SCG, верхний шейный ганглий (Modified from [7].)

    Помимо vagal области клетки НГ эмигрируют из sacral части нервной трубки (ниже сомита 28), мигрируют в кишечник и участвуют в формировании postumbilical ENS [6] [8] [9] [10]. У эмбрионов кур первноачально (E4.5)клетки sacral НГ мигрируют в хвост в ростральном направлении и формируют ганглии Remak вдоль дорсального аспекта (и вне) задней кишки вплоть до отверстий желчного и панкреатического протоков. Позднее (E7.5), первые клетки sacral NC вступают в заднюю кишку и в течение последующих 2–3 дней их число увеличивается существенно, достигая максимума между E10–12. Значительное большинство клеток sacral-derived НГ ограничено толстой и прямой кишкой, и лишь немного клеток присутствуют в слепой (ceca) и postumbilical тонкой кишке [11•] (Fig. 1).

    ENTERIC NERVOUS SYSTEM RET SIGNALLING PATHWAY

    ЭНТЕРИЧЕСКАЯ НЕРВНАЯ СИСТЕМА: Путь Передачи Сигналов RET
    Несколько молекул было идентифицировано, которые контролируют или прямо или косвенно морфогенез и дифференцировку ENS. Среди них RET receptor tyrosine kinase (RTK) и его функциональные лиганды glial cell line derived neurotrophic factor (GDNF) нейртурин. GDNF и nuerturin принадлежат к небольшому семейству близко родственных нейротрофных факторов, куда входят также персефин и артемин [12] [13] [14] [15]. Взаимодействие между GDNF или нейртурином и RET обеспечивается с помощью GFRα-1 или GFRα-2, соответственно — GPI-сцепленными внеклеточными белками[16] [17].Описаны некоторые мутации с потерей функции c-RET у пациентов с болезнью Hirschsprung's (врожденный мегаколон или врожденный аганглионоз), при которой отсутствуют энтерические ганглии в толстом кишечнике на участках разной длины[18]. Мыши, гомозиготные по нулевой мутации c-Ret, Gfrα-1 и Gdnf имели почти идентичные фенотипы, характеризующиеся неспособностью формировать ENS в задних частях передней кишки (пищевод и cardiac желудка) и агенезом почек [7] [19] [20] [21] [22] [23••] [24••].
    Хотя роль GDNF, GFRα-1 и RET в развитии ENS млекопитающих была четко установлена, однако некоторые вопрося, касающиеся механизма действия этих молекул все еще остаются открытыми. Чтобы определить, действуют ли c-Ret мутации клеточно-автономно и идентифицировать их клеточные мишени, Natarajan et al. [25••] получали химерный кишечник путем трансплантации энтерических клеток НГ, выделенных от эмбрионов дикого типа, в аганглиолярную кишку (от RET-дефицитных эмбрионов) в органой культуре. Оказалось, что эффект c-Ret-нулевой мутации в основном клеточно-автономен и что первоначальный тип клеток, в которых обычно необходима функция RET, происходит из НГ, предшественника ENS. Следовательно, неспособность колонизации кишечника плода клетками НГ у RET-дефицитных эмбрионов не является результатом вторичных эффектов мутации на мезенхиму кишки и что аганглиолярная стенка кишки способна поддерживать миграцию и пролиферацию производных НГ дикого типа [25••].
    Функциональные лиганды RET, GDNF и neurturin, способствуют выживанию in vitro, пролиферации и дифференцировке мультипотентных ENS предшественников в кишке относительно молодых плодов [25••] [26] [27] [28•] [29••]. Однако, Эффекты этих факторов роста стадио-специфичны, так как сходные культуры от плодов поздних стадий обнаруживают заметное снижение реакции на GDNF и neurturin, но могут эффективно выживать в присуствии других нейротрофных факторов, таких как NT-3 ([28•]; S Taraviras et al., unpublished data). Анализ ENS предшественников у RET-дефицитныъ мутантных эмбрионов показал, что они неспособны выживать и подвергаются апоптозу до или во время их инвазии мезенхимы передней кишки.
    Исследования in vitro четко подтверждают роль RET синального пути в ENS нейрогенезе. Подтверждение этого предположения получено у нулевых мутантов по гену, кодирующему GFRα-2 и neurturin — молекул, способных к формированию RET-активируемых комплексов —, у которых возникают аномалии ENS. Таким образом, мыши с отсутствием этих молекул обнаруживают редукцию myenteric сплетения и нарушения желудочно-кишечной подвижности. Эти дефекты указывают на то, что neurturin является важным трофическим фактором для постмитотических энтерических нейронов и что он необходим для поддержания энтерических ганглиев [30••] [31••]. По-видимому, GDNF является критическим для выживания, прлиферации и дифференцировки во время ранних стадий формирования ENS и что нейртурин выступает как фактлор выживания во время поздних стадий. Известно, что очищенный энтерический НГ и энтерические нейроны отвечают сходным образом на GDNF и neurturin в культуре, очевидно, что неперекрывающаяся роль этих нейротрофных факторов является просто следствием их стадио-специфической экспрессии в кишечнике млекопитающих. Некоторые исследователи описывают экспрессию GDNF и neurturin в развивающемся кишечнике (см. [32]. Альтернативное объяснение этих находок заключается в том, что в противоположность in vitro результатам, GDNF и neurturin способны вызывать качественно различные реакции с помощью RET рецепторов in vivo. Эта гипотеза согласуется со сложностью внутриклеточных сигнальных путей, которые могут быть активированы двумя изоформами рецепторов RET (S Taraviras, V Pachnis, unpublished data).


    SOX10
    Другая молекула, критическая для развития ENS у млекопитающих - это SOX10, член семейства Sry-родственных генов, содержащего транскрипционные регуляторы [33]. Роль Sox10 выявлена с помощью позиционного клонирования Dominant megacolon (Dom) локуса у мышей. Животные, гетрозиготные по мутациии Dom mutation (Dom/+) обнаруживают региональные нехватки NC-производных энтерических ганглиев в толстой кишке, тогда как животные, гомозиготные по этой мутации (Dom/Dom)погибают во время эмбриогенеза и имеют тяжелые дефекты всех производных НГ в ПНС, включая кишечный аганглионоз[34] [35••] [36••]. Более того, пациенты с врожденным мегаколоном несут различные мутации, которые скорее всего нарушают функцию SOX10 [37] [38••].

    Sox10 экспрессирутся во всех мигрирующих клетках НГ, вносящих вклад в формирование ПНС, включая и предшественников ENS до и во время инвации в мезенхиму кишки [35••] [39]. Однако механизм действия SOX10 пока неясен.


    Endothelin-3 (ET-3)и рецептора эндотелина B (EDNRB) сигнальный путь

    Эндотелины-1, -2 и -3 (ET1-3) входят в состав небольшого семейства из 21 аминокислотных пептидов, которые активируют G-protein-coupled heptahelical рецепторы (см. [40]). Хотя физиологические функции эндотелинов интенсивно изучаются многие годы, однако их роль еще до конца не понята. Показано, что ряд естественно появившихся и полученных таргеттингом мутации затрагивают структуру или экспрессию генов, кодирующих ET-3 или их рецепторы (EDNRB), обусловливают врожденный мегаколон как у человека, так и у мышей [41] [42] [43] [44].
    Зрелые эндотелины получаются из больших молекул-предшественников, называемых препроэндотелины, которые расщепляются энзиматически и продуцируют биологически неактивные промежуточные продукты длиной в 38–41 аминокислоту, называемые "большими эндотелинами" ('big endothelins'). Большие эндтелины постепенно расщепляются с помощью endothelin converting enzyme 1 (ECE-1) до биологически активных эндотелинов длиной в 21 аминокислоту. Биологическое значение биохимичекого пути генерации активных эндотелинов выяснено у мышей, дефицитных по ECE-1 [45•]. Эти мыши имеют черепнолицевые и сердечные аномалии (обусловленые отсутствием продукции биологически активного ET-1) и неспособны генерировать эпидермальные меланоциты и энтерические нейроны и тем самым репродуцирующие фенотип, характерные и для ET-3- и EDNRB-дефицитных животных. Эти находки показывают, что ECE-1 является протеазой, ответственной за формирование in vivo активных ET-1 и ET-3, и что межклеточные пути передачи сигналов с помощью ET-1/ECE-1/EDNRA оси и ET-3/ECE-1/EDNRB оси оба участвуют в развитии отдельных субнаборов NC клеточных клонов [45•].
    Эффекты ET-3 на клетки НГ и их производные зависят от стадии дифференцировки этих клеток. Таким образом, добавление ET-3 в культуры NC, полученные из только что эмигрировавших из нервной трубки клеток, вызывает драматическое увеличение скорости пролиферации и генерацию большого числа меланоцитов [46]. Однако эффекты ET-3 на энтерические клетки НГ, выделенные из кишки эмбрионов позвоночных совсем другие. В этом случае активация сигнального пути ET-3/EDNRB, по-видимому, ингибирует дифференцировку клеток НГ в постмитотические нейроны и тем самым поддерживает их в пролиферативном недифференцированном состоянии [29••] [47•]. Этот эффект не зависит от клеточного цикла. Кроме того ET-3 влияет на созревание и дифференцировку мезенхимных клеток кишки. Таким образом, ET-3 способствует in vitro развитию энтерических гладкомышечных клеток и соответственно ингибирует экспрессию ламинина α1 с помощью этих клеток [47•]. Возможно, что и in vivo, ET-3 (который продуцируется исключительно клетками кишки, не происходящими из НГ ) также направлен на множественные клеточные мишени, такие как мезенхимные гладкомышечные клетки кишечника плода и энтерический нервный гребень, который экспрессирует EDNRB.


    Онтогенетический потенциал энтерического НГ
    Нейральные стволовые клетки являются самовозобновляющимися мультипотенциальными предшественниками, которые могут генерировать широкий круг нейрональных и глиальных типов клеток внутри данного органа. In vitro исследования, в которых были выделены предшественники энтерической НС из кишки E14 эмбрионов крыс и помещены в клональные клеточные плотности было подтверждено, что вскоре после инвазии мезенхимы кишки, онтогенетический потенциал большой фракции энтерических клеток НГ ограничивается и что они необратимо детерминируются в направлении специфических путей дифференцировки [27]. Др. исследования, однако, указывают на то, что энтерические клетки НГ остаются в мультипотентном состоянии в течение обозримого периода после момента инвазии кишечника плодов млекопитающих. Так, производные НГ клетки, изолированные из кишечника эмбрионов крыс были способны давать потомство, экспрессирующее нейрональные или глиальные фенотипы в массовой культуре. [48]. Более того обратная трансплантация сегментов кишки в миграторные пути НГ у молодых эмбронов показали, что энтерические клетки НГ сохраняют свою способность мигрировать в удаленные сайты и экспрессировать нейрональные и глиальные маркеры[49] [50]. Энтерические Нг клетки вносили в кишку плода, поддерживаемую в органной культуре. Производные НГ клетки, взятые из кишечника эмбрионов мыши на ст. E11.5 самообновлялись и сохраняли множественый потенциал, генерируя потомство, экспрессирующее нейрональные и глиальные маркеры [25••]. Сходные самообновляющиеся мультипотентные предшественники идентифицированы в производных НГ клетках, выделенных из периферических нервов плодов крыс [51••]. Идентификация и изучение мультипотентных НГ стволовых клеток позволит ответить на некоторые вопросы детерминации и дифференцировки.

    Conclusions
    In vitro и in vivoидентифицированы некоторые внеклеточные и внутриклеточные молекулы, которые имеют (или скорее могут иметь) значение для разных аспектов гистогенеза энтерической НС. Описаны фенотипы многих мутаций генов млекопитающих и эффекты различных сигнальных путей in vitro. Имеющаяся информация позволяет очертить только в общем молекулярные и клеточные взаимодействия, управляющие формированием энтерических ганглиев (Fig. 2). Согласно такой модели, большая часть предшествеников энтерической НС генерируется стволовыми клетками НГ (NCSCs) [52], которые эмигрируют из заднего мозга и передних частей спинного мозга и мигрируют вентрально к шейным веточкам лорсальной аорты и передней кишке (Fig. 1 [7]). Во время этой пре-энтерической фазы миграции NCSCs, предназначенные для колонизации кишки экспрессируют SOX10, но негаивны в отношении RET RTK (SOX10+/ RET-). Перед вступлением в переднюю кишку и под влиянием локальных сигналов НГ-производные предшественники энтерической НС (NCEPs) индуцируют экспрессию RET (SOX10+/ RET+). Микроусловия в стенке кишки и влияние GDNF — и возможно других членов GDNF-related семейства нейротрофных факторов — SOX10+/ RET+ NCEP клетки поддерживают свою мультипотентну способность, пролиферируют и колонизируют весь кишечник. 'Assisting' the GDNF (neurturin)/RET сигнаьного пути являются другими диффундирующими молекулами, такими как ET-3 и ее рецептор EDNRB, активация которых предупреждает терминальную дифференцировку NCEP клеток и позволяет пролиферативным сигналам вызывать максимальный эффект. Параллельно с пролиферацией большинство клеток, фракция NCEP клеток, дифференцируется и дает зрелые (постмитотические) нейроны и позднее, клетки глии. Возможно, что подавление экспрессии c-Ret является пререквизитом для дифференцировки глиальных клеток

    Рис.2 Схематическое представление неоторых молекулярных и клеточных взаимодействий, которые важны для развития энтерической НС млекопитающих. NCSC, стволовые клетки НГ; NCEP, производные НГ предшественники энтерической НС (Modified from [25••].)

    Когда количество NCEP клеток в кишке увеличивается и значительное их число дифференцирующихся клеток накапливается (под комбинированным влиянием GDNF и ET-3), скорость увеличения числа клеток и дифференцировка снижаются, чтобы соответствующие количества типов зрелых клеток аггрегировали и формировали функциональыне энтерические ганглии. Это скорее всего связано со снижением эффективной концентрации нейротрофных факторов, продуцируемых стенкой кишки (таких как GDNF) и снижением чувствительности NCEP клеток к активации cognate signalling receptors (таих как RET). Однако, возможно, что небольшое число NCEP клеток выживает в кишке в течение все жизниживотного и что при соответствующих условиях таие клетки способны дифференцироваться в дополнительные нейрональные и глиальные клетки. RET-экспрессирующая субпопуляция энтерических нейронов, по-видимому, нуждается в нейртурине (neurturin) для своео выживания и нормальной функции. Пока неясно, участвую ли описанные выше молекулы и взаимодействия в пролиферации и дифференцировке НГ-производных предшественников кресцовой энтерической НС.
    Сайт создан в системе uCoz