Посещений:
A Broad Set of Chromatin Factors Influences Splicing. | |
---|---|
Several studies propose an influence of chromatin on pre-mRNA splicing, but it is still unclear how widespread and how direct this phenomenon is. We find here that when assembled in vivo, the U2 snRNP co-purifies with a subset of chromatin-proteins, including histones and remodeling complexes like SWI/SNF. Yet, an unbiased RNAi screen revealed that the outcome of splicing is influenced by a much larger variety of chromatin factors not all associating with the spliceosome. The availability of this broad range of chromatin factors impacting splicing further unveiled their very context specific effect, resulting in either inclusion or skipping, depending on the exon under scrutiny. Finally, a direct assessment of the impact of chromatin on splicing using an in vitro co-transcriptional splicing assay with pre-mRNAs transcribed from a nucleosomal template, demonstrated that chromatin impacts nascent pre-mRNP in their competence for splicing. Altogether, our data show that numerous chromatin factors associated or not with the spliceosome can affect the outcome of splicing, possibly as a function of the local chromatin environment that by default interferes with the efficiency of splicing. |
Транскрипбируемый регион почти всех генов человека, который д. быть вырезан из пре-мРНК, чтобы соединились экзоны вместе. Этот процесс предоставляет возможность модифицировать содержание экзонов в зрелой мРНК, это является мощным источником разнообразия РНК. Такой альтернативный сплайсинг тщательно регулируется и в основном зависит от ряда non-snRNP факторов сплайсинга, которые соединяются сайт-специфически с последовательностями, присутствующими в пре-мРНК.
Считается, что сплайсинг также испытывает влияние со стороны гистоны-модифицирующих энзимов, считывателей гистоновых модификаций ремодельеров хроматина, таких как SWI/SNF. Здесь мы будем рассматривать эти белки, как хроматиновые факторы. Сплайсинг в большинстве своем происходит во время трансляции и поэтому на него д. влиять белки, ассоциированные с транскрибируемой матрицей.
По крайней мере, три модификации гистона H3 присутствуют внутри кодирующего региона генов, а именно, три-метилирование H3 по лизину 9 (H3K9), 27 (H3K27) и 36 (H3K36), которые, как было установлено, влияют на исход сплайсинга в клетках млекопитающих, благодаря специфическому их распознаванию с помощью соотв. хроматиновых факторов [1-4]. Роль внутригенного метилирования ДНК была также защитной или в результате вмешательства в рекрутирование пограничного белка CTCF, который в свою очередь влияет на сплайсинг, или как побудитель три-метилирования H3K9 [5,6].
H3K4 три-метилирование, модификация, тесно ассоциированная с местом старта транскрипции, и с CHD1, ремодельером хроматина, способным связывать эту модификацию, оказалось также связанным с регуляцией сплайсинга [7]. Исследование показало, что первое взаимодействие происходит между хроматиновым фактором (CHD1) и компонентами U2 snRNP, и подтвердило, что этот snRNP может функционировать как мостик между хроматином и аппаратом сплайсинга. Др. наблюдения также подтвердили эту идею. В частности, иммуно-очистка фактора сплайсинга PRP40A из ядерных экстрактов клеток HeLa сводит субъединицы U2 snRNP вместе с субъединицами SWI/SNF и некоторыми членами семейства CHD [8]. Более того, эксперименты с Schizosaccharomyces pombe выявили генетические взаимодействия между U2 и SWI/SNF субъединицами [9]. Наконец, U2 snRNP субъединица SF3B1, как было установлено, взаимодействует непосредственно с хроматином [10], с белками группы Polycomb [11], и с WSTF-SNF2h хроматин ремоделирующим комплексом [12].
U2 snRNP состоит из U2 snRNA и многочисленных белков, включая 7 Sm белков, U2-A', U2-B" и компоненты SF3A и SF3B комплексов. Он ассоциирует с нитевой (lariat) веточкой от сайта вблизи 3' конца интрона посредством спаривания оснований между U2 snRNA и пре-мРНК. Это соединение осуществляется посредством ассоциации U1 snRNP с 5' концом пре-мРНК и посредством связывания SF1 и U2AF с местом ответвления и полипиримидиновым треком, соотв.
U1 и U2 snRNPs вместе с пре-мРНК образуют A комплекс или пре-сплайсесому. В большинстве случаев расположение этого комплекса определяет границы между экзоном и интроном или места сплайсинга, которые д. быть использованы [13].
A комплекс затем ассоциирует с U4/U5/U6 tri-snRNP, и, наконец, U1 и U4 удаляются, чтобы сгенерировать активный B комплекс. Этот комплекс катализирует первую реакцию переэтерификации (transesterification), осуществляет разрез между расположенным вверху экзоном и интроном.
Наконец, реакция сплайсинга завершается с помощью второй реакции переэтерификации, которая воссоединяет два экзона и высвобождает интрон как лассо (lariat) [14].
В данной работе мы исследовали, до какой степени U2 snRNP является центральным в соединении сплайсинга с хроматином. Чтобы решить этот вопрос мы разработали несколько комплементарных подходов. Во-первых, мы отлавливали сплайсесомы, собранные до второй реакции переэтерификации и показали, что в этом комплексе присутствуют хроматиновые и транскрипционные факторы. Во-вторых, с помощью противоположного подхода мы систематически истощали в культивируемых клетках тканей человека известные хроматиновые факторы и проверяли воздействие на репортеры сплайсинга. Наконец, комбинировали впервые хроматин, транскрипцию и сплайсинг в одной и той же реакции in vitro, чтобы подсчитать непосредственное воздействие хроматина на реакцию сплайсинга. Итак, наши наблюдения подтвердили непосредственное и обширное влияние хроматиновых факторов на сплайсинг, при этом исход, который трудно предсказать, возможно из-за влияния хроматина. Discussion Одновременное с транскрипцией удаление интронов происходит вблизи др. аппарата экспрессии генов, включая RNAPII и факторы, ремоделирующие хроматин. Поскольку воздействие RNAPII теперь хорошо известно, то роль хроматина в регуляции сплайсинга во многом неясна. Здесь мы провели всестороннее исследование связи между хроматином и сплайсингом, и мы создали систему in vitro для изучения непосредственно этой связи. Хотя мы имели ограниченное количество репортерных конструкций, наши данные показали, что транскрибирование пре-мРНК с chromatinized матрицы влияет на эффективность сплайсинга и мы предположили, что этот эффект частично обеспечивается физическими взаимодействиями между хроматиновыми факторами и сплайсесомами.
Наш RNAi скрининг выявил неожиданно широкий диапазон факторов скорее, чем специфический субнабор хроматиновых комплексов. Скрининг отлавливал почти каждый хроматиновый фактор, ранее описанный, как модулирующий сплайсиннг (SWI/SNF, Cbx3/HP1γ, ZMYND11/BS69, CHDs…), подтверждая их важность. Некоторые из этих факторов, включая Cbx3/HP1γ и ZMYND11/BS69 бвли исследованы в отношении их геномного эффекта на сплайсинг, еще сильнее подтверждая, что наши hits затрагивают экзоны и за пределами исследованных во время фазы атестации [4,23]. Эти геномные исследования и др. исследования MBD3 и CHD4 также показали, что эти хроматиновые факторы оказывают лишь минорные эффекты на экспрессию факторов сплайсинга, включая SRSF1, SRSF3, SRSF4, SRSF5, SRSF6 и hnRNPA1 [24,25].
Разумным объяснением для различий этих hits является предполагаемая гетерогенность локальных уровней компакции хроматина и/или ряд гистоновых модификаций, окружающих каждую копию нашего интегрированного сплайс-репортера, как и в примерах, описанных для разных копий эндогенных гистоновых генов (The Encode Project Consortium). В этом смысле, наш скрининг может счастливым образом исследовать большой спектр окружающих хроматин молекул, влияющих на регуляцию сплайсинга. Локальное влияние хроматина также проиллюстрировано с помощью наших атестирующих экспериментов на эндогенные гены. Эти эксперименты показали, что в зависимости от экзона при внимательном изучении, данный хроматиновый фактор оказывает различающийся эффект, способствующий включению или исключению экзона довольно непредсказуемым способом. Это согласуется с более ранними исследованиями, показавшими, что в MCF7 клетках рака груди человека, HDAC ингибитор TSA и ингибитор DNA methylase 5azadC способствуют включению экзона E107 из гена SYNE, тогда как они вызывают исключение экзона E33 из гена фибронектина [26].Сходным образом, в клетках Drosophila S2 истощение субъединиц SWI/SNF способствует использованию проксимального сайта сплайсинга в некоторых генах, тогда как он способствует использованию дистальной сайта в др. генах [27]. Возможным источником гетерогенности в хроматине экзонов может быть их степень близости с промоторами и энхансерами, вызываемая образованием петель ДНК [28]. Расшифровка возможно очень сложной комбинации регуляторных сигналов, играющих роль в данном локусе, необходима, чтобы справиться с проблемой влияния на каждый из генов хроматинового фактора на сплайсинг.
Наш протеомный подход подтвердил, что аппарат сплайсинга физически связан с субнабором хроматиновых факторов, когда сплайсесомные комплексы собираются in vivo. Некоторые из этих факторов ранее были связаны со сплайсингом, включая MORF4L2 (close homolog MRG15), Cbx3/HP1γ, SMARCA2/BRM, EHMT1 and EHMT2, EZH2 и множественные HDACs [2-4,29-31]. В некоторых более ранних протеомных исследованиях аппарата сплайсинга, такие взаимодействия не были выявлены или были ограничены немногими факторами. Это , скорее всего, коренится в процедурах, используемых для очистки, т.к. эти подходы были использованы для характеризации аппарата сплайсинга, собираемого de-novo на предварительно синтезированных репортерных РНК. Компоненты, обычно распространяющиеся во время транскрипции, не д. загружаться на сплайсесосмы. Наша процедура базируется на преодолении ограничения закрепления U2-snRNP и делает возможной выделение как de-novo-, так и in-vivo-собираемых сплайсесомных комплексов. В этом смысле, это напоминает ранее описанное отлавливание PRPF40A-U2 snRNP, которое выявляется по присутствию CHD4/8 и некоторых SWI/SNF субъединиц в дополнение к факторам сплайсинга [8]. Среди 15 ремоделирующих факторов, присутствующих в этом комплексе, 13 были также обнаружены с помощью нашего подхода.
U2 snRNP является одним из наиболее хорошо охарактеризованных snRNPs сплайсесом, и к тому же описано несколько версий, соотв. разным стадиям созревания [32], скорее всего, это только одна из наиболее часто встречающихся частиц, охарактеризованая столь хорошо, за исключением тех, ассоциированных с транскрибируемым хроматином. И генетические и биохимические исследования рассматривают snRNPs скорее как важные, чем регуляторные компоненты сплайсесом . Недавние исследования продемонстрировали, однако, что некоторые события альтернативного сплайсинга регулируются на уровне стержневых компонентов аппарата сплайсинга [18,33]. Экзоны, которые мы исследовали, чтобы оценить наши hits, были идентифицированы как осоебнно чувствительные к уровням U2-snRNP. Мы полагаем, что этот snRNP может действовать как медиатор между аппаратом сплайсинга и локальным окружением хроматина и что экзоны, чувствительные к активности U2-snRNP, также, скорее всего, являются объектами действия хроматина.
Наконец, мы отметили, что ряд "chromatin factors", физически связанных со сплайсесомами, в нашем протеомном подходе действительно включают гистоны. Это указывает на то, что эти первичные строительные блоки хроматина могут влиять на исход сплайсинга, возможно влияя на сборку нуклеосом, когда они присутствуют в ограниченном доступе. В самом деле, нуклеосомы могут быть вовлечены в определение экзона, на что указывает повышенное оккупирование и позиционирование нуклеосом, наблюдаемых в экзонах по сравнению с интронами (for a review, see [34]). Сборка нуклеосом может быть важна для скорости RNAPII элонгации, и для формирование петель, соединяющих альтернативные экзоны с позиционированными на промоторах нуклеосомами
[28,35].
|