Посещений:
РЕГУЛЯЦИЯ ДЛИНЫ И ПОДВИЖНОСТИ РЕСНИЧЕК
Роль 3-OSTs
|
Differential roles for 3-OSTs in the regulation of cilia length and motility Judith M. Neugebauer, Adam B. Cadwallader, Jeffrey D. Amack, Brent W. Bisgrove and H. Joseph Yost
2013Development140, 3892-3902 |
As cells integrate molecular signals from their environment, cell surface receptors require modified proteoglycans for the robust activation of signaling pathways. Heparan sulfate proteoglycans (HSPGs) have long unbranched chains of repetitive disaccharide units that can be sulfated at specific positions by heparan sulfate O-sulfotransferase (OST) families. Here, we show that two members of the 3-OST family are required in distinct signaling pathways to control left-right (LR) patterning through control of Kupffer's vesicle (KV) cilia length and motility. 3-OST-5 functions in the fibroblast growth factor pathway to control cilia length via the ciliogenic transcription factors FoxJ1a and Rfx2. By contrast, a second 3-OST family member, 3-OST-6, does not regulate cilia length, but regulates cilia motility via kinesin motor molecule (Kif3b) expression and cilia arm dynein assembly. Thus, two 3-OST family members cell-autonomously control LR patterning through distinct pathways that regulate KV fluid flow. We propose that individual 3-OST isozymes create distinct modified domains or 'glycocodes' on cell surface proteoglycans, which in turn regulate the response to diverse cell signaling pathways.
Рисунки к статье
|
Молекулярные взаимодействия во внеклеточном матриксе и на клеточной поверхности важны для динамической регуляции передачи межклеточных сигналов. На клеточной поверхности heparan sulfate proteoglycans (HSPGs) , как известно, модулируют взаимодействия между рецепторами и лигандами (Rapraeger et al., 1991; Yayon et al., 1991; Bellaiche et al., 1998; Tsuda et al., 1999; Belenkaya et al., 2004; H?cker et al., 2005). Цепочки heparan sulfate (HS), прикрепленные к стержневому белку, чередуются с глюкуроновой кислотой и остатками N-ацетилглюкозамина, которые подвергаются серии модификаций, включая сульфатирование, чтобы создать зрелые длинные, неветвящиеся HS цепочки. Стержневые белки HSPG или включаются в клеточную мембрану, прикрепляясь к внеклеточной поверхности клеточной мембраны, или во внеклеточный матрикс. In vivo потеря стержневых белков или HS цепочек указывает на то, что HSPGs регулируют множественные онтогенетические процессы, включая гаструляцию и формирование left-right (LR) паттерна (Alexander et al., 2000; Topczewski et al., 2001;Kramer et al., 2002; Kramer and Yost, 2002; Marjoram and Wright, 2011). Менее известно о специфических редких модификациях HS цепочек и их специализированной функции в развитии (HajMohammadi et al., 2003; Kamimura et al., 2004; Tecle et al., 2013).
Добавление сульфатов к HS цепочкам обеспечивается тремя отличающимися семействами heparan sulfate O-sulfotransferases (OSTs): 2-OSTs, 3-OSTs и 6-OSTs. Члены этих семейств обнаруживают динамичную пространственную и временную регуляцию во время развития позвоночных (Shworak et al., 1999; Habuchi et al., 2000; Xia et al., 2002; Nogami et al., 2004; Xu et al., 2005; Cadwallader and Yost, 2006b; Cadwallader and Yost, 2006a). Внутри этих мультигенных семейств в пути биосинтеза HS цепи семейство 3-OST наиболее богатого изозимами, но ответственно только за 0.5% от всех сульфатаций HS цепи (Colliec-Jouault et al., 1994;Shworak et al., 1999). Предполагая, что каждый член семейства 3-OST выполняет одну и ту же биохимическую функцию, сульфатирование гидроксильной группы по 3-углероду на избранных остатках глюкозамина в цепи HS (Colliec-Jouault et al., 1994; Shworak et al., 1999), интересно, почему существует столь много членов семейства 3-OST у позвоночных (Cadwallader and Yost, 2013). Мы проверяли гипотезу, что каждый член семейства 3-OST обладает самостоятельной контекст-зависимой, неперекрывающейся функцией в развитии.
У всех позвоночных сердце, головной мозг и кишечник развиваются лево-правосторонней асимметрией, которая является критической для нормального функционирования органа (Yost, 2001; Hamada et al., 2002; Bisgrove et al., 2003; Levin, 2005;L?pez-Gracia and Ros, 2007). Асимметрия этих органов зависит от консервативного каскада асимметричной экспрессии в левой lateral plate mesoderm (LPM) семейств генов nodal, lefty и pitx2. Некоторые вышестоящие компоненты вносят вклад в обычную асимметричную экспрессию генов в LPM, включая (1) зависимый от ресничек ток жидкости в 'ciliated organ of asymmetry' в задней части срединной линии эмбриона, в узелке у мышей (Zhou et al., 1993), Kupffer's vesicle (KV) у рыбок данио (Essner et al., 2005) и медака (Hojo et al., 2007; Soroldoni et al., 2007) и в gastrocoel roof plate у Xenopus laevis (Schweickert et al., 2007), (2) от неповрежденной эмбриональной срединной линии (Danos and Yost, 1995; Danos and Yost, 1996; Chen et al., 1997; Meno et al., 1998; Yamamoto et al., 2003), and (3), по крайней мере, у Xenopus от молекулярной асимметрии на стадии дробления и гаструлы (Danos and Yost, 1995;Kramer and Yost, 2002; Yamamoto et al., 2003; Adams et al., 2006), которые предшествуют появлению ресничек (Essner et al., 2002). Несколько важных сигнальных путей участвует в становлении LR асимметрии, включая Shh, fibroblast growth factor (FGF), bone morphogenetic protein (BMP) и Wnt пути (Albertson and Yelick, 2005;Levin, 2005; Hong and Dawid, 2009; Neugebauer et al., 2009).
У рыбок данио, по крайней мере, пять членов семейства 3-OST обычно экспрессируются в клетках с ресничками из KV (Cadwallader and Yost, 2006a). Чтобы установить, действительно ли индивидуальные члены семейства 3-OST выполняют самостоятельные клеточные и онтогенетические функции, мы подвергали нокдауну каждый член семейства путем инъекций morpholinos (MOs; антисмысловых олигонуклеотидов) и оценивали реснички KV и формирование нижестоящего паттерна LR у рыбок данио. Удивительно, два из 5 членов семейства, экспрессировавшихся в клетках с ресничками из KV, 3-OST-5 (gene name: hs3st1l2) и 3-OST-6 (gene name: hs3st3l), играли самостоятельные роли в регуляции подвижных KV ресничек, указывая на неперекрываемость функции в семействе 3-OST.
Мы предположили, что специфические паттерны сульфатирования на HS цепочках создают 'glycocodes', который регулируется онтогенетически, клеточно-специфически и в конечном итоге придает специфичность большинству клеточных сигнальных путей (Cadwallader and Yost, 2013). Вообще-то небольшие субнаборы из огромного количества возможных комбинаций модификаций HS цепочек используются в качестве мест (gatekeepers) для специфических молекулярных взаимодействий, таких как взаимодействия лиганд-рецептор. Если это так, раскрытие биоинформации, потенциально заключенной в последовательностях цепочек HSPG, позволит сделать существенный скачок в нашем понимании передачи сигналов клетками. Первый постулат гипотезы гликокода - это, что каждый член семейства OST выполняет самостоятельную функцию: одну и ту же каталитическую реакцию, но контекст-зависимым способом, генерируя различающиеся последовательности модификаций на HS цепочках (Cadwallader and Yost, 2013). Мы проверяли этот постулат и установили, что индивидуальные члены семейства 3-OST выполняют самостоятельные функции, модулируя самостоятельные пути внутри одной и той же клетки во время развития.
DISCUSSION
Здесь мы предоставили первые доказательства in vivo у позвоночных, что два близко родственных энзима биосинтетического пути HS, 3-OST-5 и 3-OST-6, выполняют самостоятельные клеточные и онтогенетические функции в одной и той же клетке. Важно, что, по крайней мере, два др. члена, 3-OST-3Z и 3-OST-7, экспрессируются в этих же клетках, но неспособны компенсировать их функции, а нокдаун этих двух 3-OSTs не вызывает дефектов формирования LR паттерна. Поразительно, что нокдаун двух членов семейства 3-OST ведет к одинаковому онтогенетическому конечному фенотипу, изменению LR асимметрии органов, благодаря клеточно автономным функциям в клетках с ресничками из KV. Однако, нокдаун каждого из этих двух 3-OSTs приводит к этому конвергентному LR фенотипу посредством, по-видимому, дискретных клеточных и молекулярных механизмов (Fig. 6): 3-OST-5 регулирует длину ресничек посредством экспрессии FGF-зависимого дающего реснички транскрипционного фактора, а 3-OST-6 регулирует подвижность ресничек посредством экспрессии kinesin и морфологии плеч dynein ресничек.
Fig. 6.
Glycocode model: 3-OST-5 and 3-OST-6 regulate distinct cell signaling pathways for ciliogenesis and cilia motility.Schematic of glycocode regulation of cilia length and cilia motility. 3-OST-5 and FGF pathway perturbations have the same downstream molecular and short cilia phenotypes, and display dose-dependent genetic interactions. Therefore, we propose that 3-OST-5 generates a glycocode (blue) on HS chains on proteoglycans (indicated by HSPGs) that modulates interactions of FGF ligands (for example, Fgf8 and Fgf24) and Fgfr1 at the cell surface. It is important to note that the modifications can be on the same HSPG core protein (as shown HSPG for simplicity) or multiple different HSPGs in the same cell. This interaction activates downstream ciliogenic transcription factors includingfoxj1a and rfx2 for normal length KV cilia. By contrast, 3-OST-6 generates a different glycocode (green) that modulates a distinct pathway regulating kif3bexpression, dynein arms and cilia motility.
3-OST-5 контролирует длину ресничек посредством пути, который контролирует экспрессию двух продуцирующих реснички транскрипционных факторов в KV, foxj1a и rfx2, и чувствительного к FGF гена sef. Fgfr1 и 3-OST-5 имеют сходные функции: они регулируют DFC/KV экспрессию foxj1a и rfx2, длину ресничек и асимметричный ток жидкости в KV, и необходимы клеточно автономно в клетках KV для формирования LR (Neugebauer et al., 2009). Кроме того, они имеют сходные фенотипы, такие как искривление оси тела, которое одинаково у морфантов или мутантов по ciliogenic генам, таким как polaris (ift88) и foxj1a (Bisgrove et al., 2005; Yu et al., 2008;Tian et al., 2009; Hellman et al., 2010). Т.о., вполне возможно, что передача сигналов 3-OST-5 и Fgfr1 действуют на одном и том же ciliogenic пути, регулируя возникновение LR асимметрии; это в дальнейшем подтверждено экспериментами с дозой 3-OST-5 и Fgf8 лиганда (Fig. 3). Мы полагаем, что 3-OST-5 в клетках DFC/KV генерирует гликокод, необходимый для передачи сигналов FGF на клеточную поверхностью, который затем поддерживает нижестоящий ciliogenic путь контроля длины ресничек (Fig. 6). Интересно, что вовлечение 3-OST-5 в путь передачи сигналов FGF, по-видимому, тканеспецифичен. Напр., 3-OST-5 обнаруживает дефекты в отолитах, но не дает дефектов пронефрических протоков, наблюдаемых у fgfr1 морфантов (Neugebauer et al., 2009) (data not shown). Подавление мишеней FGF пути у 3-OST-5 морфантов уникально для DFCs во время раннего эмбрионального развития (Fig. 3G,H), это указывает на то, что др. комбинации гликокода участвуют в передаче сигналов FGF в др. тканях. Предварительная проверка предполагаемых мутантов 3-OST-5 не выявила эмбриональных фенотипических отклонений (data not shown). Принимая во внимание вносимую матерями историю из нескольких членов семейства в эмбрион (Cadwallader and Yost, 2006a), необходим дальнейший анализ материнских-зиготических мутантов по этому и др. членам семейства, вообще-то на разных генетических фонах линий для полного понимания функциональных взаимоотношений в семействе 3-OST и необходим анализ последних фенотипов, которые находятся вне пределов достижений технологии morpholino.
Как у fgfr1 MO- , так и 3-OST-5 MO-обработанных эмбрионов, стало до некоторой степени неожиданным, что экспрессия foxj1a уменьшается, но экспрессия, dnah9 относительно нормальная (Neugebauer et al., 2009), в противоположность др. сообщениям о связи экспрессии dnah9 с foxj1a (Yu et al., 2008; Hellman et al., 2010; Caron et al., 2012). Экспрессия foxj1a пробуждается рано, во время 30% эпиболии (Aamar and Dawid, 2008), и инициируется с помощью Wnt/β-catenin пути (Caron et al., 2012). Мы полагаем, что передача сигналов FGF, а теперь и 3-OST-5, необходимы для поддержания экспрессии foxj1a. Потеря этого пути приводит к редукции экспрессии мРНК foxj1a, но вообще-то достаточное количество раннего белка Foxj1a доступно, чтобы инициировать экспрессию dnah9. Важно отметить, что при нокдауне 3-OST-5 и Fgfr1 реснички подвижны, несмотря на пониженную экспрессию foxj1a.
В противоположность 3-OST-5, 3-OST-6 контролирует подвижность ресничек, не влияя на их длину, по-видимому, посредством иного пути, который необходим для нормальной экспрессии kif3b и нормального образования LR оси (Fig. 6). Т.о., 3-OST-6 является новым и специфическим регулятором подвижности ресничек, который контролирует организацию или поддержание плеч dynein в ресничках путем генерации определенного гликокода, отличающегося от такового, генерируемого с помощью 3-OST-5. 3-OST-6 морфанты имеют неподвижные, но нормальной длины реснички, что согласуется в относительно нормальной экспрессией у них генов foxj1a и rfx2 ciliogenic транскрипционных факторов. Др. неподвижные мутантные реснички имеют сходный фенотип с таковым морфантов 3-OST-6, такие как LR дефекты, обнаруживаемые у мутантов морских коньков (seahorse) (Serluca et al., 2009), и дефекты аксонемных плеч dynein, обнаруживаемые у мутантов ktu (Omran et al., 2008; Mitchison et al., 2012). Наблюдение, что нокдаун 3-OST-6 у эмбрионов в целом и нокдаун в DFC/KV приводят к разным spaw паттернам экспрессии, следовательно, помимо его клеточно-автономной роли в DFC/KV, 3-OST-6 может также выполнять роль в формировании LR паттерна в других клеточных клонах. Было бы интересно оценить возможность, что 3-OST-6 модулирует отличающийся сигнальный путь, чтобы контролировать транскрипцию kif3b и/или сборку плеч dynein в ресничках путем сортировки грузов. Кроме того, хотя 3-OST6 морфанты имеют очень отличающийся фенотип от того, что при модуляциях Fgf8/Fgf24/Fgfr1 пути, мы не исключаем возможности, что 3-OST-6 модулирует др. компоненты передачи сигналов FGF в DFC/KV или др. тканях.
Мы продемонстрировали, что отличающиеся пути передачи сигналов, регулируются с помощью 3-OST функций в клетках с ресничками. Эти находки подтверждают, что каждый член семейства 3-OST генерирует отличающийся компонент HSPG гликокода на клеточной поверхности клеток с ресничками, вообще-то размещая сульфатирование в специфическом контексте из др. региональных модификаций на HS цепочке (Cadwallader and Yost, 2013). Предыдущие сообщения продемонстрировали, что разные члены семейства 3-OST могут генерировать одни и те же сульфатированные дисахариды in vitro (Shworak et al., 1999; Xia et al., 2002; Xu et al., 2005). К сожалению, современная технология секвенирования HS ограничена приблизительно 6-14 дисахаридами из гомогенного источника in vitro (Stringer et al., 2003; Zaia and Costello, 2003; Thanawiroon et al., 2004; Saad and Leary, 2005; Volpi and Linhardt, 2010). In vivo, HS цепочки колеблются в размерах от 40 до 160 дисахаридов с гетерогенным составом (Esko and Selleck, 2002). Технические успехи в структурном анализе HS необходимы для определения экспериментально последовательностей разных гликокодов и в конечном итоге для определения механизмов, с помощью которых разные члены семейства 3-OST дают функционально отличающиеся гликододы HS. Мы полагаем, что каждый тип клеток использует отличающиеся комбинации членов семейства OST, чтобы создавать разные комбинации гликокодов на клеточной поверхности, чтобы позволить различать мириады межклеточных сигнальных путей, доступных во время развития позвоночных.
|