Yost и др. показали, что цитоплазматический домен heparin-sulphate proteoglycan syndecan-2 фосфорилируется в клетках анимальной шапочки (презумптивной эктодерме) справа, но не слева у эмбрионов
во время гаструляции [на ст.11 (Kramer et al., 2002)]. Фосфорилирование, как полагают, влияет на способность syndecan-2 обеспечивать формирование LR патерна в мезодерме, которая приходит в контакт с эктодермой во время гаструляции. Как syndecan-2 м. передавать сигналы мезодерме, неясно, но он м. участвовать в локализации белков, сходных с ростовыми факторами, внутри сигнального комплекса на клеточной поверхности (Bernfield et al., 1999). Идея, что синдеканы обеспечивают перенос LR информации от эктодермы к мезодерме, особенно интересна, правда возникает вопрос , оперирует ли сходный механизм в др. видах помимо
A model uniting monocilia, gap junction communication and polycystin-2 into a signalling pathway
Как (и в самом ли деле) эти очень разнообразные белки и структуры работают вместе, чтобы создать или распространить информацию LR асимметрии? Модель тока жидкости предполагает, что действие моноцилий запускает внеклеточные детерминанты. Др. возможность, что моноцилии инициируют сигнал, такой как волна Ca
2+, которая распространяется через слой клеток, окружающий узелок. На Рис. 5 показано, как моноцилии, щелевые соединения и polycystin-2 м. функционировать скординировано, чтобы распространить межклеточную волну Ca
2+. Межклеточные волны Ca
2+ хорошо известны [напр., в эндотелиальных, глиальных и печеночных эпителиальных клетках (Sanderson, 1995)] и они м. также влиять на самую раннюю асимметричную экспрессию генов внутри и вокруг узелка эмбрионов кур, таких как
Shh, fgf8 и
Wnt8c [сходная модель была недавно предложена (Tabin and Vogan, 2003)]. В отдельности от вовлечения моноцилий, щелевых соединений и polycystin-2 в LR асимметрию и экспрессию вблизи узелка, получены доказательства в пользу модели при изучении аутосомно доминантного поликистоза почек, это заболевание, как известно, затрагивает каждый из этих белков и струуктур. В нрмальных почечных канальцах и протоках моноцилии локализуются на апикальной поверхности эпителиальных клеток, определяя, по-видимому, диаметр просвета путём детекции изменений динамики жидкости (Nauli et al., 2003; Praetorius and Spring, 2001; Praetorius and Spring, 2003). Изгибание моноцилий запускает приток Ca
2+ через цилиарные или соседние каналы, это в свою очередь обусловливает высвобождение Ca
2+ из inositol 1,4,5-trisphosphate [Ins(1,4,5)
P3]-чувствительных внутриклеточных хранилищ. Сигнал распространяется как волнапо окружающим клеткам посредством диффузии вторичных мессенджеров [таких как Ins(1,4,5)
P3] через канылы щелевых соединений. Polycystin-2 ко-локализуется с моноцилиями почек (Pazour et al., 2002; Yoder et al., 2002), где он м. оказаться каналом, который позволяет вступать внеклеточному Ca
2+. Локализация polycystin-2 однако всё ещё служит предметом спора, одни полагают. что он функционирует и как Ca
2+ канал в цитоплазматической мембране (Hanaoka et al., 2000) и как внутриклеточный высвобождаюещий канал, чувствительный к Ins(1,4,5)
P3, на ER (Koulen et al., 2002).
При поликистозной болезни почек отсутствие или polycystin-2 или моноцилий вызывает фокальную пролиферацию эпителиальных клеток, которая в конечном итоге и даёт расширения кист. Если это приложить к детерминации LR асимметрии в узелке, то модель позволяет сделать несколько предсказаний: (1) polycystin-2-зависимая волна Ca
2+ д.б. видимой вблизи узелка и д.б. асимметричной; (2) распространенеие сигнала Ca
2+ должно зависеть от щелевых соединений и моноцилий; и (3) сигнал Ca
2+ д.влиять на асимметричную экспрессию генов. Из них только моноцилии в первую очередь связаны с детерминацией асимметрии, участие остальных ещё необходимо подтвердить. Модель не предсказывает, м. ли сигнал Ca
2+ распространяться в направлении налево, в направлении направо или в обоих направлениях. Направление распространения обеспечивает простейшую связть с экспрессией нижестоящих генов, но если это так, то что предопределяет ориентацию? Tabin and Vogan недавно предположили, что существуют два типа моноцилий в узелке мышей: один набор генерирует лево-направленный ток жидкости, а второй набор ощущает его (Tabin and Vogan, 2003). Согласно этому мнению д.б. врожденная асимметрия узелковых моноциллярных структур, генерирующая асимметрию эмбриона, это м.б. приложимо к мышам, у которых направленный налево ток жидкости явяляется самым проявлением асимметрии. Однако трудно согласовать это заключение, что врожденное свойство узелка мыши генерирует асимметрию эмбриона с наблюдениями, что развивающийся узелок эмбринов кур приобретает LR паттерн от окружающих тканей (см. выше). Поэтому разумнее предположить, по крайней мере для цыплят, что любая sidedness monocilia/polycystin-2-зависимого сигнала Ca
2+ м.б. продиктована вышестоящим сигналом, вообще одной зависимой от H
+/K
+-ATPase активностью, которая поддерживает клеточный voltage потенциал на правой стороне узелка и полоски в онтогенетическом окне, который перекрывается по времени с моментом, когда выявляются моноцилии. Контроль над распространением сигнала Ca
2+ также м. достигаться путём регуляции некоторых свойств эпителиальной структуры или физиологии, необходимых для получения или распространения вторичного мессенджера. Это м.б. связано с тем, что мРНК Cx43 экспрессируется асимметрично на правой сторолне узелка эмбрионов кур и м., следовательно, навязывать направленность, но его роль в этом процессе плохо изучена помимо наблюдаения, что антисмысловое истощение мРНК Cx43 mRNA затрагивает асимметрию экспрессии нижестоящих генов (Levin and Mercola, 1999).
Conclusions and perspectives
The past few years have seen remarkable progress towards understanding how LR asymmetry is patterned and the next few should be as impressive. Clearly, the speculative and incomplete model that associates monocilia, gap junctions and polycystin-2 into a signalling pathway needs to be evaluated and refined. It is important to learn if (and how) upstream signals, such as generated by the H
+/K
+-ATPase, are coupled to signalling at the node and whether such signalling operates only in chick and
Xenopus but not in the mouse. Indeed, a major challenge is to resolve whether early LR patterning information is initiated and processed similarly in different species. Differences in the timing of axial patterning, early cleavage and gastrulation, and the anatomy of key signalling centers, such as the node or analogous structures, make the possibility of diverse mechanisms quite likely. Divergent chick, frog, fish and mouse evolution might have provided selective advantages that favored the orientation of LR asymmetry as early as the first cell cycle in animals such as the frog. Similarly, whether the node functions to initiate LR patterning, as monociliary motion might do in the mouse, or respond to earlier cues, as might occur in chick, could reflect divergent architectures of the node (Dathe et al., 2002), and this possibility needs to be addressed functionally. The application of recent advances in reverse genetics, such as RNAi, is certain to provide answers to these fascinating questions.
Another longstanding issue to be resolved is why nearly 100% of homozygous
inv mutant mice exhibit LR inversions (Yokoyama et al., 1993). The mutation deletes nearly the entire coding region of the cytoplasmic INV protein (Mochizuki et al., 1998; Morgan et al., 1998) and, in its presumed absence, nodal fluid flow has been described as slowed, but not reversed (Okada et al., 1999), thus frustrating attempts to couple INV to monociliary function. Perhaps related, therefore, are the observations that homozygous
inv mutant embryos exhibit abnormal epithelial thickening on the edges of the node (Okada et al., 1999) and develop kidney cysts resembling those in polycystic kidney disease (PKD) (Mochizuki et al., 1998; Morgan et al., 1998; Yokoyama et al., 1993), which suggests that disturbances in epithelial character might affect the ability to propagate signalling downstream of monociliary function. Nonetheless, why these alterations would lead to reversals remains puzzling.
Finally, it is important to distinguish between when LR asymmetry information is first generated and when it can be regenerated. The mammalian embryo, for instance, has a considerable ability to reconstitute axial pattern after experimental intervention, such that removal or addition of blastomeres of pre-implantation embryos can lead to perfectly normal animals. This plasticity has been misinterpreted as meaning that axial patterning occurs relatively later than in more `mosaic' embryos, such as those of the frog, as a result of interactions between blastomeres. Careful studies, however, have indicated that the animal-vegetal axis in the fertilized mouse egg, defined by the location of the polar body, correlates with the future long axis of bilateral symmetry in the blastocyst and, if left undisturbed, presages the anteroposterior body axis of the fetus (Gardner, 2001; Johnson, 2001). Any LR information laid down this early and perturbed experimentally might also be reconstituted during subsequent development. An example of this plasticity is the apparent de novo generation of asymmetry in Xenopus embryos by manipulations that act at multicellular stages. Fertilized Xenopus embryos normally acquire LR asymmetry by the two- to four-cell stage, as revealed by the selective depletion of H+/K+-ATPase α mRNA from the ventral left blastomere (Levin et al., 2002). Yet previous studies showed that forced expression of the transcription factor Siamois (which mimics endogenous dorsal Siamois after the 1000 cell stage) induces secondary body axes on the ventral side of the embryo that are oriented ventral to ventral with respect the primary axis (belly-to-belly twins) and that these secondary axes can have normal LR asymmetry (Nascone and Mercola, 1997). The observation that manipulated embryos can bootstrap LR information well after the initial orientation event normally occurs suggests that multiple mechanisms might exist to discriminate left from right in the early embryo.
Сайт создан в системе
uCoz