Посещений:
формирование височно-нижнечелюстного сустава

Генетический контроль

Genes that regulate morphogenesis and growth of the temporomandibular joint: A review
Robert J. Hinton
Developmental Dynamics Volume 243, Issue 7, pages 864–874, July 2014

Compared with the joints of the limbs, our understanding of the genes that regulate development and growth in the temporomandibular joint (TMJ) is fairly limited. Because the morphogenesis of the secondary cartilage and other intra-articular structures in the TMJ occurs later and in a different manner than in the limbs, the genetic control of TMJ development might reasonably be assumed to differ from that in the limbs. However, studies of the specific genes regulating TMJ morphogenesis and growth have only begun to appear in the literature within the last decade. This review attempts to survey and interpret the existing knowledge on this topic and to suggest fruitful avenues of investigation for the future. Studies to date using knockout and over-expression of candidate genes suggest that a developmental hierarchy of joint structures exists, with condyle development primary. A hierarchy of gene expression also exists:Runx2 and Sox9 expression is critical for condylar cartilage formation. Several of the other genes discussed in this report may regulate TMJ morphogenesis by affecting Sox9 and Runx2 expression and control the ihh-PTHrP axis by means of these genes. Developmental Dynamics 243:864-874, 2014. © 2014 Wiley Periodicals, Inc.

Височно-нижнечелюстной сустав (TMJ) является важным участником роста нижней челюсти в длину и высоту, возникающей в результате эндохондральной оссификации на глубокой поверхности нижнечелюстного мыщелкового хряща MCC). Рост MCC, по-видимому, происходит восновном в ответ на рост средней части лица (midface), который в основном управляется с помощью хрящей основания черепа и носовой полости (Petrovic et al., 1975). Этот "адаптивный" рост, который делает возможным нижнечелюстной рост остается синхронным с таковым срединной части лица, облегчается с помощью уникальных свойств MCC, что связывает его с необычайной историей развития.
Поскольку его морфогенез происходит поздно, во время пренатального развития, поэтому мандибулярный мыщелковый хрящ обозначается как вторичный хрящ в противовес первичным хрящам конечностей и основания черепа (Beresford, 1981). В отличие от этих хрящей мандибулярный мыщелковый хрящ возникает или из клеток, позитивных по щелочной фосфатазе, скорее всего, надкостничного происхождения (Shibata et al., 2002) или как конденсат отдельно от развивающейся кости (Vinkka, 1982; Anthwhal et al., 2008); он развивается по соседству с внутримембранозной костью нижней челюсти, отдельно от Меккелева хряща (Vinkka, 1982; Radlanski et al., 2003). Вторичные хрящи, такие как MCC являются волокнистой хрящевой тканью (fibrocartilages), которая структурно отлична от ростовой пластинки конечности и суставного хряща. Они обнаруживаются временно в некоторых примерах, во многих местах развивающегося черепно-лицевого комплекса (Vinkka, 1982) и сохраняются постнатально в регионах, таких как нижнечелюстной мыщелок, угловой отросток нижней челюсти и межверхнечелюстной шов (Petrovic, 1972; Hinton, 1988). Благодаря его сохранению и роли в росте нижней челюсти, MCC является одним из наиболее важных вторичных хрящей. Во время эволюции TMJ, когда состоящая из многих костей челюсть рептилий изменяется в таковую млекопитающих, то одиночная кость дает приют специализированному росту зубов, надкостница первоначально внутримембранозных костей трансформируется в надхрящницу в подвергающихся силовому воздействию областях, где д. сформироваться "новый" TMJ (Crompton,1985). В TMJ млекопитающих гладкий переход от надкостницы к ответвлению надхрящницы в подвергающемся силовому воздействию нижнечелюстном мыщелке отражает пространственную непрерывность фиброзного и остеогенного слоёв надкостницы с суставным и прехондробластным слоями надхрящницы (Fig. 1). В др. отражении его эволюционного происхождения TMJ образуется за счет трех отдельных мезенхимных конденсатов (мыщелкового, височного и диска), которые растут в направлении др. др. во время развития (Sperber, 2001); в противоположность суставам, использующим первичные хрящевые сочленения, развивающиеся в едином блок мезенхимы.



Figure 1. Continuity of perichondrium in mandibular condylar cartilage with periosteum of adjacent ramus in growing (postnatal) rat. Note how the fibrous layer of the periosteum (long arrows) on the condylar neck is continuous with the articular layer of the condylar cartilage (long arrows). Similarly, note how the osteogenic layer of the periosteum (short arrows) is continuous with the prechondroblastic layer of the condylar cartilage (short arrows). Alcian blue stain.

Вторичный хрящ, такой как нижнечелюстной мыщелковый хрящ, отличается от первичных хрящей наиболее четко по его поверхностным слоям, представленным надхрящницей, клетки которой относительно не дифференцированные (прехондробластные) (Fig. 2), секретируют матрикс, богатый коллагеном типа I скорее, чем коллагеном типа II матрикса, секретируемого хондроцитами (Silberman et al., 1987; Mizoguchi et al., 1990). Это относительно недифференцированные клетки прехондробластной зоны надхрящницы, не хондроциты глубоких слоёв, которые пролиферируют и созревают, чтобы повлиять на рост нижнечелюстного мыщелкового хряща (Petrovic et al., 1975; Carlson et al., 1980). В отличие от пролиферативных хондроцитов первичных хрящевых соединений (inset, Fig. 2), прехондроциты в мыщелковом хряще обладают двойным потенциалом, образуя или хрящ или кость в зависимости от механических сил, воздействующих на ткань (Glineberg et al., 1982; Lydiatt and Davis, 1985). Такая фенотипическая лабильность обеспечивается за счет экспрессии Sox9 и Runx2 РНК (маркеров для хондрогенного и остеогенного пути, соотв. ) в конденсатах мезенхимных клеток и позднее в клетках прехондробластов развивающегося MCC (Shibata et al., 2006) и за счет предпочтительной локализации медиаторов клеточных судеб Notch и Twist в этих клетках (Serrano et al., 2011). Поскольку локальная трансформация надкостницы в надхрящницу, как полагают, происходит в регионах, подвергающихся воздействию биомеханических сил или низкого напряжения кислорода (Hall, 1972), то вторичные хрящи могут сжиматься или замещаться костью, если побудительный стимул уменьшается или исчезает. Многочисленные примеры такого убавления или потери хряща описаны для MCC в ответ на отсутствие движений (Carlson et al., 1980; Glineberg et al., 1982), снижение нагрузки (Bouvier and Hylander, 1984; Hinton, 1998), и помещения в нефункциональное окружение (Duterloo and Wolters, 1971; Petrovic et al., 1975; Englesma et al., 1980).



Figure 2. Histology of the growing (postnatal) mandibular condylar cartilage. A, articular layer; P, prechondroblastic layer; C, chondroblastic layer; H, hypertrophic layer; B, zone of endochondral bone formation. Coronal section, Attwood's stain. Inset: Cranial base synchondrosis, an example of a primary cartilage. Note that all cells are chondrocytes, and that they are oriented in vertical columns (palisades) in contrast to the more multi-directional orientation in the condylar cartilage. Sagittal section, hematoxylin and eosin stain.

В свете такого необычного способа развития и отличительных характеристик делящихся клеток в MCC, не станет неожиданностью, если молекулярные детерминанты развития и роста TMJ будут до некоторой степени отличаться от таковых в первичных хрящевых соединениях. Однако, исследования специфических генов, регулирующих морфогенез и рост TMJ только начинают обнаруживаться, хотя большинство из онтогенетических и структурных отличий известны давно.

Genes Affecting Morphogenesis of the TMJ


Образование височно-нижнечелюстного соединения у мышей (Fig. 3) в основном напоминает последовательность, проявляющуюся у людей: вид мезенхимных конденсатов, которые становятся мыщелком, нижнечелюстным углублением и суставным диском (день эмбриогенеза [E] 13.5), сопровождается дифференцировкой хондроцитов в глубоких слоях MCC (E15.0) и образованием кости в нижнечелюстной ямке. Процесс заканчивается с образованием суставного диска и верхней и нижней суставных полостей (E17.5) (Shibata et al., 1996; Gu et al., 2008). Инактивация некоторых генов, как было установлено, приводит к отсутствию или сильном уменьшению структур на каждой из этих стадий развития.



Figure 3. A: Temporomandibular joint at blastematic stage showing condylar (CO) and temporal (T) blastemas separated by less dense mesenchyme that will form the future disc. Mandibular bone, MB. Mouse, embryonic day 15. Hematoxylin and eosin, sagittal section. B: Temporomandibular joint at cavitation stage illustrating chondro-differentiation of condylar cartilage and formation of joint spaces in progress. Superior joint space is evident (upper right), but inferior joint space is not yet formed. CC, condylar cartilage; AD, articular disc; LPM, lateral pterygoid muscle; TB, temporal bone. Mouse*, embryonic day 17. Hematoxylin and eosin, sagittal section. *The superior joint space forms earlier in a mouse, opposite the human condition. C:Temporomandibular joint at maturation stage. Both inferior and superior joint spaces are fully formed, lateral pterygoid muscle is attached to condylar neck and articular disc begins to resemble postnatal form. CC, condylar cartilage; AD, articular disc; LPM, lateral pterygoid muscle; TB, temporal bone. Mouse, embryonic day 19. Hematoxylin and eosin, sagittal section.

Mandibular Condylar Cartilage


Гены Runx2 (важен для образования кости) и Sox9 (необходим для формирования хряща) экспрессируются в мезенхимных конденсатах, которые инициируют образование нижнечелюстного мыщелка. Т.к. зональная дифференцировка в MCC прогрессирует на ст. E15, то оба гена экспрессируются в прехондробластной зоне, а также во вновь сформированном хряще (Shibata et al., 2006). Runx2 (-/-) мыши, которые не образуют кость вообще, не обнаруживают нарушений образования первичного хряща (напр., в конечностях и Меккелевом хряще), тогда как MCC и др. вторичные хрящи, такие как угловой и короноидальный, полностью отсутствуют (Shibata et al., 2004). Мыщелковая конденсация, позитивная по щелочной фосфатазе (AP) и обладающая слабой экспрессией Col 1, присутствует, но уменьшена в размерах на ст. E18.5, по сравнению с конденсацией дикого типа на ст. E14. Поскольку Runx2 также важный участник созревания мезенхимных конденсатов (Nakashima et al., 2002), то возможно, что его отсутствие может объяснить малые размеры конденсата. Мезенхимные конденсаты, которые также образуются в местах прикрепления мышц на нижней челюсти, были взаимно соединены. Однако отсутствуют генетические маркеры образования вторичного хряща (напр., Col2 или aggrecan) это указывает на то, что дифференцировка остановлена на преостеобластной стадии. Последующее исследование показало, что Runx2 (-/-) мыщелковые экспланты могут быть индуцированы, чтобы подвергнуться хондрогенной дифференцировке (но не гипертрофии) за счет добавления экзогенного BMP-2 (Fukuoka et al., 2007), подтверждая, что секретируемые продукты остеобластов могут вносить вклад в формирование вторичного хряща.
Инактивация Sox9 в клетках краниального нервного гребня (Fig. 4) также приводит к полному агенезу мыщелкового хряща (Mori-Akiyama et al., 2003; Wang et al., 2011). Кроме того, образование нижнечелюстной ямки было существенно укорочено и суставной диск кажется более диффузным, чем в контроле, при этом образуются неполные суставные полости на ст. E18.5 (Fig. 4L). Однако, экспрессия Runx2 всё ещё присутствует в нижнечелюстной ветви и на ранней стадии конденсации для нижнечелюстной ямки у нулевых мышей. Меккелев хрящ отсутствует, как и любые кости, формируемые за счет эндохондральной оссификации.



Figure 4. Inactivation of Sox9 in the cranial neural crest cells results in an absence of condylar cartilage and temporomandibular joint (TMJ) malformation. A,B: Skeletal preparations of mandibles from postnatal day (P) 0 wild-type control (A) and Wnt1Cre;Sox9f/f mice (B) reveal an absence of cartilage elements in the condyle and angular process in the mutant. The mutant mandible appears shorter and also lacks the coronoid process. C,D:Coronal sections through the TMJ forming region of embryonic day (E) 14.5 wild-type (C) and Wnt1Cre;Sox9f/f embryos (D) show formation of the glenoid fossa condensation. In the wild-type control, the Meckel's cartilage and condylar condensation are evident (C); however, in the mutant, the mandibular ramus condensation is observed instead, and the Meckel's cartilage is also absent (D). E-J: Coronal sections through the TMJ forming site of wild-type and mutant mice at various stages reveal normal processes of TMJ development (E,G,I) and regression of the glenoid fossa in Wnt1Cre;Sox9f/f mice (F,H,J). K: Higher magnification of the TMJ from E18.5 wild-type mice shows a compact normal articular disc structure with flatted cells (arrow). L: Higher magnification of the disc-like structure from E18.5 Wnt1Cre;Sox9f/f mice shows a less compact tissue with irregular cell shape (arrow). c, condyle; m, Meckel's cartilage; gf, glenoid fossa; mr, mandibular ramus; agp, angular process; crp, coronoid process; lpm, lateral pterygoid muscle. Scale bars =1 µm in A,B; 200 µm in C-J. Wang et al., Dev Dyn 2011;240:2466-2473. Used with permission of the author.

Mandibular Fossa


Только два исследования описывают уродство или отсутствие нижнечелюстной ямки. Одно из них по нокауту Sox9 было описано выше (Wang et al.,2011). Учитывая преимущества того факта, что нижнечелюстная ямка происходит из клеток краниального нервного гребня, но не экспрессирует Sox9, Wang et al. оказались способны исследовать развитие нижнечелюстной ямки в отсутствие нижнечелюстного мыщелка. Хотя мезенхимный конденсат для ямки образуется нормально на ст. E14.5, он переживает задержку оссификации (экспрессия Runx2) и начинает постепенно регрессировать, так, что только небольшой кусочек кости остается латеральнее на ст. E18.5 (Fig. 4J). Т.о., нижнечелюстная ямка отсутствует не врожденно, а скорее из-за неспособности поддерживать её развитие и действительно со временем регрессирует. Авт. оказались способны далее протестировать это взаимоотношение. используя две мышиные модели, которые были "ошибками природы": у одной из них развитие мыщелка оказывалось смещенным от развивающейся нижнечелюстной ямки, а у др. был сильно увеличен Меккелев хрящ, он смещал мыщелок из его нормальной позиции относительно нижнечелюстной ямки (имитируя отсутствие мыщелка) это снова приводило к аресту развития ямки, поскольку присутствие Меккелева хряща в сочленении с ямкой делало возможным продолжение развития ямки. Эти эксперименты подтверждают, что нормальное развитие ямки зависит от нормального развития мыщелка.
Нижнечелюстная ямка также неспособна развиваться у мышей, дефицитных по генам Sprouty 1 и 2 (Spry1(-/-); Spry2 (-/-)), которые кодируют внутриклеточные ингибиторы сигнальных путей рецепторной тирозин киназы, включая те, что запускаются с помощью fibroblast growth factors (Purcell et al., 2012). Spry1 и Spry2 экспрессируются в латеральной pterygoid и temporalis мышцах, соседствующих со структурами TMJ, тогда как рецепторы fibroblast growth factor Fgfr1, Fgfr2 и Fgfr3 экспрессируются дифференциально в надкостнице, надхрящнице и MCC. Общие эффекты от делеции Spry были специфичными для мышц: Меккелев хрящ оставался незатронутым, но мышцы temporalis и lateral pterygoid были на 48% и 69% крупнее, соотв., чем у контрольных эмбрионов. Суставной диск формировался нормально, а мыщелок, хотя и был гистологически нормальным, был несколько меньше, чем мыщелок дикого типа. Однако, конденсат не обнаруживался на ст. E14.5 для нижнечелюстной ямки и ямка отсутствовала за исключением небольшой латеральной порции, сходной с той, что наблюдалась в исследовании Wang и др. (2011). Индивидуальная инактивация или Spry1 или Spry2 не оказывала эффекта на фенотип TMJ также как и инактивация Spry1 и/или Spry2 в кости или хряще. Авт. полагают, что увеличенные мышцы temporalis могут препятствовать конденсациям височной кости, чтобы сформировать нижнечелюстную ямку у мутантных животных.

Articular Disc and Joint Cavities


Суставной диск образуется внутри третьего мезенхимного конденсата, расположенного между конденсатами, которые станут MCC и нижнечелюстной ямкой. На ст. E16.5, клетки конденсата в этом промежуточном регионе становятся различимы и постепенно принимают форму диска. Одновременно появляются небольшие расщелины в мезенхиме между формирующимся диском и височной костью. Как только эти расщелины сливаются, образуется верхняя суставная полость (пространство). На ст. E17.5, образуется нижнее суставное пространство между диском и мыщелком (Gu et al., 2008). Самые ранние исследования описывали отсутствие или неполное образование суставного диска у мышей, лишенных гена Indian hedgehog (ihh) (Shibukawa et al., 2007) или одного из его нижестоящих эффекторов, таких как Smoothened (Smo) или транскрипционных факторов семейства Gli (Purcell et al., 2009). Ihh был распознан как важный регулятор развития и роста длинных костей, включая образование внутримембранозных костных манжеток, пролиферацию и созревание хондроцитов и эндохондральную оссификацию (Koyama et al., 2007). Мыши, у которых ihh был инактивирован, неспособны полностью формировать диск или подвергаться кавитации) образованию полостей) (Fig. 5), оставляя тонкий слой мезенхимы, отделяющей мыщелок от нижнечелюстной ямки. Разрушение нижестоящих эффекторов передачи сигналов ihh приводит к формированию диска, но к неполной кавитации (Purcell et al.,2009). Авт. полагают, что передача сигналов ihh необходима не только для инициации морфогенеза диска, но и также для обеспечения созревания диска и кавитации на более поздних стадиях развития.



Figure 5. Histological analysis of the effect of ihh inactivation on articular disc formation. A-F: Serial sections from embryonic day (E) 18.5 wild-type (A,B). ihh -/- (C,D), and ihh -/-/Gli3-/- (E,F) embryos were stained with hematoxylin and eosin or processed for in situ hybridization. The articular disc is indicated by an arrowhead, the upper joint cavity by an arrow, and the lower joint cavity by a double arrow. Lubricin expression was given a computer-assisted artificial color. Scale bar= 100 µm. Shibukawa et al., Dev Dyn 2007;236:426-434. Used with permission from the author.

Др. модель, согласно которой диск неспособен формироваться или задерживался в развитии, связана с геном, который взаимодействует с ihh. Мыши, дефицитные по Trps1, гену, кодирующему транскрипционный фактор, мутантный у людей с синдромом Tricho-Rhino-Phalangeal, обнаруживают почти идентичный фенотип, что и в случае мутации ihh, т.e., полное отсутствие диска и суставных полостей (Michikami et al., 2012). Подобно ihh, Trps1 регулирует различные аспекты пролиферации и созревания ростовой пластинки, а также внутримембранозной оссификации надхрящницы (Napierala et al., 2008). При перихондральной оссификации Trps1 взаимодействует с передачей сигналов ihh/Gli3 (Wuelling et al., 2009). Кроме того, Trps1, экспрессирующийся в надхрящнице и хондроцитах развивающегося MCC на E15.5 (Michikami et al., 2012), известен как сильный репрессор Runx2 (Napierala et al.,2008). Поскольку Trps1 экспрессируется также в мезенхиме, в которой д. сформироваться презумптивный диск (Michikami et al., 2012), то не удивительно, что Trps (-/-) мыши имеют тот же агенез диска, что и ihh (-/-) мыши.
Значение этих моделей - связанных с передачей сигналов ihh - может быть критическим для образования диска - может быть оценено и на др. моделях с агенезом или уродствами диска в TMJ. Напр., агенез мыщелка у Sox9 (-/-) мышей сопровождается плохим образованием диска и отсутствием суставных полостей (Wang et al., 2011), это может быть обусловлено отсутствием ihh, обычно присутствующего в отсутствующем мыщелке. В др. модели той же группы, мыши, у которых наблюдается эктопическая активность передачи сигналов канонического Wnt, обусловленная стабилизацией β-catenin, имеют широко открытый рот из-за аномалий развития кожи (Wang et al., 2011). Это обстоятельство нарушает нормальные взаимоотношения между развивающимся мыщелком и нижнечелюстной ямкой и приводит к регрессии мандибулярной ямки и отсутствию суставного диска. Авт. полагают, что увеличение расстояния между мыщелком и конденсатом диска из-за открытого рта ингибирует диффундирующие факторы, которые обычно обеспечивают образование диска.
Обусловленная инактивация гомеобоксного гена Shox2 в клетках краниального нервного гребня приводит к задержке появления структур TMJ, включая и суставной диск. На ст. E17.5, времени, когда формируется суставной диск у мышей дикого типа, мыши Shox2 (-/-) не имеют различимого зачатка диска. Диск в конечном итоге образуется у новорожденных Shox2 (-/-) мышей, но сращен с нижнечелюстной ямкой и мыщелком, указывая на неполноту образования суставных полостей (Gu et al., 2008). Мыши Shox2 (-/-) , которые обнаруживают существенно сниженную экспрессию Runx2 и Sox9, обнаруживают и пониженную экспрессию ihh в MCC, но и эктопическую экспрессию ihh в нижнечелюстной ямке. Предполагается, что снижение ihh в мыщелке играет роль в задержке и уродствах диска и полостей.

Genes Affecting Growth at the TMJ


Для некоторых генов инактивация приводит к небольшим если вообще каким-либо эффектам на морфогенез структур сустава, но вместо этого вызывает существенное влияние на рост, в первую очередь нижнечелюстного мыщелка. Ранее рассмотренные эффекты на образование суставного диска у ihh (-/-) мышей сопровождались ингибированием пролиферации и снижением экспрессии Sox9 и PTHrP (критический компонент регуляторной петли ihh) в MCC, приводя к образованию сильно укороченной нижней челюсти (Shibukawa et al., 2007). При tamoxifen-индуцированных условных нокаутах ihh на постнатальный день 4, 7, 14, и 56, разрушает зональную архитектуру MCC, при этом обнаруживается существенное уменьшение зон прехондробластов и ранних хондроцитных клеток (Ochiai et al., 2010). Частичное слияние элементов (ankylosis) диска с поверхностью мыщелка также присутствует, подтверждая, что ihh может быть важен для постнатального роста TMJ. В хряще конечности PTHrP образует негативную петлю обратной связи с ihh, при этом PTHrP поддерживает хондроциты в пролиферативном, менее дифференцированном состоянии. Эта петля обратной связи, по-видимому, работает в прехондробластах MCC , как она делает это в пролиферативных хондроцитах ростовой пластинки (Shibukawa et al., 2009). Мыши с целенаправленной экспрессией конституитивно активного рецептора PTHrP в хряще также обнаруживают постнатальные аномалии TMJs, но в этом случае мыщелковый хрящ в основном состоит из незрелых хондроцитов и фибробластных клеток, при этом присутствуют лишь немногие островки гипертрофического хряща (Tsutsui et al., 2008). Др. исследование, анализирующее эффект на TMJ heparan sultate proteoglycans (HS-PGs). Хотя тяжело затронутые мыши Ndst (-/-) лишены TMJ, слабо поврежденные мутанты на ст. E18.5 обнаруживают более толстый слой прехондробластных клеток с повышенной пролиферацией по сравнению с животными дикого типа (Yasuda et al., 2010). Хотя экспрессия ihh не затронута у мутантов топография сигнальной активности ihh, как показывает его рецептор Ptch, была значительно шире, чем у животных дикого типа. Авт. полагают, что эта находка отражает более обширное поле диффузии ihh, это оказывается возможным из-за отсутствия связывания ihh дефектными HS-PGs в мутантном мыщелке.
Передача сигналов Transforming growth factor-beta (TGF-β) также играет важную роль в регуляции роста MCC, как было показано с помощью обусловленной инактивации одного из его рецепторов, Tgfbr2, в клетках краниального нервного гребня (Oka et al., 2007). Этот рецептор специфически необходим для пролиферации как в клетках остеогенных предшественников, так и хондрогенных предшественников. Хотя мезенхимный конденсат для мыщелка присутствует у Tgfbr2 мутантных мышей на ст. E14.5 (Fig. 6F), метахроматичное окрашивание хряща существенно уменьшается в мутантном мыщелке на ст. E16.5 (Fig. 6D). Когда формирование сустава закончено у животных дикого типа на ст. E18.5, хондрогенез отростка мыщелка сохраняется значительно редуцированным по сравнению с мутантным мыщелком, а гипертрофическая зона полностью отсутствует (Fig. 6B). Т.о., хотя морфогенез мыщелка не полностью подавлен, возникающая структура имеет только рудиментарный хрящевой компонент. Последующее исследование этой группы (Oka et al., 2008) продемонстрировало существенно сниженную пролиферацию хряща мыщелка мутантных животных, а также снижение экспрессии Sox9. Экспрессия Runx2 однако увеличена в мутантном мыщелке, как и экспрессия Dlx5, транскрипционного фактора, важного для дифференцировки остеобластов. Авт. подтвердили, что передача сигналов TGF-β влияет на судьбу клеток в делящихся клетках MCC за счет регуляции экспрессии Sox9, которая, в свою очередь, репрессирует экспрессию Runx2. В завершение этих экспериментов половина нижней челюсти мышей с E13.5 по E14.5 подвергалась воздействию в культуре экспланта ингибитора нижестоящей передачи сигналов типа I TGF-β рецепторов, при этом партнер с Tgfbr2 обнаруживает полную потерю вторичного хряща, не наблюдаемую в vehicle-treated эксплантах, а предсуществующие вторичные хрящи на ст. E15.5 эксплантов исчезают после культивирования в течение 4-х дней (Anthwal et al., 2008). Эти результаты показали, что TGF-β необходим для инициации вторичного хряща в нижней челюсти. Однако, изучение мышей, лишенных всей поперечнополосатой мускулатуры, показало, что мышцы влияют критически на поддержание вторичных хрящей в нижней челюсти. Наиболее выраженные эффекты наблюдаются в ассоциированном с мышцами угловом и coronoid хряще с меньшим эффектом на хрящ мыщелка, при этом авт. предполагают, что суставные силы могут также вносить вклад в поддержание вторичного хряща (Rot-Nikcevic et al., 2007).



Figure 6. TGF-β signaling is required for proper development of the condylar process. Histological analysis of the coronoid, condylar and angular processes in control and Tgfbr2fl/fl;Wnt1-Cre mice. A,B: Hematoxylin and eosin staining shows clear zones of endochondral ossification in the condylar and angular processes in the control at E18.5. The insets show X-gal staining of the condyle and angular processes. The endochondral ossification of the condylar process is diminished in the Tgfbr2fl/fl;Wnt1-Cre mutant at E18.5. C-F: Safranin-O staining of the condylar process at E16.5 (C,D) and at E14.5 (E,F). At E16.5, the three zones, articular, intermediate and hypertrophic, are visible in the control, but chondrogenesis of the condylar process is dramatically diminished and the hypertrophic zone is not detectable in the mutant (arrows). At E14.5, the condylar cartilage matrix is visible in control (arrows), but not in the Tgfbr2fl/fl;Wnt1-Cre mice (asterisk). Scale bar?=?200 ?m in panels A-F. Cd, condylar process; Cr, coronoid process; Ang, angular process; az, articular zone; iz, intermediate zone; hz, hypertrophic zone. Oka et al., Dev Biol 2007;303:391-404. Used with the permission of the author.

Передача сигналов Fibroblast growth factors (FGFs) посредством 4-х рецепторов (fgfr1-4), чтобы регулировать разнообразные клеточные процессы, включая рост хряща и образование эндохондральной кости (Ornitz, 2005). Один из таких рецепторов, Fgfr3, как полагают ингибирует пролиферацию хондроцитов и негативно регулирует эндохондральную оссификацию длинных костей, при этом разрушение Fgfr3 приводит к избыточному росту (Colvin et al., 1996) , а постоянная активация к укорочению (Deng et al., 1996). Три из FGF рецепторов (fgfr1, fgfr2 и fgfr3) экспрессируются в разных слоях хряща мыщелка (Molteni et al., 1999; Purcell et al., 2012). Мыши с knock-in мутацией в Fgfr3 которая значительно усиливает сродство рецепторов к его лиганду, обнаруживают ряд альтераций в структуре TMJ, а рост начинается на 21 день постнатального развития (Yasuda et al.,2012). Общий размер мыщелка, а также общая толщина хряща были меньше у мутантных мышей, при этом наблюдалось снижение пролиферации, экспрессии Sox9 и Col10 и уменьшение сети костных трабекул под хрящом. Выстилка из вторичного хряща височной кости также уменьшена. Обработка мутантных эксплантов лигандами для Fgfr3 приводит к снижению пролиферации и подавлению Ptch, рецептора для ihh, а также др. компонентов системы обратной связи ihh, подтверждая, что Fgfr3 и ihh м. выполнять противоположные действия в отношении пролиферации и созревания хондроцитов в MCC. Sprouty гены Spry1 и Spry2 также кодируют ингибиторы внутриклеточной передачи сигналов, которые затрагивают передачу сигналов FGF. У Spry1(-/-)/Spry2 (-/-) мышей, описанных ранее как обнаруживающих регрессию развивающейся нижнечелюстной ямки, хрящ мыщелка имеет нормальную гистологическую структуру, хотя на 50% меньше в длину и на 25% меньше в толщину по сравнению с животными дикого типа (Purcell et al., 2012). животных
Мыши Shox2 (-/-), обнаруживающие задержку развития суставных структур, также обнаруживают снижение образование кости в мыщелке, что проявляется в значительном уменьшении экспрессии osteocalcin, а также в образовании более тонких слоёв и меньшей гипертрофией в хряще мыщелка (Gu et al.,2008). Экспрессия Sox9 и Runx2 снижена в мутантном мыщелке, но общий эффект на структуру и рост хряща мыщелка, по-видимому, существенно меньше, чем в TGF-β модели.
Имеются наводящие на размышления доказательства, что др. гены также могут влиять на морфогенез и рост TMJ. Два исследования продемонстрировали, что передача сигналов с помощью BMPs, подобно таковой для TGF-β , может влиять на морфогенез хряща мыщелка. Делеция BMP типа 1 рецептора Alk2в ткани нервного гребня, как было установлено, дает значительно меньших размеров нижнюю челюсть (Dudas et al., 2004). Более того, обусловленная делеция BMPr1A в хряще ранних постнатальных мышей существенно уменьшает длину нижней челюсти и резко ослабляет выраженность хряща мыщелка, а также пролиферации и иммунореактивности Sox 9 у 4-недельных мышей (Jing et al., in press).
Др. вероятная возможность связана с семейством рецепторов Notch (Notch 1-4) которые были идентифицированы как медиаторы клеточных судеб во многих тканях (Curry et al., 2005; Purow et al., 2005). В хряще, по-видимому, передача сигналов Notch является контекст зависимой, при этом наблюдаются несопоставимые эффекты в развивающихся и полностью дифференцированных хондроцитах (Kohn et al., 2012; Chen et al., 2013). Хотя эти исследования были сконцентрированы на хряще ног, имеются доказательства, что передача сигналов Notch может быть также важна в клетках надхрящницы TMJ. Исследование экспрессии генов в перихондральной (PC) и подлежащей хрящевой (C) порциях MCC выделенных из хряща мыщелков от 2-дневных мышей с использованием набора генов, которые преимущественно экспрессируются в надхрящнице (Hinton et al., 2009). Использование профилирования массива в 84 генов, связанных с путем передачи сигналов Notch, показало, что надкостница MCC обогащена многими генами пути передачи сигналов Notch (Serrano et al., in press). Гены с существенно более высокой экспрессией в PC выборке по сравнению с C выборкой включали Notch 3 и Notch 4 (5х, 3.5х), их лиганды Jagged 1 и 2 (4х, 5х), и др. регуляторы специфичности лигандов Notch и нижестоящей передачи сигналов, такие как MFNG (7х), Deltex (13х) и presenilin enhancer 2 (4х). Др. notch рецептор, Notch1, как было установлено, с помощью иммуногистохимии, локализуется в поверхностных слоях MCC, наиболее отчетливо в слое прехондробластов (Serrano et al., 2011). Более того, экспрессия Notch1 в эксплантах MCC от мышей на ст. E17 усиливалась за счет повышения концентрации экзогенного FGF-2 и подавлялась за счет увеличения концентраций экзогенного TGF-β 2 (Serrano et al., in press).
Передача сигналов Wnt/β-catenin всё ещё является др. потенциальным регулятором морфогенеза и роста TMJ. Передача сигналов β-catenin, как было установлено, является важным детерминантом клеточной судьбы в клетки остеогенных предшественников, а в его отсутствие эти клетки развиваются в хондроциты (Hill et al., 2005). В самом деле, единственное исследование с использованием передачи сигналов β -catenin, чтобы проверить на TMJ, продемонстрировало, что трансгенные мыши со стабилизированным β -catenin характеризуется полным агенезом хряща мыщелка (Wang et al., 2011). Два др. исследования охарактеризовали эффект уровней β-catenin на клетки как и в случае делящихся клеток MCC. Первое исследование было сконцентрировано на краниальных швах, в которых β-catenin является критическим для пролиферации и дифференцировки остеогенных предшественников, так что ингибирование β-catenin приводило к аномалиям швов (Mirando et al., 2010). Подобно прехондробластным клеткам MCC, преостеогенные клетки черепных швов являются продолжением остеогенного слоя надкостницы и могут обнаруживать фенотип вторичного хряща в определенных швах, который обратим в ответ на снижение нагрузки (Hinton, 1988). Goodnough с колл. (2012) показали, что транскрипционный фактор Twist1 непосредственно активируется с помощью β -catenin в клетках остеогенных предшественников и что Twist1 соединяется с Sox9, чтобы супрессировать хондрогенез. Twist был локализован в преостеогенных клетках черепных швов (Rice et al., 2000), а также в слое прехондробластных клеток MCC (Serrano et al., 2011), где он был соединен с др. геном детерминации судьбы клеток, с Notch. Было показано, что прехондробластные (предшественники хондробластов) клетки в MCC, подобно преостеогенным (предшественники остеоцитов) клеткам развивающихся швов (Iseki et al., 1999), экспрессируют Fgfr2 рецепторы (Fuentes et al., 2002; Molteni et al.,1999). Экспрессия Fgfr2 и иммунореактивность bromodeoxyuridine (BrdU) присутствуют в одном и том же слое клеток (пролиферирующие клетки остеогенных предшественников) развивающихся швов, при этом Fgfr1 экспрессируется, когда эти клетки дифференцируются с остеобласты (Iseki et al., 1999). Эти находки параллельны наблюдаемому распределению в MCC Fgfr2, BrdU иммунореактивности в прехондробластах, а Fgfr1 в хондробластах дифференцированного фенотипа (Fuentes et al., 2002). Т.о., в швах и в MCC, Twist обнаруживает перекрывающееся распределение с Fgfr2, объясняя тем самым, что Twist , активируемый с помощью β-catenin? вносит вклад в регуляцию клеточных судеб в обеих тканях. Наше изучение генов, дифференциально экспрессирующихся на высоких уровнях в надхрящнице MCC показало, что два медиатора передачи сигналов Wnt, PPAR -γ (6х) и Frizzled 4 (8х), экспрессируются на высоком уровне в надхрящнице (Serrano et al., in press).
Дополнительное подтверждение, что передача сигналов β-catenin влияет на клетки сходным с прехондробластами MCC образом, возникает из его эффекта на клетки поверхностной зоны (SFZ) в суставном хряще. Эти клетки обнаруживают экспрессию гена и фенотипические профили, отличающиеся от тех, что лежат в основе суставных хондроцитов и обладают свойствами хондральных предшественников с сильной способностью пролиферации со временем (Yasuhara et al., 2011). Активация передачи сигналов β-catenin вызывает сильное увеличение пролиферации и экспрессии lubrican в этих клетках, тогда как устранение передачи сигналов β -catenin вызывает противоположные эффекты. Хотя клетки SFZ всё ещё сохраняют свойства суставных хондроцитов, интересно, что они представляют собой популяцию клеток хондральных предшественников, фенотипически лабильных в ответ на варьирующие уровни передачи сигналов β-catenin. Более того, эти клетки предшественники экспрессируют Notch1 рецептор, который обусловливает их пролиферацию (Dowthwaite et al., 2004).

Implications


Хотя изменения в морфогенезе или росте TMJ происходят в ответ на инактивацию или конституитивную активацию многочисленных генов, некоторые обобщения возможны относительно (1) онтогенетической иерархии структур TMJ и (2) иерархии экспрессии генов, затрагивающих морфогенез и рост TMJ.

Developmental Hierarchy of TMJ Structures


4 гена экспрессируются очень рано в мезенхимном конденсате, который станет нижнечелюстным мыщелком: Sox9, ihh, Runx2 и Osterix (Shibata et al., 2006; Gu et al., 2008). Инактивация или Sox9 (Mori-Akiyama et al., 2003; Wang et al., 2011) или Runx2 (Shibata et al., 2004) приводит к комбинированному агенезу хряща мыщелка. Хотя и не описан у Runx2-нулевых мышей, конденсат для нижнечелюстной ямки возникает у Sox9-нулевых мышей; инициируется образование кости, но большая часть ямки регрессирует, оставляя лишь небольшой остаток в латеральном аспекте (Fig. 4). В свете их экспериментов, при которых ямка не образуется, когда физически смещается от развивающегося мыщелка или поддерживается увеличенным хрящом Меккеля (Noggin (-/-) мыши), Wang с колл. (2011) предположили, что образование нижнечелюстного мыщелка (или суррогата, такого как хрящ Меккеля) является обязательным для образования нижнечелюстной ямки. Эксперимент с агенезом ямки происходил вследствие состояния открытого рта, что вызывало более значительное расхождение между конденсатами ямки и мыщелка, подтверждает, что исходят определенного сорта диффундирующие сигналы, возникающие в мыщелке, они д быть обязательны для собственно развития сустава. Интересно, что единственная модель, в которой агенез ямки происходит (Sprouty 1 (-/-) Sprouty2 (-/-) мыши), обнаруживая интактный, хотя и меньшего размера, мыщелок; однако, непрерывность мыщелок-ямка нарушается более значительно увеличенной мышцей temporalis. Общим фактором в обеих моделях, по-видимому, является потребность в сигналах, исходящих от мыщелка к ямке, так что отсутствие образования ямки может быть результатом или агенеза мыщелка или из-за разрыва и блокирования сигнала, вызванное расстоянием или мешающей структурой.
Некоторые модели обнаруживают аномалии суставного диска и/или окружающих его полостей. Полное отсутствие диска и суставных полостей наблюдается у ihh (-/-) мышей (Shibukawa et al., 2007). Большинство из этих примеров аномалий или задержки диска часто сопровождаются неспособностью сформироваться в полной мере суставным полостям, что происходит с моделях трех групп: (1) той, где вовлечены гены пути передачи сигналов ihh (Smo, Gli); (2) той, годе вовлечены гены, взаимодействующие с элементами сигнального пути ihh (Trps1); или (3) модели, обнаруживающие уменьшение или отсутствие ihh в MCC (Shox2, Sox9, соотв.). Spry1 (-/-)Spry2(-/-) мыши с агенезом нижнечелюстной ямки, но у которых присутствует MCC, всё ещё происходит образование диска. Итак. эти исследования представили строгий аргумент, что сигналы, исходящие от мыщелка являются критическими для инициации образования диска и кавитации. Тот факт, что суставной диск не формируется в экспериментах, в которых хрящ Меккеля поддерживает образование ямки (Wang et al., 2011) обусловливает дальнейшую сложность необходимых сигналов.

Hierarchy of Gene Expression Affecting TMJ Morphogenesis and Growth


Этот каталог фенотипов TMJ, возникающий в результате инактивации или альтерации гомеобоксных генов и факторов роста, четко продемонстрировал, что многие гены вносят вклад в рост TMJ и в меньшей степени в морфогенез TMJ. Однако, два гена, Runx2 и Sox9, заметно представлены во многих моделях и являются единственными генами, известные тем, что будучи инактивированными, вызывают агенез MCC. Оба экспрессируются очень рано (на ст. E13.5-E14) в клетках мезенхимного конденсата, который станет мыщелком (Shibata et al., 2006; Shibata and Yokohama-Tamaki, 2008). При развитии зачатка конечности Sox9-экспрессирующие предшественники остео- и хондроцитов дают Runx2-экспрессирующие остеогенные клетки (Akiyama et al., 2005). Однако, исследования на птицах (Buxton et al., 2003) и млекопитающих (Shibata and Yokohama-Tamaki, 2008) вторичных хрящей продемонстрировали, что смена направления может происходить во вторичном хряще, если хондроциты образуются посредством усиления активности Sox9 в популяции предшественников, экспрессирующих Runx2.Если Sox9 экспрессируется ниже Runx2 в TMJ, то вместо ситуации, наблюдаемой в конечностях, Runx2 и Sox9 нокаутные фенотипы могут быть объяснены непрерывной экспрессией Runx2 у нокаутных по Sox9 мышей (Wang et al., 2011).
Действие нескольких др. генов, представленных в этом сообщении, могут регулировать морфогенез TMJ воздействуя на экспрессию Sox9 и Runx2 и посредством этих генов контролирует ось ihh-PTHrP. Oka с колл. (2007, 2008) продемонстрировали, что инактивация передачи сигналов TGF-β резко снижает экспрессию Sox9 , вызывая дефекты хряща мыщелка на очень ранней стадии, за счет замедления дифференцировки хондроцитов. Кроме того, мышелок у мышей с инактивированной передачей сигналов Tgfbr2 имеет слегка повышенную экспрессию Runx2 и повышенную экспрессию Dlx5, транскрипционного фактора, важного для дифференцировки остеобластов (Oka et al., 2008). Поскольку хрящ не теряется полностью у мышей с инактивированным Tgfbr2, др. гены д. влиять на экспрессию Sox9. Одной из возможностей может быть Shox2, поскольку и Runx2 и Sox9 были редуцированы у Shox2 нулевых мышей (Gu et al., 2008). Однако, Sox9 является также нижестоящей транскрипционной мишенью для передачи сигналов Notch, который в свою очередь активируется с помощью передачи сигналов FGF (Nakanishi et al., 2007). Хотя Notch рецепторы присутствуют в мезенхимных клетках (Nakanishi et al., 2007) и в самом деле в прехонрдробластных клетках в MCC (Serrano et al., 2011), исследования избыточной экспрессии в шариковой культуре (Grogan et al., 2008) и исследования избыточной функции in vivo (Chen et al., 2013) прояснили, что передача сигналов Notch ингибирует хондрогенную дифференцировку в детерминированных предшественниках хондроцитов. Более того, TGFβ-обусловленный хондрогенез облегчается за счет уменьшения репрессии Notch на хондрогенез (Grogan et al., 2008) и с помощью подавления экспрессии Dlx5 (Oka et al., 2008). Наконец, исследования остео-предшественников черепных костей (Goodnough et al., 2012) продемонстрировали, что активированная передача сигналов β-catenin ингибирует экспрессию Sox9 и хондрогенез in vivo посредством экспрессии Twist1, которые связывает Sox9. Напротив, Goodnough с колл. показали, что обусловленная делеция Twist1 в краниальной мезенхиме до спецификации судьбы индуцирует хондрогенез, подтверждая тем самым, что подавление Twist1 или его вышестоящего предшественника β-catenin может также сделать возможной экспрессию Sox9 в MCC. Введение с помощью аденовируса Runx2 в культуру Runx2 (-/-) хондроцитов строго индуцирует экспрессию ihh (Yoshida et al., 2004), который (посредством своей петли обратной связи с PTHrP) четко опосредует величину дифференцировки гипертрофических хондроцитов, также как и пролиферацию в MCC (вместе с TGFβ и вообще Notch), как это показано у ihh-нулевых мышей (Shibukawa et al., 2007). Возможные регуляторы клеточных судеб TMJ, пролиферации и дифференцировки показаны на Figure 7.

Figure 7. Cartoon of genes that may regulate cell fate, proliferation, and differentiation of mandibular condylar cartilage cells based on the studies described in this review.

Conclusions


Although chondrocytes in the MCC secrete typical cartilage-specific products such as Col2, aggrecan, and Col10 (Shibata et al., 1997, 2006), the MCC differs from primary cartilages of the limbs in the perichondrium containing its dividing cells. In some respects (e.g., their responses to ihh), it appears that these prechondroblasts behave similarly to the proliferating chondroblasts in a growth plate. However, these models and other studies have documented clear-cut differences in gene expression between the MCC and limb cartilages for which the significance is currently unknown. These differences include: the rapid chondrocyte hypertrophy in the MCC as reflected in the greatly overlapping expression of Col1, Col2, and Col10 (Shibata et al., 1997); the absence in the MCC of Gdf5 & Gdf6 proteins seen in the joint cavities of the developing limb (Purcell et al., 2009); differences in osteopontin and bone sialoprotein expression (Gu et al., 2008); and qualitatively different responses to gene inactivation in MCC and limbs (Yasuda et al., 2010). In addition, the nature of the prechondroblastic cells of the MCC perichondrium has not been well characterized. Although they were formerly identified as "mesenchymal stem cells" (Stutzmann and Petrovic, 1982), current evidence suggests that these prechondrocytes have already differentiated into Runx2-expressing periosteum-like cells that are bipotent between osteogenic and chondrogenic lineages (Shibata et al., 2006). Yet gene arrays that target isolated preparations of MCC perichondrium show that vascular endothelial growth factor-B or VEGF-B, a member of a family of angiogenic agents (Breen, 2007), is expressed at levels twice as high in the perichondrial sample as it is in the cartilage sample. In addition, the VEGF receptors Flt-1 (3?) and kinase insert domain receptor/ Flk-1-KDR (4?) are elevated to an even greater extent (Hinton et al. 2009). Although the functions of VEGF-B are not well understood, a recent study (Liu et al., 2012) suggests it may affect the differentiation of osteoprogenitors by regulating the Runx2 and peroxisome proliferator activated receptor-gamma (PPAR-?), which is enriched three-fold in the perichondrium (Hinton et al., 2009). Even more unclear is the nine-fold enrichment of myogenic factor 6 (Myf6) in the perichondrial sample. Myf6 is an important transcription factor in the specification and differentiation of skeletal muscle myotubes during embryogenesis (Maak et al., 2006). This relatively high expression of genes such as myogenic factor 6 and VEGF-B may indicate a degree of unsuspected plasticity in this bipotent cell population derived from an osteogenic lineage.
It is abundantly clear from this review that our knowledge of the genes that regulate the morphogenesis and growth of the TMJ is itself embryonic. One clear need is for TMJ phenotypes involving conditional inactivation of additional genes, especially relating to Notch or Wnt/ ?-catenin signaling. In view of its sensitivity to mechanical loading (Case et al., 2008; Premaraj et al., 2011; Mantila-Roosa et al., 2011), ?-catenin signaling is of particular interest for the MCC, because the cartilaginous phenotype of the MCC, unlike that of primary cartilages, has been shown to be readily influenced by mechanical forces (Duterloo and Wolters, 1971; Petrovic et al., 1975; Carlson et al., 1980). In addition, further experiments or models must address the identity of the "diffusible signaling molecule(s)" (Wang et al., 2011) that coordinate the development of the condyle, mandibular fossa, articular disc, and joint cavities. Finally, transgenic mice with alterations in the malleus-incus joint in the middle ear also exhibit major abnormalities of the lower or upper jaws as well as in Meckel's cartilage (Anthwal et al., 2012). This suggests that the "primary jaw joint" in the middle ear and the normal dissolution of Meckel's cartilage, if disrupted, may have effects on TMJ morphogenesis. It is only through more detailed knowledge of the structural and developmental differences of this unique joint and its surrounding structures that we will be able to better understand how congenital TMJ anomalies occur and what constraints are important for fashioning replacement joint tissues for diseased or malformed joints.