Посещений:
РОЛЬ Jmjd2c В СБОРКЕ ЭНХАНСЕР-ПРОТЕИНОВЫХ КОМПЛЕКСОВ
Дифференцировка эмбриональных стволовых клеток
Jmjd2c facilitates the assembly of essential enhancer-protein complexes at the onset of embryonic stem cell differentiation Rute A. Tomaz, Jennifer L. Harman, Donja Karimlou, et al. Development 2017 144: 567-579; doi: 10.1242/dev.142489
|
Jmjd2 H3K9 demethylases cooperate in promoting mouse embryonic stem cell (ESC) identity. However, little is known about their importance at the exit of ESC pluripotency. Here, we reveal that Jmjd2c facilitates this process by stabilising the assembly of mediator-cohesin complexes at lineage-specific enhancers. Functionally, we show that Jmjd2c is required in ESCs to initiate appropriate gene expression programs upon somatic multi-lineage differentiation. In the absence of Jmjd2c, differentiation is stalled at an early post-implantation epiblast-like stage, while Jmjd2c-knockout ESCs remain capable of forming extra-embryonic endoderm derivatives. Dissection of the underlying molecular basis revealed that Jmjd2c is re-distributed to lineage-specific enhancers during ESC priming for differentiation. Interestingly, Jmjd2c-bound enhancers are co-occupied by the H3K9-methyltransferase G9a (also known as Ehmt2), independently of its H3K9-modifying activity. Loss of Jmjd2c abrogates G9a recruitment and further destabilises loading of the mediator and cohesin components Med1 and Smc1a at newly activated and poised enhancers in ESC-derived epiblast-like cells. These findings unveil Jmjd2c and G9a as novel enhancer-associated factors, and implicate Jmjd2c as a molecular scaffold for the assembly of essential enhancer-protein complexes with an impact on timely gene activation.
|
Плюрипотентность, это способность клеток генерировать все соматические клоны, она временно приобретается in vivo во время пре-имплантационного развития млекопитающих. После образования бластоциста плюрипотентные клетки, развиваются внутри внутренней клеточной массы (ICM), мозаичные клетки, окруженные вне-эмбриональным слоем - трофэктодермой. К моменту имплантации второй вне-эмбриональный клон, примитивной энтодермы, возникает на поверхности ICM. Одновременно ICM поддерживает его плюрипотентность по мере созревания эпибласта, но в конечном итоге формирует три первичных зародышевых листка и зародышевые клетки после гаструляции (Boroviak and Nichols, 2014; Rossant, 2008).
Плюрипотентные мышиные embryonic stem cells (ESCs) происходят из клеток ICM cells, и могут само-обновляться и надежно удерживаются в недифференцированном состоянии in vitro в присутствии leukaemia inhibitory factor (LIF) и компонентов сыворотки, сохраняя свою способность к мультифункциональной дифференцировке (Evans and Kaufman, 1981; Martin, 1981; Niwa et al., 1998; Ying et al., 2003). Недавно линии стволовых клеток со сходным клональным потенциалом были обнаружены на др. стадиях развития (Chung et al., 2006; Tesar, 2005), включая ряд пост-имплантационных epiblast-derived stem cells (EpiSCs) (Brons et al., 2007;Osorno et al., 2012; Tesar et al., 2007). В то время как ESCs, как полагают, представляют незрелую (пре-имплантационную) фазу плюрипотентности, EpiSCs существуют в более продвинутом состоянии на границе с дифференцировкой (Nichols and Smith, 2009). Более того, ESCs могут стабильно переходить в само-обновляющиеся EpiSCs, приобретая характеристики пост-имплантационных эпибласт-подобных клеток (Guo et al., 2009).
Способность ESC зависит от мощной экспрессии генов само-обновления и замалчивания транскрипции связанных с клонами генов - критический баланс экспрессии генов, поддерживаемый путем общения между транскрипционными факторами и регуляторами хроматина (Azuara et al., 2006; Bernstein et al., 2006;Chen and Dent, 2014; Ng and Surani, 2011; Stock et al., 2007). Удивительно, как активные (ESC-специфические), так затушеванные (primed) (клон-специфические) гены экспрессируются гетерогенным способом, свойство давно рассматриваемое как характеристика ESC культур, которое защищает от реакции на сигналы к дифференцировке (Efroni et al., 2008; Torres-Padilla and Chambers, 2014). Сегодня возможно получать и поддерживать ESCs с пониженной гетерогенностью и подавлением транскрипции генов с помощью химической ингибиции двух путей, связанных с дифференцировкой, Mek и Gsk3 (2i conditions), поддерживая тем самым нативное состояние плюрипотентности in vitro (Marks et al., 2012; Ying et al., 2008).
Регионы промотора гена обогащены островками CpG, а H3K4me3 действуют в качестве геномных платформ для рекрутирования транскрипционных факторов и ко-регуляторов, также как и для базовой транскрипционной системы (machinery) (Deaton and Bird, 2011; Illingworth and Bird, 2009). Более того, дистальные ДНК элементы, такие как энхансеры, играют существенную роль в усилении бычно оснащены H3K4me1 и связаны с помощью пионерских транскрипционных факторов (Calo and Wysocka, 2013; Gibcus and Dekker, 2013; Spitz and Furlong, 2012). Напр., стержневой фактор плюрипотентности Oct4, как было установлено, маркирует как активные, так и сбалансированные (poised) энхансеры в ESCs и EpiSCs (Buecker et al., 2014; Calo and Wysocka, 2013). Актвность энхансера и мощная специфичная для ESC экспрессия генов приводят к дально-действующим взаимодействиям ДНК с транскрипционным аппаратом на промоторах, вызывая кооперативное действие mediator-cohesin комплексов (Kagey et al., 2010). Пока мало известно о качественных особенностях белков, которые стабилизируют образование таких ансамблей.
Гистоновые деметилазы считаются ключевыми игроками в контроле качественных характеристик и развития клеток, главным образом благодаря модуляции окружения хроматина ткане-специфичных генов (Nottke et al., 2009). Недавно, описаны дополнительные роли этих молекул, не зависящие от их ферментативной активности (Shpargel et al., 2012; Wang et al., 2012; Yang et al., 2010), особенно в регуляции рекрутирования Polycomb repressive complexes (PRC) и poised RNA polymerase II на промоторные регионы онтогенетических генов в ESCs (Farcas et al., 2012; Wu et al., 2013). Jmjd2c (известен также как Kdm4c) член семейства генов Jmjd2 первоначально был идентифицирован в качестве H3K9me2/3 и/или H3K36me2/3 гистоновой деметилазы (Chen et al., 2006; Klose et al., 2006; Whetstine et al., 2006). Jmjd2c экспрессируется на высоком уровне в раннем эмбрионе и в ESCs (Boroviak et al., 2015; Burton et al., 2013; Loh et al., 2007;Wang et al., 2010), а с помощью RNA interference-обусловленное истощение белка нарушает развитие на ст. дробления и целостность ESC, а также подавление репрограммирования соматических клеток (Das et al., 2014; Loh et al., 2007; Wang et al., 2010). Jmjd2c-нулевые ESCs и мыши могут, однако, быть получены с помощью подходов генных ловушек (Pedersen et al., 2014), это согласуется с функциональным перекрыванием между членами семейства генов Jmjd2 по поддержанию пролиферации и жизнеспособности клеток (Pedersen et al., 2016). На геномном уровне Jmjd2c преимущественно целенаправленно воздействует на богатые H3K4me3 промоторные регионы активных и ассоциированных с развитием генов в ESCs посредством их Tudor доменов (Das et al., 2014; Pedersen et al., 2014), где Jmjd2c, как полагают, способствует активации транскрипции Jmjd2b-Nanog и репрессии PRC2, соотв. (Das et al., 2014).
В данном исследовании мы открыли ранее неизвестную связь между рекрутированием Jmjd2c на клон-специфичные энхансеры и становлением функционально primed состоянием для дифференцировки in vitro. Мы показали, что в отсутствие Jmjd2c, дифференцировка ESC существенно затрудняется на ранних пост-имплантационных эпибласт-подобных стадиях. Хотя Jmjd2c-нокаутные ESCs могут переходить в само-обновляющиеся EpiSCs, эти клетки неспособны формировать производные трех первичных зародышевых листков, на что указывает их неспособность инициировать соотв. программы генной экспрессии. Напротив, Jmjd2c-нокаутные клетки остаются способными выбирать вне-эмбриональные энтодерм-подобные фенотипы при подходящих условиях. cells remain capable of adopting extra-embryonic endoderm-like phenotypes under permissive conditions. Механически мы показали, что Jmjd2c перераспределяется на клон-специфические энхансеры в исходных (in primed) клетках (serum/LIF) в противовес нативным (2i/LIF) ESCs. Поразительно, Jmjd2c-связанные энхансеры совместнро оккупируются антагонистическим энзимом G9a (известен также как Ehmt2), независимо от его замалчивающей H3K9-модифицирующей активности. Мы показали, что совместная оккупация Jmjd2c и G9a совпадает с образованием активирующих, Med1-содержащих энхансерных комплексов. Потеря Jmjd2c устраняет рекрутирование G9a на Jmjd2c-связываемые дистальные сайты, это коррелирует с неэффективностью загрузки mediator-cohesin комплексов в происходящие из ESC EpiSCs и воздействует на активацию генов после спецификации клонов. Итак, эти данные показывают, что Jmjd2c необходим для успешной транскрипции генов и соматической дифференцировки плюрипотентных стволовых клеток и указывают на новую регуляторную роль Jmjd2c в стабилизации сборки важных энхансер-белковых комплексов в начале дифференцировки ESC.
DISCUSSION
Мы идентифицировали новую регуляторную функцию Jmjd2c на ткане-специфичных энхансерах во время подготовки ESC к дифференцировке. мы показали, что Jmjd2c необходим для успешной мультиклональной дифференцировки, что подтверждается формированием EB. В отсутствие Jmjd2c, EBs были маленькими и неспособными к индукции экспрессии генов, ассоциированных с дифференцировкой, включая ранние маркеры трех мезодермального, энтодермального и эктодермального листков. Более того, мы установили, что дифференцировка ESC затрудняется или останавливается на ранней пост-имплантационной эпибласт-подобной стадии. В самом деле в то время как Jmjd2c-нокаутные ESCs могут переходить в само-обновляющиеся cEpiSCs, но failed эти клетки неспособны устанавливать функциональное primed состояние - мнение, которое было подкреплено здесь их неспособностью к дальнейшему прогрессу в предшественники мезодермы. Напротив, мы установили, что Jmjd2c-нокаутные ESCs могут легко дифференцироваться в похожие на производные примитивной энтодермы при подходящих условиях, т.к. это недавно было подтверждено на тройных Jmjd2abc-нокаутных моделях (Pedersen et al., 2016). Интересно, что среди трех членов семейства Jmjd2s, Jmjd2c уникально подавляется в примитивной энтодерме из развивающегося бластоциста, тогда как в он усиливает свою активность на ст. перед и после имплантации (Fig. S3) (Boroviak et al., 2015). Этот паттерн экспрессии in vivo наиболее тесно совпадает с первичной ролью Jmjd2c в эпибласте, в то время как он безразличен для формирования вне-эмбриональных тканей, как показывают исследования с использованием моделей ESC, EpiSC и XEN in vitro.
Мы подтвердили, что нокаут Jmjd2c не является вредным для пролиферации и поддержания недифференцированного фенотипа ESC после продолжительного культивирования (Pedersen et al., 2014), заключение распространяется и на, происходящие из ESC, EpiSCs. Эти результаты еще больше подтверждают выносливость самообновления стволовых клеток, что, скорее всего, отражает компенсаторные механизмы среди родственных транскрипционных регуляторов, включая членов семейства Jmjd2 (Pedersen et al., 2016). Эти результаты однако противоречат более ранним исследованиям, показавшими, что shRNA-обусловленное истощение Jmjd2c приводит к спонтанной дифференцировке ESC и/или дерепрессии многих клон-специфических маркеров (Das et al., 2014; Loh et al., 2007). Расхождения между этими отличающимися фенотипами могут быть связаны с различиями в генетическом фоне, в условиях культивирования и с использованием разных knockdown конструкций в противовес исследованиям моделей конституитивного нокаута ESC. Важно, что наше заключение о том, что истощенные по Jmjd2c ESCs само-обновляются нормально, но все же неспособны соотв. дифференцироваться в происходящие из эпибласта предшественники, базируется на на конкурентных функциональных характеристиках Jmjd2c-knockout и -knockdown моделях, тем самым исключаются эффекты вне мишеней, обычно связанные с shRNA подходами. Ранее опубликованные исследования о функции Jmjd2c в ESCs (Das et al., 2014; Loh et al., 2007; Pedersen et al., 2014) не исследовали влияние истощения Jmjd2c на способность к дифференцировке ESCs после формирования EB и клон специфичной индукции, которая устраняет дальнейшее сравнение.
Интересно, что эктопически экспрессируемый Jmjd2c в ESCs также приводит к подавлению дифференцировки в ответ на образование EB (data not shown). Эта находка вместе с тем, что Jmjd2c обчно подавляется во время этого процесса, подчеркивают важную роль этого белка на начало дифференцировки. Соотв. мы обнаружили, что Jmjd2c рекрутируется своевременно на клон-специфические энхансеры после понуждения ESC к дифференцировке. С помощью прямого сравнения Jmjd2c геномных ДНК-связывающих сайтов в 2i/LIF и serum/LIF, мы подтвердили, что Jmjd2c преимущественно соединяется с H3K4me3-бгатыми TSS регионами активных и ассоциированных с дифференцировкой генов в 2i/LIF. Поразительно, однако, что мы идентифицировали существенную фракцию serum/LIF-специфических Jmjd2c-связывающих сайтов, картируемых вне TSS регионов, перекрывающихся с H3K4me1/me2-богатыми энхансерными регионами в вблизи той же самой когорты генов мишеней. Хотя связывание Jmjd2c менее обильное на дистальных относительно TSS сайтах (Fig. S8 and Fig. S10), мы подтвердили, что Jmjd2c сходным образом рекрутируется, по крайней мере частично, на энхансеры и соотв. промоторы посредством Tudor доменов, скорее всего, путем распознавания H3K4me2/1 и H3K4me3, соотв. (Pedersen et al., 2014). Это согласуется с детекцией Jmjd2c в H3K4me3- и H3K4me1-coupled протеомных базах данных (Engelen et al., 2015). Принимая во внимание, что регуляторные регионы обеспечивают (nucleate) связывание многочисленных транскрипционных регуляторов и, ко-факторы содержащих, молекул, могут также вносить вклад в рекрутирование Jmjd2c посредством межбелковых взаимодействий на этих сайтах.
Удивительно, однако, Jmjd2c, как было установлено, обнаруживает сходную концентрацию на активных и pre-marked (poised) энхансерах в serum/LIF (Fig. 5), подтверждая, что Jmjd2c может действовать как молекулярная платформа для рекрутирования энхансерных составляющих. В частности, мы задались вопросом, действительно ли потеря Jmjd2c в ESCs может влиять на перераспределение Oct4 и p300 на вновь активированных (Fgf5) энхансерных сайтах после превращения ESC-в-EpiSC. Соединение Oct4, p300 и p300-обусловленное отложение H3K27ac, однако, сохранялись на Fgf5 в Jmjd2c-нокаутных cEpiSCs. Вместо этого мы установили, что Jmjd2c необходим для собственно связывания Med1 и Smc1a на активных (Fgf5) и poised энхансерах в эпибласт-подобных клетках (Fig. 6 and Fig. S12). Облегчающая роль Jmjd2c в сборке активированных энхансер-белок комплексов также было подтверждена способностью Jmjd2c физически взаимодействовать с G9a и Med1 в ESCs. Итак, эти находки подтверждают. что в отсутствие Jmjd2c, происходит неэффективная загрузка важных mediator-cohesin комплексов на клон-специфических энхансерах, нарушающая активацию скооперированных генов, что объясняет дефект дифференцировки, наблюдаемый в Jmjd2c-нокаутных клетках.
Принимая во внимание роль медиатора и когезина в соединении энхансеров и основных промоторов (Kagey et al., 2010), мы полагаем, что рекрутирование Jmjd2c на энхансеры может совпадать и/или вносить вклад в события петлеобразования ДНК перед активацией генов и спецификацией клонов (Fig. 7). В соответствии с этой моделью, мы установили, что Jmjd2c-связанные пики тесно согласуются с сайтами взаимодействия промотора с энхансером, как это обнаруживается по соседству с Foxa2 в ESCs (Fig. S13). Интересно, мы отметили, что стабильность всех Jmjd2c-связанных взаимодействий промотор-энхансер, наблюдаемых в геноме достоверно усиливается в serum/LIF по сравнению с 2i/LIF (CHiCAGO score analysis, P-value 2.446?10?12; O.J. and H.G.S., unpublished), это коррелирует с перераспределением Jmjd2c на poised энхансерах во время начала дифференцировки ESC. Однако, осталось неясным, действительно ли повышенное обнаружение Jmjd2c на энхансерах может быть причиной или результатом стабилизированных взаимодействий промотор-энхансер в serum/LIF.
Fig. 7.
Proposed model: assembly of activating Jmjd2c-G9a centred enhancer-protein complexes. Jmjd2c and G9a co-occupy poised (lineage-specific) enhancers in primed ESCs where they stabilise the assembly of mediator-cohesin complexes (Kagey et al., 2010) that are necessary for the formation of DNA loops and for potent gene activation at the exit of pluripotency and upon differentiation.
Интригующей находкой является совместное рекрутирование H3K9-methyltransferase G9a на Jmjd2c-связанные дистальные пики в ESCs. В противовес канонической роли в замалчивание генов (Feldman et al., 2006; Mozzetta et al., 2014), наивысшие уровни совместного обогащения G9a неожиданно обнаруживались на ESC-специфических, Jmjd2c-связанных энхансерах, подтверждающие, что совместное обогащение G9a/Jmjd2c может совпадать с образованием активирующих комплексов. Более того, и подобно Oct4, p300, Med1 и Smc1a, G9a также присутствовал в клон-специфических, Jmjd2c-связанных энхансерах, хотя уровни в ESCs были редуцированы. В отсутствие Jmjd2c, связь с G9a дестабилизировалась, это демонстрировалось также в происходящих из ESC cEpiSCs вместе с Med1 и Smc1a. Интересно, что G9a , как было установлено, способен взаимодействовать с Jmjd2c, Med1 или CDYL, подтверждая. что G9a может формировать как активирующие, так и репрессирующие комплексы в ESCs (Fritsch et al., 2010). Это согласуется с предыдущими сообщениями, показавшими, что G9a рекрутируется совместно и взаимодействует или с ко-активатором Med1 или ко-репрессором Jarid1 взаимно исключающим способом на генах β-globin во время гематопоэза (Chaturvedi et al., 2012; Shankar et al., 2013). Удивительное и согласующееся с двойной ролью G9a в регуляции экспрессии генов, мы обнаружили, что Jmjd2c-G9a совместно связываемые мишени существенно обогащены среди дифференциально экспрессируемых генов в нокаутных по G9a ESCs (Mozzetta et al., 2014) и у E8.5 эмбрионов (Auclair et al., 2016), это четко подтверждает и усиление активности генов и подавление in vitro и in vivo (Fig. S14). Особенно гены, ассоциированные с онтогенетическими процессами, преимущественно подавляются у E8.5 эмбрионов в отсутствие G9a (Auclair et al., 2016; Mozzetta et al., 2014). Однако, механизмы, лежащие в основе действия G9a как репрессора и активатора в ESCs и др. клеточных контекстах (Chaturvedi et al., 2012; Shankar et al., 2013) остаются неизвестными.
Несмотря на глобальное увеличение уровней H3K9me2 в отсутствие Jmjd2c, мы не выявили какого-либо аберрантного приобретения H3K9 и метилирования ДНК Jmjd2c/G9a совместно связанных ассоциированных с клонами генов в Jmjd2c-нокаутных ESCs, в cEpiSCs или после клональной спецификации (Fig. 4; data not shown). Это говорит против роли Jmjd2c в постоянном удалении G9a-обусловленных отложений H3K9me2, подразумевая новые не зависимые от гистонов роли Jmjd2c и G9a в ткане-специфических энхансерах. Хотя точные молекулярные взаимодействия между двумя молекулами необходимо ещё полностью расшифровать, мы отметили, что авто-метилирование сайтов G9a закрепляет связывание репрессивных комплексов (Ruan et al., 2012), которые ранее были идентифицированы как потенциальные мишени для Jmjd2c-обеспечиваемого деметилирования (Ponnaluri et al., 2009). Осуществляемое деметилирование G9a с помощью Jmjd2c посредством его каталитического домена, действительно является предварительным условием для взаимодействия с активирующими комплексами, необходимо исследовать. Итак, дальнейшее выяснение того, как Jmjd2c и др. гистоновые деметилазы могут действовать в качестве ключевых пост-трансляционных регуляторов, чтобы способствовать сборке активирующих энхансер-белок комплексов, может предоставить важную информацию по регуляции активности энхансеров и экспрессии генов в стволовых клетках и в развитии.
|