Посещений:
Примордиальные Зародышевые Клетки

Ведение: Генетический Контроль

Guidance of primordial germ cell migration
Erez Raz
Current Opinion in Cell Biology 2004, 16:169–173

Primordial germ cells (PGCs), the progenitors of the gametes, migrate from the position where they are specified towards the region where the gonad develops. To reach their target, the PGCs obtain directional cues from cells positioned along their migration path. One such cue, the chemokine SDF-1, has recently been found to be critical for proper PGC migration in zebrafish and in mice. In Drosophila, too, a molecule that is structurally related to chemokine receptors and is important for PGC migration has been identified. The ability to visualize chemokine-guided migration at a high resolution in vivo in these model organisms provides a unique opportunity to study this process, which is relevant for many events in normal development and disease.



Blaser, H. et al.
Migration of zebrafish primordial germ cells: a role for myosin contraction and cytoplasmic flow.
Dev. Cell 11, 613–627 (2006)
Article


Blebbing (пузырчатые) клетки казались непостижимыми и курьёзными до недавнего времени. Хотя некоторые исследования последних 30 лет показали, что blebbing важен для клеточной подвижности, blebbing обычно ассоциирует с апоптозом. Поэтому роль blebbing в подвижности была просмотрена, а догма утвеждала, что в первую очередь выпячивания из ламеллоподий посредством полимеризации актина движут клетки вперед. В 2006 Blaser et al. показали, что клетки могут использовать исключительно базирующуюся на myosin blebbing подвижность, чтобы мигрировать направленно на большие расстояния и достигать места своего предназначения.
Используя высокого разрешения быстрое получение картинок, Blaser et al. показали, что быстро выпячивающиеся и втягиваемые пузырьки (blebs) обеспечивают подвижность примордиальных зародышевых клеток у рыбок данио in vivo. Отметим, что кортикальные актиновые филаменты отсутствовали в выпячивающихся пузырьках, это указывает на то, что полимеризация актина не управляет мембранными выпячиваниями. Более того, приток кальция предшествует образованию пузырьков и миозин активируется по фронту blebbing клеток. Эти процессы, как полагают авт., вызывают отделение плазматической мембраны от подлежащего актинового кортекса — приток цитоплазмы в эту область затем вызывает выпячивание пузырька и прогрессирующее выпячивание новых пузырьков позволяет клеткам мигрировать направленно.
Затем Blaser et al. показали, что in vivo клетки используют этот механизм, чтобы перемещаться — и подтвердили предыдущие указания, что myosin может управлять подвижностью. Сегодня мы знаем, напр., что раковые клетки могут переключаться с ламеллоподиальной на bleb-based подвижность.
Развитие и функция органа связана с кооперацией разных типов клеток. Во многих случаях клетки, которые орган, происходят из удаленных др. от др. и от места образования органа.
Гонады, орган, где генерируются гаметы, состоит из двух больших популяций клеток, соматических и зародышевых клеток. Соматические клетки гонад являются критическими для поддержания собственно развития зародышевых клеток, клона, который дает спермии и яйцеклетки. Интересно, что у большинства организмов зародышевые клетки специфицируются в положении, которое отделено от места формирования гонад [1,2].
Поэтому зародышевые клетки (называемые primordial germ cells или PGCs на этой стадии) мигрируют в развивающемся эмбрионе и проникают в развивающиеся гонады [1,2].
Анализ миграции PGC у разных организмов подтверждает идею, что клетки проводятся к своим мишеням с помощью сигналов, продуцируемых соматическими клетками вдоль маршрута миграции [1]. Идентифицированы некоторые молекулы, участвующие в обеспечении PGCs информацией о направлении миграции.

Guidance of PGC migration in Drosophila


Drosophila PGCs (или полярные клетки) формируются раньше, чем клетки, которые представляют собой соматическую часть гонад в др. месте [1,3]. Из задней части эмбриона, где они специфицируются, PGCs перемещаются вместе с инвагинирующим зачатком задней части средней кишки в направлении нижней части эмбриона. PGCs покидают среднюю кишку путем пересечения её эпителия и накапливаются в дорсальном положении, так что оказываются в контакте с мезодермой. PGCs затем мигрируют в направлении клеток предшественников соматических гонад (somatic gonadal precursor (SGP)), с которыми они устанавливают контакты и в конечном итоге сливаются, чтобы сформировать гонады. Инициальная транслокация PGCs вместе с инвагинирующей задней частью зачатка средней кишки управляется с помощью перемещения соматических клеток, при этом PGCs пассивно переносятся вместе с энтодермальными клетками. На следующей стадии, однако, PGCs активно мигрируют по кишке. Этот процесс также зависит от соматических клеток, которые образуют межклеточные пространства внутри однослойного эпителия и тем самым позволяют PGCs проникать сквозь них [4-6].
Установлено, что миграция PGC м.б. подразделена на отдельные ступени. Кроме того идентифицированы несколько молекул, необходимых для направленной миграции PGCs [7-12,13]. Напр., активная миграция через эпителий кишки зависит от функции гена endoderm-1 (Рис. 1a). Этот ген экспрессируется в PGCs и кодирует орфановый рецептор с 7-transmembrane (7-TM) доменом, который сходен с chemokine рецепторами [13]. Роль рецепторов этого семейства в миграции PGC продемонстрирована на рыбках данио и мышах, передача сигналов через 7-TM рецепторы представляет собой эволюционно законсервированный механизм управления миграцией PGC. Помимо этого трансэпителиальная миграция нуждается в функции малой GTPase Rho1, возможно для того, чтобы сделать возможными специфические изменения в архитектуре актинового цитоскелета [13]. После пересечения эпителия кишки



A simplified schematic representation of the spatial distribution of molecules relevant for guidance of PGC migration in Drosophila, mouse and zebrafish embryos. (a) Expression of trapped in endoderm-1 (Tre-1, blue) in the PGCs of Drosophila is required for transepithelial migration out of the posterior midgut. Once out of the posterior midgut, the PGCs are directed towards the mesoderm by the repulsive activity of Wunen and Wunen-2, which are expressed in certain areas of the posterior midgut (red). The PGCs are then attracted to the somatic gonadal precursor cells that express hmgcr (green). (b) At the 9th day of mouse embryonic development the PGCs are found at the ventral part of the hindgut. From there they migrate dorsally towards regions expressing SDF-1 (yellow) that directs them to the genital ridges. (c) Zebrafish PGCs are formed within a broad domain of SDF-1a expression (yellow). Alterations in the shape of this domain by control over the spatial activity of the sdf-1a promoter and simultaneous migration of the PGCs to domains that express the gene at high levels results in cell accumulation in the region where the gonad develops. For simplicity only the left half of the embryo is illustrated.

две, по-видимому, независимые и пространственно разобщенные активности ведут PGCs в направлении SGPs (Рис. 1a). Wunen и Wunen-2, гомологи lipid phosphate phosphatases млекопитающих, создают отталкивающую среду, направляющую PGCs в направлении мезодермы [7,11]. Далее, 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase (HMGCoAr, columbus) ответственна за генерацию привлекательной среды в области-мишени [9]. Хотя точный способ действия HMGCoAr ещё не установлен, этот энзим экспрессируется в мезодермальной мишени и контролирует ограничивающую скорость ступень пути mevalonate; HMGCoAr , следовательно, д.б. важным для продукции соединений, используемых для модификации действительных аттрактантов (напр., липиды используются для модификации белков).
Эти исследования проливают свет на значение взаимодействий между соматическими клетками и мигрирующими клетками, взаимодействий, которые гарантируют, что развивающиеся гонады будут оккупированы PGCs. Соматические клетки м. играть или пермиссивную роль (напр., путем изменения свойств эпителия средней кишки и тем самым способствуя миграции PGC) или инструктивную роль (напр., в результате продукции отталкивающих и привлекающих сигналов).

Guidance of PGC migration in mouse


Несмотря на анатомические различия между эмбрионами и на разные способы спецификации PGC [14-16], в принципе пути миграции PGCs мышей сходны с теми, что описаны для дрозофилы. После того как инвагинирует энтодерма, чтобы сформировать заднюю кишку, PGCs обнаруживаются вдоль вентральной стороны формируемого органа. Покидая это место, PGCs активно мигрируют через дорсальный аспект кишки и затем осуществляют непосредственную миграцию в направлении генитального гребня [17,18]. Как и у Drosophila роль соматической ткани в поддержании направленной миграции продемонстрирована и у мышей. Напр., PGCs, лишенные β1-integrin, не колонизируют эффективно гонады [19]. Эта находка подчеркивает важность взаимодействий между PGC и внеклеточным матриксом. Важно, как продемонстрировали Godin et al. [20] in vitro, что ткань генитального гребня м. привлекать PGCs, хотя молекулы. ответственные за эту активность неизвестны. Дополнительные молекулы участвуют в ведении PGCs мышей, такие как c-kit рецепторная тирозин киназа, которая экспрессируется в PGCs и ее лиганд Steel, который экспрессируется соматическими клетками вдоль маршрута миграции. Предполагается, что взаимодействие рецептор-лиганд между этими молекулами необходимо для поддержания миграции и жизнеспособности PGCs [21-23], но прямая демонстрация роли Steel как наводящего сигнала все еще отсутствует. Следовательно, вполне возможно, что передача сигналов c-kit играет лишь пермиссивную роль за счет лишь поддержания пролиферации и жизнеспособности мигрирующих PGCs мышей. Наиболее многообещающим кандидатом на роль сигнальной молекулы, которая ведет мышиные PGCs является chemokine stromal cell derived factor 1 (SDF-1). В контексте проведения PGC, эта молекула была первоначально идентифицирована у рыбок данио [24]. Рецептор для SDF-1, 7-TM доменовый белок CXCR4, экспрессируется в зародышевых клетках мышей, тогда как экспрессия его лиганда на высоком уровне обнаруживается в генитальном гребне и гонадах, мишенях мигрирующих клеток [25,26] (Рис. 1b). Потребность в передаче сигналов chemokine для колонизации PGCs продемонстрирована при изучении процесса у мышей, дефицитных по активности рецептора [26] или лиганда [25]. В обоих случаях спецификация и поступление в кишку, из которой PGCs начинают свою дорсальную миграцию, не затронуты, но мутантные мыши обнаруживают существенное снижение количества PGCs, которые способны достичь генитального гребня. Нарушение колонизации гонад у этих мутантных мышей, по-видимому, отражает двойную роль передачи сигналов CXCR4 в развитии PGC: в дополнение к очевидным дефектам наведения, общее количество PGC снижено, это указывает на то, что CXCR4 участвует в контроле пролиферации и/или выживании [26]. Наилучшее доказательство того, что SDF-1 играет непосредственную роль в проведении PGCs у мышей, получено на живых культурах области задней кишки, где SDF-1 м. влиять на миграцию GFP-меченных PGC [26]. В частности, применение экзогенного SDF-1 ингибирует миграцию PGCs в направлении генитального гребня, возможно путем создания помех генерации позиционной информации с помощью эндогенного лиганда. Боле того, SDF-1-покрытые кусочки, продуцирующие высокие локальные концентрации белка, м. привлекать мигрирующие зародышевые клетки и менять траектории своей миграции.
Как и у Drosophila миграция мышиных PGC зависит от пермиссивных взаимодействий с соматическими клетками и от инструктивных сигналов, которые ведут их в направлении их мишеней. Наша способность отслеживать процесс миграции, используя slice culture setup, вместе с доступностью мышей, дефицитных по рецепторам и/или лигандам, д. облегчить исследования хемокинами управляемую клеточную миграцию.

Guidance of PGC migration in zebrafish


В противоположность просто организованной миграции из одиночных точек старта у мышей и Drosophila, PGCs рыбок данио специфицируются в 4-х позициях, которые случайно ориентированы в отношении оси эмбриона [27,28]. Несмотря на эту чрезвычайно сложную ситуацию практически все клетки достигают своих мишеней в течение первого дня развития. Сложность этого процесса особенно наглядна в экспериментах, когда PGCs трансплантировали в область, предназначенную давать головные структуры, которые тем не менее оказались способны достигать гонад [29]. Предпринимаются попытки понять лежащий в основе механизм, который позволяет клеткам достигать своих мишеней, путь миграция PGC у эмбрионов дикого и мутантного типа и поведение PGCs у живых эмбрионов (Рис. 2). Этот анализ привел к определению 6 ступеней миграции, некоторые из которых связаны с активной миграцией, а некоторые с пассивной миграцией в результате которой PGCs переносятся с помощью движений соматических тканей [28,30 ].
Основным заключением из этих исследований было: во-первых, то, что PGCs зависят от сигналов наведения от соматических клеток; во-вторых, что направляющие сигналы являются аттрактантами; в-третьих, что на их пути к гонадам, клетки проходят через домены внутри эмбриона, которые являются промежуточными мишенями [28,30 ,31]. Результаты этих исследований показали, как PGCs достигают общей мишени, независимо от их точки старта. Короче, образуется широкий домен аттрактивных условий в раннем эмбрионе, который включает позиции, где специфицируются PGCs. Динамические изменения на этой стадии формы этого домена



Active migration of zebrafish PGCs in vivo. Snapshots of PGCs expressing GFP on their membrane showing the formation of cellular protrusions in the leading edge and active migration relative to the weakly labelled neighbouring somatic cells. Photographs taken at intervals of 1 minute and 30 seconds spanning 7 minutes and 30 seconds of development.

и возникающей в результате миграции PGCs достигает кульминации в накоплении PGCs в двух кластерах в положении, где развиваются гонады. Молекулой, ответственной за привлечение zebrafish PGCs в направлении их промежуточных и окончательных мишеней, является хемокин SDF-1a, секретируемая молекула, которая экспрессируется в доменах, раннее определенных как привлекающие PGCs (Рис. 1c) [24,31]. У мутантных эмбрионов, у которых паттерн экспрессии SDF-1a изменен в результате аномального соматического развития, миграция PGC изменяется и соответствует новому профили экспрессии гена [24]. Сходным образом экспрессия SDF-1a в эктопических местах достаточна, чтобы привлечь PGCs [24]. Наконец, у эмбрионов, у которых активность SDF-1a [24] или его рецептора CXCR4b [24,32] редуцирована, то клетки достигают эктопических позиций, подтверждая тем самым, что SDF-1a служит в качестве эндогенного направляющего сигнала для PGCs рыбок данио. Клетки, в которых передача сигналов SDF-1a ингибирована, являются подвижными, но в противоположность PGCs дикого типа, они обнаруживают не направляемую миграцию и обладают менее поляризованной клеточной морфологией [24].

Conclusions


Over the past few years, the field of PGC migration has advanced significantly, primarily as a result of the identi- fication of molecules that serve as directional cues for the cells. These findings make the study of PGC migration, a classical topic in developmental biology, directly relevant to work on the development of other organs [33,34], stem cell homing [35,36], leukocyte trafficking [37,38] and neuronal cell migration [33,39], in which the same molecules are utilized. Moreover, the numerous recent demonstrations of the role of CXCR4 in tumor formation and the spreading of malignant cells [40,41,42] make the research of PGC migration pertinent to this subject too. The accessibility of the zebrafish and Drosophila embryos and the techniques that permit visualization of live PGC migration in the mouse provide excellent experimental systems in which these processes can be explored.
Сайт создан в системе uCoz