Основная оценка подтипов MN subtype может быть получена при определении профиля экспрессии Hox генов и дополнительных факторов, таких как FoxP1 (Amoroso et al., 2013). Альтернативные методы иммуногистохимии включают гибридизацию
или qRT-PCR одиночной клетки, которые могут позволить определить экспрессию мРНК маркеров в одиночной MN клетке. Необходимо подчеркнуть, что хотя экспрессия канонических MNs маркеров, как было установлено, является надежным индикатором др. характеристик MN, экспрессия небольшого количества маркеров самих по себе недостаточна для измерения, чтобы оценить успешность стратегии дифференцировки. По этой причине, геномный анализ транскрипционных профилей очищенных MNs с помощью секвенирования РНК или микромассивов представляет собой более эффективную стратегию для оценки MNs и их эквивалентности с
MNs.
первичной функцией всех нейронов является трансмиссия электрохимических сигналов, свойство, которое необходимо для поддержания градиентов напряжения (voltage) на клеточной мембране. Точная комбинация ионных насосов, ионных каналов и рецепторов, внедренных в мембрану позволяет разным типам нейронов интерпретировать и реагировать уникально на стимулы. Физиологические записи продемонстрировали, что MNs, полученные in vitro исползуют множественные стратегии и обладают множественными электрофизиологическими характеристиками, имеющими отношение к функции и circuitry двигательных нейронов (Fig. 3B). Как происходящие из стволовых клеток MNs, так и iMNs отвечают на воздействие GABA, glutamate и glycine повышением внутренних (inward) токов, показывая, что они экспрессируют соотв. рецепторы и могут извлекать корректную реакцию на эти стимулы (Miles et al., 2004;Boulting et al., 2011; Son et al., 2011; Amoroso et al., 2013). MNs, продуцируемые in vitro также обладают спонтанной активностью, экспрессируя ряд активируемых напряжением каналов и могут возбуждать потенциалы действия в ответ на короткое воздействие током (current injections), также как и генерировать переходы кальция в ответ на kainate (Boulting et al., 2011; Son et al., 2011; Amoroso et al., 2013). Некоторые электрофизиологические фенотипы MNs, полученных in vitro, зависят от времени, проведенном в культуре, включая снижение резистентности к входящим сигналам (input), адаптацию к частотам spike и отдачу от возбуждения потенциала действия (Miles et al., 2004; Takazawa et al., 2012).
Как и в случае с молекулярными маркерами MNs, одной стереотипической электрофизиологической реакции недостаточно, чтобы охарактеризовать клетки как MNs. Важно также отметить, что разные типы MNs обладают различиями в паттернах возбудимости и действия (firing) и что эти реакции как только MNs созревают
in vitro и in vivo (Kanning et al., 2010). Напр., эмбриональные и постнатальные MNs крыс обнаруживают заметные различия в амплитуде и скорости потенциала действия, а также различную чувствительность к нейротрансмиттерам (Gao and Ziskind-Conhaim, 1998). Поскольку фиксация потенциала индивидуальных клеток представляет собой технически трудно выполнимый и низко эффективный метод, то часто трудно определить степень, с которой элекрофизиологические характеристики варьируют между клетками одной и той же культуры. Новые достижения, такие как мультиэлектродные подходы (arrays) могут позволить более глобальную оценку многих клеток параллельно и предлагают благоприятную возможность скринировать многие генетические фоны и последствия действия лекарств по изменениям электрофизиологической активности.
Formation of NMJs and in vivo engraftment
Главной функцией MNs in vivo является иннервация мышц мишеней и интеграция сигналов от ЦНС, позволяющая скоординировать мышечное сокращение и передвижение тела. Т.о., в конечном счете доказательством того, что происходящие in vitro MNs воспроизводят свих аналогов in vivo является способность постоянно встраиваться во взрослый спинной мозг, чтобы давать проекции к соотв. мишеням и восстанавливать связь от поврежденной ЦНС посредством формирования NMJs.
На более базовом уровне ясно, что происходящие из PSC мыши и человека MNs, также как и iMNs могут формировать функциональные NMJs in vitro, если совместно культивируются с мышечными волокнами (Miles et al., 2004; Son et al., 2011) (Fig. 3C). Образование кластеров из ацетилхолиновых рецепторов на мышечных трубках по соседству с развивающимися аксонами наблюдается в течение одного дня совместного культивирования с MNs, дифференцированными из ESCs мыши. Спустя 2 дня после инициации совместной культуры, потенциалы с небольших концевых пластинок могут обнаруживаться путем фиксации потенциала иннервированных мышечных трубок (Miles et al., 2004). Помимо электрофизиологической реакции в происходящих из PSC MNs или iMNs, иннервированные мышечные трубки начинают обнаруживать скоординированные сокращения, которые могут быть устранены c помощью ингибитора обратимых ацетилхолиновых рецепторов кураре (Miles et al., 2004; Son et al., 2011) (Fig. 3C). Хотя образование кластеров из ацетилхолиновых рецепторов на мышечных трубках является характерным признаком образования NMJ, но ничего не известно, могут ли разные субстраты способствовать образованию кластеров ацетилхолиновых рецепторов даже в отсутствие MNs (Peng and Cheng, 1982; Gingras et al., 2009). Поэтому важно также оценить функциональность NMJs. Недавние доказательства в оптогенетике открыли возможность искусственного преобразования MNs, которые экспрессировали активируемые светом каналы родопсинов, так что нейрональная активность и как следствие контракции мышечных трубок, могли быть индуцированы просто освещением светом специфической длины волны совместной культуры (Weick et al., 2010; Tye and Deisseroth, 2012). Способность тонкого контроля активации MN д. позволить более углубленные исследования формирования синаптических соединений in vitro ит могут бы предоставить способ контроля активности MN, имплантированных in vivo. Более того, поскольку NMJs,как было установлено, подвергаются зависимой отвозраста дегенерации, то у мышей дикого типа и у трансгенных моделей ALS, было бы чрезвычайно интересно установить, могут ли эти события быть воспроизведены и изменены in vitro (Valdez et al., 2010; Valdez et al., 2012).
Помимо образования функциональных нейромышечных сосединений при совместном культивировании с мышечными трубками, трансплантационные эксперименты показали, что происходящие in vitro MNs способны интегрироваться в развивающийся спинной мозг. Вообще-то благодаря лени манипуляций, большинство исследований было осуществлено с использованием эмбрионов кур (Wichterle et al., 2002; Soundararajan et al., 2006; Son et al., 2011; Amoroso et al., 2013). Напр., трансплантации дифференцированных MNs и промежуточных нейронов от Hb9::GFP репортерной линии ESC в нервную трубку эмбрионов кур продемонстрировали жизнеспособность большинства GFP+ MNs после трансплантации. Важно, что хотя дорсо-вентральное положение трансплантата не контролировалось, GFP+ MNs располагались в вентро-латеральном домене, тогда как промежуточные нейроны (маркированные c помощью специфичных для грызунов антител к Lim2) обнаруживались в дорсо-вентральном домене (Wichterle et al., 2002). Кроме того, трансплантированные Hb9::GFP+ MNs дифференцированные из ESCs мышей,как было установлено, проецируют аксоны на периферию, где они достигают мышечных мишеней и обнаруживают полностью сформированные окончания, экспрессирующие множественные синаптические маркеры (Wichterle et al., 2002; Soundararajan et al., 2006). Сходные результаты были получены при использовании происходящих из ESC MNs человека, а также iMNs мыши (Son et al., 2011;Amoroso et al., 2013).
Доказательство, что полученные in vitro MNs могут правильно встроиться в развивающийся спинной мозг, подтверждает элегантное исследование с использованием различных малых молекул, чтобы управлять дифференцировкой ESCs мышей в специфические два подтипа MN: шейные MMC MNs и плечевые LMC MNs. Когда GFP-меченные LMC MNs смешивались с RFP-меченными MMC MNs и инъецировались в нервную трубку эмбрионов кур, то тела клеток эти х нейронов располагались в соотв. доменах внутри спинного мозга, а их аксоны проецировались к мишеням, предсказываемым экспрессией их транскрипционных факторов (Peljto et al., 2010) (Fig. 3D). Недавно работа Corti и коллег продемонстрировала, что MNs дифференцированные из генетически исправленных SMA iPSCs могут переживать трансплантацию и правильно встраиваться в спинной мозг однодневных мышей, моделирующих SMA (Corti et al., 2012). Более того, эти клетки могли улучшать фенотипические отклонения болезни и удлинять продожите6льность жизни SMN мутантных мышей, по крайней мере частично, предоставляя нейротрофическую поддержку (Corti et al., 2012). Было показано, что происходящие из ESC MNs, будучи трансплантированными в тибиальный нерв взрослых животных, смогли формировать функциональные NMJs и ослаблять мышечную дистрофию, вызываемую пересечением нерва (Yohn, et. al 2008).
В целом трансплантационные исследования предоставили строгие доказательства, ч то происходящие из PSC MNs и iMNs обнаруживают сильное сходство с их аналогами
in vivo. Однако эти исследования технически затруднительны, в основном качественные и предоставляют ограниченные возможности для механистического исследования. Поскольку способность генерировать MNs
in vitro c помощью разных методов продолжает прогрессировать было бы важно достичь консенсуса от наилучших практик для оценнки MNs. Взятые в отдельности, экспрессия генов, электрофизиологическая реакция и образование NMJ
in vitro являются по нашему мнению недостаточными показателями успешности стратегий дифференцировки MN . Мы полагаем, что многоуровневые подходы , которые комбинируют каждый из этих показателей, позволят оценить разнообразные аспекты биологии MN .
Concluding remarks and perspectives
Decades of research into CNS development and spinal MN specification have been synthesized to allow the in vitro generation of MNs through diverse methods. These cells can provide additional mechanistic insights into developmental principles and MN biology, though perhaps their most exciting application is the prospect of modeling human MN diseases. Several studies have shown the usefulness of these cells in studying the mechanisms of neural degeneration. For example, human MNs have been shown to exhibit selective sensitivity to glia cells expressing a mutant gene linked to ALS (Di Giorgio et al., 2008; Marchetto et al., 2008). Additionally, multiple groups have reported disease-specific phenotypes in differentiated iPSC-derived MNs from patients with SMA (Ebert et al., 2009;Chang et al., 2011; Corti et al., 2012; Wang et al., 2013) or ALS (Bilican et al., 2012;Egawa et al., 2012; Donnelly et al., 2013; Sareen et al., 2013). Building on this, the in vitrogeneration of MNs via direct conversion of fibroblasts may additionally accelerate disease-modeling studies with patient cells, as it does not require the time-consuming step of iPSC generation and characterization. iMNs could be utilized to provide a snapshot of disease processes from a large cohort of patient fibroblasts, and cell lines showing particularly interesting phenotypes could be then reprogrammed into iPSCs to allow the production of differentiated MNs in large quantities for further studies.
The progress in producing and understanding MNs has been remarkable; however, substantial challenges still remain. The molecular diversity of MN subtypes in vivo is only partially understood. Perhaps as a consequence of this, only a small number of markers are currently used to evaluate MN subtypes generated in vitro, and the extent to which altering methods of MN production may influence the resulting subtypes is largely unknown. The application of RNA sequencing, single-cell qRT-PCR and proteomics approaches will allow comprehensive comparison of MNs generated via different strategies. Moreover, as genome-wide interrogation of bona fide human MNs is only possible through laser-capture of post-mortem samples (Ravits et al., 2005), high-throughput analysis of human PSC-derived MNs as well as human iMNs may provide additional insights into the biology of human spinal MNs.
Regardless of the strategy used to generate MNs, downstream applications warrant careful consideration of the experimental conditions used for plating and culturing these cells. These include variations in the methods of dissociation, cell density, substrate, media composition and cellular heterogeneity of the cultures (Sandoe and Eggan, 2013). Without controlling for and understanding these variables, we run into the risk of comparing the MN 'apples' generated and cultured by one protocol or in one laboratory to the MN 'oranges' generated by another.
Spinal MNs were among the first specific neuronal cell types to be derived from PSCs and the rapid progress made towards making MNs in vitro might have provided inspiration to the locked-in Bauby who wondered, 'Does the cosmos contain keys for opening my diving bell? A subway line with no terminus? A currency strong enough to buy my freedom back?' (Bauby, 1998). We are optimistic that continued efforts to collaboratively establish best practices for MN production, culture and evaluation in vitro will provide the keys to unlock novel therapeutic strategies for devastating neurological disorders, including ALS.