Как клетки принимают решение давать сенсорную ресничку сетчатки со сложными стеками (stacks) мембран в противовес множественным подвижным ресничкам в эпителиив воздушных путей, чтобы перемещать слизь? Подобно действию гомеотических транскрипционных факторов мы предполагаем, что во время развития программы цилиогенеза приводятся в действие и модифицируются с помощью морфогенетических сигнальных путей и специфических для типа клеток транскрипционных факторов, как селекторные кассеты, чтобы последовательно продуцировать соотв. разнообразие ресничек (Fig. 5). Это особенно важно дя подвижных ресничек, которые продуцируют только специфические типы клеток и тканей. Fig. 5.
Многочисленные сигнальные пути приводят в действие RFX/FOXJ1 сеть цилиогенеза, чтобы сгенерировать подвижные реснички (see Fig. 5). Напр., исследования на эмбрионах рыбок данио, кур и мышей было продемонстрировано, что передача сигналов HH от срединной линии индуцирует экспрессию Foxj1 в реснитчатых клетках вентральной пластинки нервной трубки спинного мозга (Cruz et al., 2010; Yu et al., 2008). Однако, у рыбок данио передача сигналов fibroblast growth factor (FGF) индуцирует как
foxj1, так и
rfx2 в KV (Neugebauer et al., 2009). Более того, во многих тканях рыбок данио передача сигналов WNT, по-видимому, действует ниже пути FGF, чтобы непосредственно контролировать экспрессию
foxj1 посредством сайтов связывания TCF/LEF транскрипционных факторов в промоторе
foxj1 (Caron et al., 2012). Это взаимоотношение между передачей сигналов WNT и экспрессией
Foxj1 законсервировано в
Xenopus GRP (Walentek et al., 2012). Помимо путей HH, FGF и WNT, передача сигналов NOTCH также тесно связана с дифференцировкой подвижных ресничек. В KV рыбок данио передача сигналов NOTCH необходима для собственно экспрессии
foxj1 и цилиогенеза (Lopes et al., 2010), хотя взаимоотношение между путем NOTCH и FGF и WNT в этом контексте пока неясно. В соответствии с этим роль пути NOTCH недавно была открыта в спецификации корректного соотношения генерирующих ток жидкости подвижных ресничек и ощущающих этот ток неподвижных ресничек в
Xenopus GRP (Boskovski et al., 2013). Передача сигналов NOTCH также играет критическую роль в передаче сигналов от предшественников клеток с подвижными множественными ресничками у рыбок данио,
Xenopus и мышей, в этом случае происходит репрессия судьбы клеток с множественнми ресничками (Liu et al., 2007; Ma and Jiang, 2007; Stubbs et al., 2012; Tan et al., 2013). Необходимы дальнейшие исследования, чтобы понять эффект каждого сигнального пути на экспрессию RFX/FOXJ1, и чтобы понять, как эти сигнальные пути независимо регулируют дополнительные гены, чтобы генерировать разнообразие ресничек у эмбрионов животных.
Cell type-specific transcription factors that regulate ciliary diversity
Специфичные для типа клеток транскрипционные факторы также действуют посредством RFX и FOXJ1, чтобы инициировать образование ресничек, в то же время независимо регулируемые специфические аспекты цилиогенеза, чтобы генерировать разнообразие ресничек (see Fig. 5). Напр., чтобы создать сотни подвижных ресничек в клетках воздушных путей млекопитающих или в эпидермисе Xenopus, в первую очередь необходимо сгенерировать сотни базальных телец из которых будут строиться аксонемы. Эти базальные тельца также возникают de novo из прецентриолей, формируемых на поверхности deuterosomes - глобулярных структур, служащих в качестве организующих центров (Anderson and Brenner, 1971; Sorokin, 1968), это только недавно стало определяться молекулярно (Klos Dehring et al., 2013; Zhao et al., 2013). FOXJ1 не нужен для генерации множественных базальных телец, но действует ниже в закреплении базальных телец на апикальной клеточной мембране и для последующего удлинрения аксонем (Brody et al., 2000; Gomperts et al., 2004; You et al., 2004). Недавно coiled-coil домен-содержащий белок, multicilin (MCIDAS), был найден как необходимый для формирования клеток с множественными ресничками в эпидермисе Xenopus и в воздушных путях мышей (Stubbs et al., 2012). В обоих контекстах, транскрипционный фактор MYB действует ниже MCIDAS, чтобы генерировать клетки с множествнными ресничками. Др. фактор, по-видимому, действует перекрываясь с MYB, однако, поскольку MYB-дефицитные клетки воздушных путей обнаруживают задержку, но тотальную потерю образования множественных ресничек (Tan et al., 2013). MYB, как было установлено, необходим для образования клеток со множественными ресничками в почках рыбок данио (Wang et al., 2013). Исходя из экспериментов с потерей функции и избыточной экспрессией, MCIDAS и MYB, по-видимому, действуют в одном пути, при этом MCIDAS действует ниже передачи сигналов NOTCH, но выше MYB, чтобы активировать гены, управляющие образованием базальных телец [такие как Plk4 (polo-like kinase 4) и Stil (Scl/Tal1 interrupting locus)], с одной стороны, и чтобы переключать на FOXJ1для активации генов, необходимых для закрепления базальных телец, роста и подвижности ресничек, с др. стороны (Stubbs et al., 2012; Tan et al., 2013; Wang et al., 2013). Молекулярные детали этого процесса, такие как непосредственные мишени MCIDAS и MYB у предшественников клеток со множественными ресничками, пока неизвестны. Эта информация особенно очевидна в случае MCIDAS, который лишен очевидного DBD в соей структуре, но способен локализовать ядро и, по-видимому, способен активировать транскрипцияю в случае избыточной экспрессии (Stubbs et al., 2012).
Образование подвижных моноцилийв вентральной части узелка у эмбрионов мыши запрограммировано с помощью гомеобоксного транскрипционногофактора NOTO (notochord homeobox). Мыши, лишенные NOTO обнаруживают укороченные и уродливые реснички узелка и потом лево-правосторонюю асимметрию (Beckers et al., 2007). Чтобы генерировать моноцилии узелка, NOTO приводит в действие FOXJ1, который в свою очередь активирует Rfx3. В элегантном эксперименте, Alten с коллегами замещали кодирующий регион мышиного Noto на Foxj1 (Noto::Foxj1), и установили, что в противоположность мутантам Noto, экспрессия генов ресничек (включая Rfx3) восстанавливается и длина и подвижность ресничек до нормальной (Alten et al., 2012). Однако, эти эмбрионы продолжают сохранять дефекты лево-правосторонней асимметрии из-за поляризованной ориентации ресничек пузырька, это зависит от пути планарной клеточной полярности (PCP) (Hashimoto et al., 2010; Song et al., 2010), остающейся разрушенной у Noto::Foxj1 мышей. Т.о., NOTO, по-видимому, активирует Foxj1 и Rfx3, чтобы генерировать аксонемы подвижных ресничек узелка, тогда как независимо устанавливается правильное заднее позиционирование клеток узелка за счет активации PCP пути (Alten et al., 2012).
У
Drosophila, пронейральный транскрипционный фактор Atonal (ATO) управляет дифференцировкой хордотональных нейронов. Как часть этой программы, ATO активирует экспрессию как
fd3F, так и
Rfx, чтобы генерироватьin подвижные механосенсорные реснички, которые исходят от этих нейронов (Cachero et al., 2011). Интересно, что ATO, как было установлено, также непосредственно активирует экспрессию компонента ресничек, Dilatory/CEP131, демонстрируя, что ATO может вносить вклад в цилиогенез независимо от кассеты RFX/FD3F (Cachero et al., 2011; Ma and Jarman, 2011). В самом деле, эта функция ATO может представлять собой фундаментальный механизм генерации механосенсорных ресничек, поскольку у рыбок данио ортолог ATO (ATOH1B) активирует паралог
foxj1 в волосковых клетках внутреннего уха, приводя к образованию неподвижного киноцилия (Yu et al., 2011).
Target genes of core ciliary transcription factors can generate ciliary diversity
У C. elegans и Drosophila, транскрипционные программы, функционирующие, чтобы вызывать разнообразие типов неподвижных ресничек, начинают расшифровываться. Эти исследования показали, что RFX факторы, в дополнение к регулирующим блокам для всех ресничек, могут также играть роль в селекции разных подтипов первичных ресничек посредством одного из многих механизмов. Напр., RFX C. elegans, DAF-19, способен прямо активировать гены, кодирующие специфические факторы, необходимые только определенным специализированным подтипам сенсорных ресничек. Примеры этих специфических мишеней ресничек включают dyf-2/ift144 и ядерный гормонаьный рецептор nhr-44, экспрессирующийся только в субнаборе нейронов с ресничками у червей (Burghoorn et al., 2012). Чтобы осуществить эту специфичную для типа клеток индукцию экспрессии, DAF-19, по-видимому, действует совместно с транскрипционными кофакторами, пока ещё не обнаруженными. Подтверждениме этому является присутствие дополнительного мотива ДНК в тесной близи к X-box, наз. C-box enhancer, в цис-регуляторных регионах субнабор из DAF-19 управляет мишенями, широко экспрессирующимися во всех нейронах с ресничками (Burghoorn et al., 2012; Efimenko et al., 2005).
У мух дифференциальные уровни экспрессии гена Rfx иллюстрируют др. механизм программирования специализации ресничек. Низкие уровни RFX гарантируют экспрессию основных генов ресничек во всех сенсорных нейронах, так как многие из этих генов кодируют IFT компоненты. Напротив, высокие уровни RFX могут управлять экспрессией генов, необходимых для специализации ресничек, таких как CG6129/Rootletin, необходимых для продукции специализированных подвижных ресничек (Cachero et al., 2011; Newton et al., 2012).
Третий, базирующийся на RFX, механизм генерации разнообразия ресничек, наблюдается у C. elegans, где разные изоформы DAF-19 регулируют экспрессию разных генов ресничек в разных типах клеток, вообще-то посредством механизма, не зависящего от X-box. Каноническая изоформа DAF-19C регулирует основные гены ресничек, включая многие из IFT компонентов. Альтернативная изоформа, DAF-19M, индуцируемая с помощью транскрипционного фактора EGL-46, чтобы активировать экспрессию генов механосенсорных рецепторов lov-1 и pkd-2, и kinesin-like protein klp-6 в специфичных для самцов нейронах HOB с ресничками (Wang et al., 2010; Yu et al., 2003).
DAF-19 может также экспрессировать экспрессию специфичных для определенных типов клеток регуляторные факторы, такие как forkhead фактор FKH-2, который в свою очередь активирует гены, необходимые для привдения в действие различных морфологических аттрибутов ресничек. В AWB чувствительных к запахам нейронах C. elegans, FKH-2 активирует kinesin II субъединицу kap-1, которая вносит вклад в паттерн специфического ветвления ресничек на этих нейронах (Mukhopadhyay et al., 2007).
Наконец, разнообразие ресничек может также генерироваться за счет специфичных для типов клеток транскрипционных факторов, действующих параллельно или независимо от транскрипционных модулей ресничек. Напр., регулятор транскрипции млекопитающих HNF1β, как было установлено, регулирует экспрессию генов, кодирующих механорецепторы PKHD1 и PKD2 в почках, это позволяет почечным ресничкам ощущать ток мочи (Gresh et al., 2004). Др транскрипционный фактор, SOX5, прямо регулирует экспрессию гена, кодирующего компонент аксонемной центральной пары, SPAG6, в бронхиолярных клетках с ресничками у человека. В этих примерах, SOX5 и FOXJ1, по-видимому, действуют независимо, чтобы активировать экспрессию этого гена ресничек (Kiselak et al., 2010), демонстрируя др. транскрипционный путь генерации клетками разнообразия ресничек.
Conclusions
Ciliated cells have the fundamental problem of precisely coordinating the expression of a complex suite of genes in order to produce functional cilia. Even though the importance of transcriptional regulation in ciliary differentiation was first appreciated through studies of flagellar regeneration in Chlamydomonas (Stolc et al., 2005), it is in the metazoans where we find that a set of dedicated transcriptional regulators have been specially delegated for this purpose. Drawing on the cumulative data discussed above, we propose that the expression of genes to create a basic, immotile ciliary template is directed by the RFX transcription factor family. Layering of FOXJ1 control onto this basic program allows a cell to differentiate motile cilia. It will be apparent from this Review that significant gaps remain in our understanding of many aspects of these two major ciliary transcriptional modules. We speculate that much of the future attention will be centered on how the 'bells and whistles' unique to the different cilia subtypes are derived from the combinatorial action of the RFX factors and FOXJ1. In addition, there is a need to better understand how these two transcriptional programs are modified by signaling pathways and cell type-specific transcription factors in order to activate specific target genes and generate different kinds of cilia. The findings from these transcriptional studies will have to be integrated with other established mechanisms for generating ciliary diversity, such as variations in IFT (reviewed by Silverman and Leroux, 2009), translational control [e.g. by microRNAs (Marcet et al., 2011; Wang et al., 2013)], membrane trafficking (Olivier-Mason et al., 2013) and post-translational modifications of ciliary components, such as acetylation and glutamylation of tubulin (reviewed by Konno et al., 2012). Importantly, all of this information will have a profound impact on our understanding of how defects in the proper differentiation and function of cilia can cause such a wide and rapidly expanding spectrum of diseases in humans.