Extracellular matrix (ECM) создает структурную поддержку для формирования тканей и органов. ECM соединяется с substrate-adhesion молекулами на поверхности клеток и влияет на различные пути передачи внутриклеточных сигналов, которые регулируют жизнеспособность, пролиферацию, полярность и дифференцировку. Важным семейством адгезивных молекул, которые соединяются с ECM являются integrins. Интегрины являются гетромерными трансмембранными белками, которые состоят из α и β субъединиц, и они состоят из крупных внеклеточных доменов и относительно небольших цитоплазматических доменов1. Интегрины могут переключаться между активной и неактивной конформацией. В активном состоянии интегрины обладают низким сродством к лигандам. Внутриклеточные сигнальные события, такие как стимуляция protein-kinase-C, могут быть первичными для интегринов, они приводят в результате к конформационным изменениям, которые приводят к экспозиции лиганд-связывающего сайта (FIG. 1). Связывание лиганда активирует сигнальные каскады, которые ведут к сборке мультибелковых комплексов в местах клеточной адгезии с ECM. Эти события имеют два важных значения для клетки: они образуют соединение между ECM и актиновым цитоскелетом и они изменяют ход путей многих внутриклеточных сигналов.
Среди интегринов, β1 integrin вносит вклад в большое количество интегриновых гетеродимеров, тогда как β3 integrin dsgkyztn важную адгезивную роль в тромбоцитах - выдающаяся система для изучения адгезии между ECM и клетками1. β1 и β3 integrins экспрессируются широко, а изучение функции β1 и β3 integrins предоставляет много общей информации на обеспечиваемую интегринами адгезию.
Делеция высоко законсервированного гена β1 integrin у разных организмов ассоциирует с дефектами адгезии, пролиферации, жизнеспособности и полярности2-6. Однако, хотя эти эксперименты и показали, что integrins важны для этих процессов, они дали моло информации о том, как эти процессы регулируются. Делеции определенных молекул фокальной адгезии у разных организмов приводят к довольно сходным фенотипам, к β1-integrin-нулевому фенотипу, это указывает на то, что определенные внутриклеточные белки могут играть ключевую роль в регуляции функции β1 integrins.
Три белка, которые были выявлены в этих исследованиях в качестве важных регуляторов передачи интегринами обеспечиваемых сигналов, это integrin-linked kinase (ILK), адапторный белок PINCH (наиболее интересный Cys-His-rich белок) и parvin. Эти молекулы формируют гетеротрехмерный комплекс, который мы обозначили как IPP комплекс, который назван по входящим в него компонентам. Рассмотрим современные знания от функции IPP комплекса. Взаимодействия между компонентами IPP и многочисленными партнерами по связыванию будут обсуждены, чтобы объяснить, как комплекс IPP
функционирует в качестве адаптора между интегринами и актиновым цитоскелетом, и как центр (hub), который регулирует несколько сигнальных путей.
Identification, architecture and assembly of IPP
ILK была идентифицирована в 1996 в двугибридном скрининге у дрожжей на белки, которые могут соединяться с цитоплазматическим концом β1 integrin7. Белок, который был клонирован содержал три домена (FIG. 2). N-terminal домен содержит 3 ankyrin повтора, которые обеспечивают межбелковые взаимодействия, и предположительно четвертый ankyrin повтор, который лишен законсервированных остатков. C конец обладает значительной гомологичной последовательностью с Ser/Thr protein kinases. Предполагаемый pleckstrin homology (PH) домен располагается между этими двумя доменами и частично ч ними перекрывается. Эксперименты с культурой клеток показали, что физиологическим лигандом ILK PH домена является phosphatidylinositol-3,4,5-trisphosphate (PtdIns(3,4,5)P3)8,9. ILK является центральным компонентом комплекса IPP; он связывает PINCH белки посредством N-терминального домена ankyrin-повтора и parvins посредством киназного домена. Он также связывает комплекс с цитоплазматическими концами β1 и β3 integrins7,10-14, но пока не известно, связывает ли он др. интегрины. Одиночная изоформа ILK идентифицирована у всех видов, обсуждаемых в этом разделе.
PINCH1 (известный также как LIMS1) первоначально был идентифицирован в 1994 как маркер стареющих эритроцитов, а его связь с ILK обнаружена в 1999 (REFS 15,16). Вторая изоформа, PINCH2 (известная также как LIMS2), была предсказана на основании последовательностей бызы данных и в последствие охарактеризована17,18. PINCH1 и PINCH2 являются адапторными белками, которые состоят из 5 LIM доменов и тандемных nuclear localization signals17,19, обе изоформы соединяются с ILK посредством N-терминального LIM домена взаимно исключающим способом10,18. Имеется существенное перекрывание в паттернах экспрессии PINCH1 и PINCH2 во взрослых тканях и оба гена экспрессируются в слоях гладких мышц развивающегося эмбриона19.
Parvins - семейство белков, которое состоит из actopaxin/CH-ILKBP/α-parvin, affixin/β-parvin и γ-parvin - соединяется с ILK посредством второго из двух calponin homology (CH) доменов13,14,20,21. Взаимодействие между α-parvin и ILK частично зависит от PtdIns(3,4,5)P3 (REF. 22) и от фосфорилирования α-parvin с помощью CDC2 и mitogen-activated protein kinase
(MAPK)23-25. Неясно, регулируются ли др. parvins сходным образом, хотя β-parvin также может быть фосфорилирован14 (TABLE 1). α- и β-parvin имеют перекрывающиеся паттерны экспрессии в разных тканях, но экспрессия γ-parvin ограничена гематопоэтической системой26. Следовательно, возможно, что разные
IPP комплексы могут собираться внутри одной и той же клетки. Эта идея в дальнейшем была подтверждена, т.к. было показано, что small inhibitory RNA (siRNA)-обусловленный нокдаун α-parvin в клетках HeLa стимулирует активность Rac и образование lamellipodium. Это говорит о том, что α-parvin может функционировать как негативный регулятор Rac в клетках, которые экспрессируют как α- так и β-parvin27. Избыточная экспрессия β-parvin в клетках HeLa способствует апоптозу, вообще-то из-за конкуренции с α-parvin за связывание ILK. Мониторинг уровней экспрессии parvins в клетках, которые подверглись воздействию специфических условий, и иммунопреципитация дискретных комплексов IPP д. определить, имеют ли эти данные биологическое значение и позволяют ли они исследования механизмов, которые регулируют экспрессию разных изоформ parvin.
IPP-complex assembly and stability. Ансамбль IPP-комплекса предшествует клеточной адгезии, это указывает на то, что комплексы сначала образуются в цитозоле, независимо от адгезивных сигналов28. Стабильность индивидуальных компонентов IPP зависимт от формирования комплекса, т.к. RNA interference (RNAi)-обусловленное истощение одного из членов комплекса приводит в результате к деградации др. компонетов с помощью proteasome-обусловленного процесса29. Это осложняет интерпретацию результатов по генетическим делециям или RNAi деплеции, из-за дефектов, которые ассоциируют с делецией одного из компонентов, что может быть обусловлено снижением уровней др. компонентов. Начато исследование специфических ролей членов IPP-комплекса, принимая во внимание их взаимную стабилизацию и деградацию30. Деградация ILK или PINCH белков может быть предупреждена экспрессией PINCH1 или PINCH2 LIM1 домена в Pinch1-дефицитных клетках31 или экспрессией ILK ankyrin повторов в Ilk-дефицитных клетках, соотв. (C. Grashoff and R.F., unpublished data), но только комплекс, который состоит из белков полной длины эффективно собирается в фокальные адгезии в культуре клеток позвоночных20,28,32. Хотя полной длины IPP комплекс необходим для сборки фокальных адгезий у позвоночных, др. факторы также необходимы для сборки IPP комплексов в фокальные адгезии, включая адапторную молекулу paxillin и возможно MIG2/kindlin-2 (REFS 28,33). Оба эти белка непосредственно соединяются с IPP комплексом посредством киназного домена ILK33,34. Значительно больше белков может участвовать на этой стадии сборки и таргетинга IPP-комплексов. Интересно, что у эмбрионов Drosophila melanogaster PINCH гомолог, steamer duck (STCK), не нужен, чтобы локализовать ILK в сайтах клеточной адгезии35.
IPP-binding partners
Имеется множество молекул, которые, как было установлено, взаимодействуют с IPP комплексами36. Функция IPP комплекса в качестве сигнальной платформы достигается посредством его непосредственного взаимодействия с факторами. которые функционируют в качестве вышестоящих регуляторов многих различных сигнальных путей (FIG. 3).
ILK-interacting partners. Как упоминалось выше, ILK позвоночных
может непосредственно соединяться с цитоплазматическими концами β1 и β3 integrins7,11,12 и тем самым косвенно соединяется с актиновым цитоскелетом посредством своего взаимодействия с
parvins. Взаимодействия с цитоскелетом могут также происходить посредством LD мотива и LIM-доменоваого адапторного белка paxillin, которые соединяются с F-actin путем взаимодействий α-parvin и actin-связывающей адапторной молекулы vinculin20,37,38. Paxillin соединяется с ILK посредством paxillin-binding site (PBS) внутри киназного домена ILK33. Более того, Caenorhabditis elegans ILK соединяется с UNC-112, ортологом MIG2/kindlin-2 позвоночных
(REF. 34). У позвоночных, kindlin-1 соединяется с цитоплазматическими доменами β1 и β3 integrins39, a его потеря вызвает синдром Kindler40. MIG2/kindlin-2 соединяется с migfilin, который в свою очередь соединяется с filamin - адапторным белком, который взаимодействует с несколькими молекулами, включая filamentous (F)-actin и integrins41,42 - и предоставляет др. соединение между ILK и актиновым цитоскелетом.
Binding partners of the PINCH isoforms. Специфичность передачи сигналов IPP комплексов зависит от присутствия разных изоформ PINCH или parvin. Когда PINCH2 избыточно экспрессируется в базовом PINCH1-экспрессирующем фоне, то он конкурирует с PINCH1 за связывание
ILK, но не может передавать интегринами обусловленные сигналы, которые контролируют распространение и миграцию клеток18. Также. хотя экспрессия химерного PINCH, который состоит из PINCH1 LIM доменов и PINCH2 C-терминального хвоста, не м. восстанавливать распространение PINCH1-knockdown HeLa клеток30, тогда как экспрессия полной длины PINCH2 на Pinch1-нулевом фоне полностью восстанавливает дефекты адгезии и распространения Pinch1-нулевых фибробластов31. Следовательно, изоформы возможно ответственны за передачу сигналов, которые контролируют распространение клеток. Функциональные различия между PINCH1 и PINCH2 м. возникать в результате дифференциального связывания Ras-супрессорного белка RSU1. RSU1, как было показано, функционирует как негативный регулятор индуцированной ростовым фактором активации Jun N-terminal kinase (JNK)43-46 (FIG. 3). RSU1
взаимодействует также с LIM5 доменом PINCH1 у D. melanogaster45 и позвоночных46, но это взаимодействие специфично для PINCH1. PINCH2 не соединяется с RSU1, т.к. последовательности LIM5 домена отличны19.
Thymosin-β4 соединяется с LIM доменами -4 and -5 PINCH1, усиливает активность ILK и позитивно влияет на миграцию и жизнеспособность кардиальных клеток47. Взаимодействуют ли PINCH2 и thymosin-β4 не известно, но при условном нокауте Pinch1 в вентрикулярных кардиомиоцитах мышей не обнаруживается заметных фенотипических отклонений48, указывая тем самым, что PINCH2, который также экспрессируется в сердце19, м. компенсировать потерю PINCH1. PINCH1 соединяется также с receptor-tyrosine-kinase
адапторным белком NCK2 in vitro посредством LIM4-SH3-домена (Src-homology-3 домена) взаимодействия49,50. Мутации у позвоночных в PINCH1, которые разрушают PINCH1-NCK2 связывание, редуцируют количества PINCH1, которые обнаруживаются в фокальных адгезиях49, но значение PINCH1-NCK2 взаимодействия неясно. Нет доказательств такого взаимодействия у C. elegans или
D. melanogaster. Мыши, которые несут Nck1 или Nck2 генетическую делецию, фенотипически нормальны, тогда как мыши. которые лишены обоих белков погибают во время эмбриогенеза. Дефекты миграции и цитоскелета Nck1-/- Nck2-/- фибробластов51 устраняются, когда NCK1 вносится повторно, хотя PINCH1-NCK взаимодействие специфично для NCK2.
Более того, NCK1, как было показано, не соединяется с PINCH1 (REF. 52). Эти результаты указывают на то, что взаимодействие между PINCH1 и NCK2 м.б. несущественными in vivo.
Parvins have overlapping binding partners. α-Parvin
соединяется с F-actin непосредственно, а также косвенно путем взаимодействия с paxillin20. Пока не известно. соединяются ли ILK и изоформы parvin с одной и той же молекулой paxillin, или только если две молекулы paxillin соединяются с одиночным IPP комплексом. HIC5, родственный paxillin белок, также связывается с α-parvin20. HIC5 соединяется со многими из белков, которые связывают paxillin, но он также снует в ядро, где он модулирует экспрессию некоторых генов53,54. Кроме того,
α-parvin специфически соединяется с TESK1, Ser/Thr киназой, которая фосфорилирует actin-регулируемый белок cofilin55. β-Parvin соединяется с F-actin, но м. также соединяться с actin-crosslinking белком α-actinin56 и guanine
nucleotide-exchange factor α-PIX57. Он следовательно, предоставляет связь между IPP комплексом и
actin-регулирующими GTPases Rac1 и Cdc42 (FIG. 3).
α-PIX, в свою очередь соединяется с PAK1 (REF. 58), Rac1/Cdc42
эффектором. который регулирует динамику цитоскелета посредством LIM-kinase-ADF-cofilin пути (где ADF является поддержкой actin-depolymerizing factor)59. Более того, α-PIX
соединяется с протеазной субъединицей calpain-4 (REF. 60). Calpain-4
как было показано, расщепляет talin и это расщепление является скорость-ограничивающей ступенью в разборке фокальныйх адгезий61. Функции parvin-связывающих партнеров указывают на то, что parvins играют роль в регуляции динамики актина и обороте фокальных адгезий. β-Parvin соединяется также с мембраны репарирующим белком dysferlin на сарколемме скелетных мышц; наблюдение, которое выявило потенциальную роль β-parvin в репарации мембран62. Партнеры по связыванию менее охарактеризованного γ-parvin ещё не идентифицированы.
Other roles of the IPP-complex proteins? Делеция одного из компонентов IPP комплекса приводит к деградации др. компонентов, но эта деградация оказывается незавершенной29,63, это указывает на то, что индивидуальные компоненты могут выполнять дополнительную роль вне комплекса. PINCH1 снует между ядром и цитоплазмой в Шванновских клетках и он обнаружен в ядрах первичной энтодермы мышей и мышечных клетках C. elegans. Эти наблюдения указывают на то, что PINCH1 может играть роль в регуляции генов или передаче сигналов между цитоплазмой и ядром17,63,64. β-Parvin локализуется в сарколемме скелетных мышц, где он может играть роль в Ca2+-зависимой репарации мембран вместе с dysferlin62. ILK распределяется по межклеточным контактам в дифференцирующихся кератиноцитах, где он участвует в ранних ступенях формирования слипчивых соединений (adherens-junction)65,66.
ILK catalytic activity
ILK функционирует в качества адапторного белка, но недавно было установлено, что ILK обладает также каталитической активностью. Киназный домен ILK обнаруживает существенную гомологию с Ser/Thr protein kinases, за исключением последовательностей внутри каталитической петли и законсервированного DXG мотива67,68. Эти отличия от канонических киназных последовательностей трудно согласо, т.к. ILK лишен обычной каталитической базы и Mg2+-chelating остатков. Более того, последовательность ILK каталитического домена различна у разных видов69 (FIG. 4). Такая толерантность к мутациям указывает на то, что ILK обладает киназной активностью, которая возможно необязательна для его функции. Тем не менее, рекомбинантная, очищенная ILK, ка было установлено, фосфорилирует некоторые субстраты in vitro7,70,71 (TABLE 1), и вполне возможно, что ILK сохраняет остаточную киназную активность, которая выявляется in vitro. Т.к. кинетические скорости киназной реакции не были определены, а доказательства киназной активности in vivo слабы, то нельзя пока решить, обладает ли ILK достаточной активностью, чтобы действовать как физиологически действующая киназа in vivo.
ILK model substrates. Наиболее широко используемые последствия активности ILK это фосфорилирование GSK3β и AKT/PKB (protein kinase B), которые регулируют многие различные сигнальные пути (FIG. 3). Активация AKT/PKB нуждается в фосфорилировании по Thr в положении 308 с помощью phosphatidylinositol3-kinase (PI3K)-dependent kinase-1
(PDK1) и по Ser в положении 473 с помощью PDK2 (которая известна также как hydrophobic-motif kinase (HMK)). Идентификация PDK1 является однозначной, но качественные особенности PDK2/HMK всё ещё предмет споров. ILK, среди др. кандидатов (BOX 1), как было предположено, действует как HMK и эта идея находит себе подтверждение в иммунопреципитации. показавшей, что ILK непосредственно связана с AKT/PKB71.
Regulation of ILK activity. ILK-зависимое фосфорилирование регулируется PI3K-зависимым способом. Ингибиторы активности PI3K редуцируют и активность ILK в лизированных клеточных иммунопреципитатах и нарушают фосфорилирование предполагаемых ILK субстратов в клеточных культурах, в то время как избыточная экспрессия PI3K каталитической субъединицы или добавление PtdIns(3,4,5)P3 усиливает ILK-зависимую киназную активность в культурах клеток и in vitro, соотв.8. Экспрессия thymosin-β4 в кардиомиоцитах также увеличивает активность ILK, как показывает уровень фосфорилирования
AKT/PKB и Ser47347. Напротив, каталитическая активность ILK негативно регулируется с помощью phosphatase, ILK-associated protein (ILKAP). ILKAP редуцирует киназную активность ILK in vitro и фосфорилирование GSK3β in vivo, но фосфорилирование AKT/PKB
остается неизменным72,73. Это демонстрирует, что механизмы активации GSK3β и AKT/PKB разные, несмотря на тот факт, что оба белка описаны как субстраты для ILK. Механизмы, с помощью которых ILKAP редуцирует активность ILK в отношении определенных субстратов, не известны. Сообщалось, что ILK может аутофосфорилироваться in vitro2, но функция аутофосфорилирования ILK in vivo не изучена.
Perturbation of ILK function. Несмотря на доказательства в пользу киназной активности ILK, генетические эксперименты не смогли продемонстрировать критическую роль киназной активности ILK в некоторых типах клеток. Альтерации в статусе фосфорилирования AKT/PKB или GSK3β не выявляются в Ilk-/- фибробластах74. Более того, статус фосфорилирования предполагаемых ILK субстратов остается неизменным в хондроцитах или кератиноцитах, которые не экспрессируют ILK (K. Lorenz and R.F., unpublished data, and REF. 75). Напротив, делеция Ilk в иммортализованных макрофагах приводит к уменьшению фосфорилирования AKT/PKB и GSK3β, которое устраняется при трансфекции ILK дикого типа, но не киназа-дефицитной мутантной ILK76. Это расхождение может отражать клеточно-специфические различия или может указывать на повышенную зависимость от киназной активности ILK в результате иммортализации.
Низко-молекулярные ингибиторы, которые созданы для специфического подавления киназной активности ILK, предупреждают фосфорилирование AKT/PKB и GSK3β? когда вносятся в клеточные линии с избыточной экспрессией ILK9,71,77. Дальнейшая характеристика одного из этих ингибиторов, KP-392, показала. что он нарушает взаимодействие между ILK и α-parvin и paxillin, и блокирует накопление α-parvin и paxillin в фокальных адгезиях22.
Сходным образом, некоторые различные точковые мутации в ILK, которые были разработаны для устранения каталитической активности, нарушают межбелковые взаимодействия и могут действовать, предупреждая сборку функциональных комплексов IPP. избыточная экспрессия дикого типа ILK в клеточных культурах приводит к усилению фосфорилирования AKT/PKB и GSK3β во многих типах клеток. Напротив, избыточная экспрессия доминантно-негативной мутации ILK (Glu359Lys) редуцирует фосфорилирование AKT/PKB и GSK3β. Хотя мутация Glu359Lys
м нарушает киназную активность ILK8,78, но в др. исследованиях утверждается, что эта мутация не влияет на киназную активность ILK in vitro14,79. Вместо этого Glu359Lys мутация нарушает взаимодействие между ILK и α-parvin и paxillin, что приводит в результате к неспособности сборки ILK в фокальные адгезии14,79. Некоторые инактивирующие точковые мутации в киназном домене ILK были использованы для вычленения киназной функции, но эти мутации (Arg211Ala,
Ser343Ala и Lys220Ala) нарушали также ILK-белок взаимодействия, что делает невозможным интерпретацию отсутствия киназной активности. Мутация Arg211Ala приводит в результате к дефициту связывания α-parvin22, a это взаимодействие необходимо для доставки ILK в фокальные адгезии28. Мутация Ser343Ala устраняет связывание с AKT/PKB, но этот мутантный белок локализуется в фокальных адгезиях71,80. Мутанты Lys220Ala не способны связывать β-parvin81. Др. мутация в этом сайте, Lys220Met позволяет связывать β-parvin, но не обнаруживает каталитической активности14, а др. активирующая мутация, Ser343Asp, обращает этот эффект69 несмотря на потребность в Lys220 для протеин-киназной активности68,82. Мутация Phe438Ala, которая делает невозможной сборку в фокальные адгезии, как полагают, не связывает MIG2/kindlin-2 (REF. 28). Более того, мутации в ILK, которые обнаруживают доминантно-негативные эффекты в клеточной культуре (Glu359Lys или Lys220Met), или устраняют активность protein kinase Raf при не-пермиссивных температурах (Pro358Ser), полностью нормализуют фенотип мутаций ILK с потерей функции у C. elegans (тестирована только Glu359Lys) и у D. melanogaster (все три ILK мутации). Это указывает на то, что киназная активность безразлична для функции ILK у этих организмов34,83. Однако, остаточная киназная активность может быть достаточной для полного восстановления фенотипа дикого типа.
RNAi исследования в трансформированных клетках показали, что нокдаун экспрессии ILK, PINCH1 или α-parvin белка коррелирует со снижением фосфорилирования AKT/PKB Ser473 (REFS 29,76,84-86). Более того,
AKT/PKB Thr308 фосфорилирование также редуцирует отсутствие PINCH1 (REF.29). AKT/PKB не располагается в плазматической мембране в α-parvin истощенных HeLa клетках, несмотря на присутствие ILK в фокальных адгезиях, это демонстрирует, что α-parvin необходим для правильного таргетинга AKT/PKB перед активацией84. Однако, если AKT/PKB постоянно поставляется в мембрану, то фосфорилирование Ser473
не зависит от ILK29,84. Необходимо отметить, что повышенный апоптоз, который возникает в результате нокдауна ILK или PINCH1 не устраняется восстановлением фосфорилирования AKT/PKB, это указывает на то, что эти молекулы регулируют многочисленные пути выживания. Все эти данные по мутагенезу, ингибированию малыми молекулами и RNAi указывают на модель, согласно которой ILK активирует AKT/PKB непрямо, путем облегчения транслокации AKT/PKB в плазматическую мембрану α-parvin-зависимым способом. Будучи локализованным в плазматической мембране AKT/PKB может быть фосфорилирован с помощью др. киназ.
The role of the IPP complex in invertebrates
To study the contribution of the IPP complex to development,
genetic deletion of most components has been
achieved in C. elegans, D. melanogaster and mice (see
Supplementary information S1 (table)). The phenotypes
caused by these deletions confirm a role for the IPP
complex as an adaptor complex between the ECM and
the actin cytoskeleton, but insights into the signalling
function are not as forthcoming, and a role for the ILK
catalytic activity has not been established. Differences
in phenotypes among IPP components, particularly in
mice, reveal that, in addition to a common function as
part of the IPP complex, each component has discrete
functions.
Invertebrates represent relatively simple systems to
study integrin-mediated functions. C. elegans has one
в integrin (βPAT-3) and two α integrin (αPAT-2 and
αINA-1) subunits; D. melanogaster has two β integrin
(βPS and βv) and five α integrin (αPS1-5) subunits.
Both organisms have a single orthologue of ILK, PINCH
and parvin, which allows straightforward analysis of
deletion phenotypes. C. elegans has a second PINCH1-
related gene but this shows only 34% identity with
PINCH1 and contains a putative endoplasmic reticulum
(ER) targeting sequence.
Studies in C. elegans. In C. elegans, genetic deletion of
вpat-3 (REF. 3), pat-4 (which encodes the ILK orthologue)34,
unc-97 (which encodes the PINCH orthologue)17 or
pat-6 (which encodes the parvin orthologue)87 all produce
mutants with a similar PAT phenotype. Although a
direct physical interaction between βPAT-3 and PAT-4
has not been reported, deletion of вpat-3 or the ECM
component unc-52 (which encodes the orthologue of
perlecan) results in mislocalization of PAT-4, which
indicates that PAT-4 requires integrins and ECM to
localize to dense bodies34. Recruitment of PAT-4 to dense
bodies, and the correct organization of βPAT-3 at the cell
membrane also depend on UNC-112 (the orthologue of
MIG2/kindlin-2)34,88. However, there is no evidence that
PAT-4 regulates the GSK3β signalling pathway in this
organism, as the defects that arise from deletion of pat-4
are distinct from the phenotype of the GSK-3β mutant in
C. elegans34. A novel Zn2+-finger protein that is unique
to C. elegans, UNC-98, binds to UNC-97 at M-lines and
dense bodies89. Both proteins are also detected in the
nucleus, which indicates that they might be involved in
gene regulation17,89.
Studies in D. melanogaster. In D. melanogaster, deletion of
βPS, the orthologue of the vertebrate в1 integrin subunit2,
or loss of function of ILK83 or the PINCH orthologue35,
result in striking embryonic muscle-attachment defects.
вPS and PINCH-deficient flies also show dorsal-closure
defects, which indicates that cell migration is impaired2,45.
Adult chimeric flies display a blister phenotype in wing
regions that lack these proteins. These phenotypes are
consistent with the loss of cell adhesion to the ECM.
However, βPS mutants show adhesion defects that result
from the detachment of the cell membrane from the ECM,
whereas the ILK and PINCH mutants are characterized by the detachment of the actin cytoskeleton from the cell membrane. Interestingly, ILK localizes normally to muscle-attachment sites in PINCH-mutant embryos, which indicates that the PINCH loss-of-function phenotype is
not caused by the mislocalization of ILK35. The loss-offunction
mutations in PINCH affect the LIM domains
3-5, therefore it is possible that the LIM domains 1 and 2
are still expressed, and are sufficient to retain correct ILK
localization in this organism.
Cytoskeletal reorganization and changes in cellular
shape that are required during dorsal closure are coordinated
by the JNK signalling pathway (for a review see
REF. 90). Therefore, the dorsal-closure defect in PINCHmutant
flies might be explained, in part, by disrupted
JNK signalling. PINCH might regulate JNK signalling
through two distinct pathways. The first involves the
interaction between PINCH and RSU1 (FIG. 3). Both
PINCH and RSU1 genetically interact with Misshapen,
a MAPK-kinase-kinase kinase (MAP4K) in the JNK
signalling pathway, which demonstrates that both proteins
can negatively regulate this pathway45. The expression
and/or stability of PINCH and RSU1 are mutually
dependent on one another, so the relative contributions
of PINCH and RSU1 in modulating JNK signalling have
not been determined. The second and more-speculative
mechanism involves a PINCH-Dreadlocks-Misshapen
pathway. Dreadlocks, the D. melanogaster orthologue
of NCK2, interacts with Misshapen91. Although mammalian
PINCH1 binds to NCK2 in vitro52, an interaction
between Dreadlocks and PINCH has not been reported.
However, the affinity between mammalian NCK2 and
PINCH1 is weak in vitro, and it is possible that it could
not be detected.
The two main pathways that regulate survival and
proliferation involve the phosphorylation of AKT/PKB
and the stabilization and nuclear translocation of
β-catenin as a consequence of GSK3β phosphorylation
(FIG. 3). However, there is no evidence that ILK is involved
in these pathways in D. melanogaster as ILK loss-of-function
produces a different phenotype to loss of в-catenin
or AKT/PKB34,83,92,93. Furthermore, overexpression of
ILK does not affect signalling through β-catenin83.
Functions of IPP in mammalian systems
Биологические функции членов IPP комплекса были изучены на нескольких типах клеток. Большинство IPP функций может быть соотнесено с ролью IPP комплекса в фокальных адгезиях. Напр., регуляция адгезии распространения подоцитов23, миграция эндотелиальных клеток и кардиомиоцитов47,85, агрегация тромбоцитов11,12, распространение и рост нейронов77,94, и рекрутирование лейкоцитов95 указывают на роль IPP комплекса в динамике актинового цитоскелета и активации интегринов.
Studies in mice. Потеря экспрессии β1 integrin4,5, ILK74, PINCH1 (REFS 48,63) или α-parvin (H. Chu and R.F., unpublished data) приводит к эмбриональной летальности. Однако. эти мутации обнаруживают незначительные различия в своих фенотипах, это указывает на то, что в основе этих фенотипов могут лежать самостоятельные дефекты. β1 Integrin-/-, Ilk-/- и Pinch1-/- эмбрионы прекращают развитие на пери-имплантационных стадиях эмбрионального развития, но Pinch1-/- эмбрионы погибают на эмбриональный день
(E)6.5-E7.5, тогда как β1 integrin-/- и Ilk-/- эмбрионы погибают на E5.5-E6.5. α-Parvin-/- развиваются далее, но погибают вследствие имплантации. Эти временные различия в эмбриональной гибели вряд ли обусловлены PINCH2 компенсацией, т.к. экспрессия PINCH2 не выявляется вплоть до поздних стадий развития19. С др. стороны, Pinch2-/- мыши жизнеспособны, возможно в результате PINCH1 компенсации31. Важно бы установить, не является ли сравнительно более длительное выживание α-parvin-/- эмбрионов результатом компенсации др. членов семейства parvin и чтобы исследовать, могут ли parvins выполнять критическую функцию или до, или во время пери-имплантационного развития.
Эмбриональная летальность Pinch1-нулевых мышей ассоциирует с повышенным апоптозом энтодермальных клеток, это указывает на то, что PINCH1 регулирует клеточную жизнеспособность63. Это наблюдение было подтверждено данными по PINCH1-нокдауну в HeLa клетках29. Однако, ещё необходимо установить, вовлекается ли AKT/PKB в PINCH1-опосредованный апоптический путь у эмбрионов и если так, то как в клетках HeLa существует AKT/PKB-независимый путь.
Условные нокауты членов IPP получены, чтобы преодолеть трудности. связанные с ранней эмбриональной летальностью. Мыши, несущие условные делеции β1 integrin или Ilk в хондроцитах, обнаруживают скелетные дефекты75,96,97 и у них формируется chondrodysplasia. В культуре, β1 integrin- и Ilk-мутантные хондроциты обнаруживают нарушение распространения, аномальное распределение F-actin и нарушение адгезии, хотя Ilk-мутантные хондроциты имеют менее выраженный дефект адгезии. Следовательно, делеция любого белка нарушает соединение между ECM и актиновым цитоскелетом, что необходимо для распространения клеток. Кроме того, снижение пролиферации β1 integrin- или Ilk-дефицитных хондроцитов ассоциирует с дефектом перехода G1-S, но нарушения цитокинеза у β1 integrin-/- хондроцитов выявляют дефект перехода G2-M.
Условные делеции Ilk в эндотелиальных клетках приводят к нарушению сосудистого развития и эмбриональной летальности98. Активация интегринов снижается в отсутствие ILK, что указывает на дефекты миграции, а наблюдаемое увеличение апоптоза согласуется с пониженным фосфорилированием AKT/PKB по Ser473. Однако, апоптоз уменьшается, когда ILK вносится повторно, но не когда вносится постоянно активный AKT/PKB. Это указывает на то, что как и в клетках HeLa может оперировать ILK-зависимый, AKT/PKB-независимый путь в эндотелиальных клетках, чтобы регулировать апоптоз.
Иммортализованный Ilk-/- макрофаги также обнаруживают пониженное фосфорилирование AKT/PKB по Ser47376. Кроме того, ингибирование активности ILK или PI3K, экспрессия доминантно-негативной ILK и нокдаун ILK белка выявляет роль IPP комплекса в AKT/PKB- и GSK3β-обусловленной передаче сигналов в нейронах и лейкоцитах77,94,95,99,100. Однако, фибробласты и хондроциты, которые происходят от Ilk-/- мышей, не обнаруживают изменений фосфорилирования AKT/PKB74,75,97. Эти расхождения могут отражать специфичные для типов клеток различия в потребности для ILK в использовании вышестоящих AKT/PKB и GSK3β.
Insights from studies using embryonic bodies. Т.к. мыши, которые лишены β1 integrin, ILK или PINCH1 погибают в раннем развитии, то эмбриоидные тельца использовали для идентификации специфических дефектов, которые приводят к пери-имплантационной гибели (BOX 2). β1 Integrin-/- эмбриоидные тельца не способны откладывать базальную мембрану из-за дефекта в синтезе
laminin101,102. Напротив, Ilk-/- (BOX 2, figure, part c) и Pinch1-/- (BOX 2, figure, part d) эмбриоидные тельца продуцируют базальную мембрану, но обнаруживают дефекты в поляризации эпибласта и образовании полости; эти дефекты менее выражены в Pinch1-/- эмбриоидных тельцах, что согласуется с их более длительной выживаемостью in vivo63,74. Дефекты в поляризации эпибласта сопровождаются аномальной локализацией F-actin. Эти исследования предоставили доказательства того, что β1 интегрины выполняют иные функции по сравнению с ILK и PINCH1 на пери-имплантационной стадии и подчеркнули важную роль IPP комплексов в организации актинового цитоскелета. Показано также, что IPP комплексы могут регулировать актиновый цитоскелет косвенно посредством NCK2, которая соединяется с модуляторами актина WASP (Wiskott-Aldrich syndrome protein), PAK
(p21-activated kinase) или DOCK180 (180-kDa protein downstream of CRK)103. Кроме того, Pinch1-/- эмбриоидные тельца обнаруживают аномальную межклеточную слипчивость и нарушение жизнеспособности энтодермы63.
Снижение уровня белка ILK в Pinch1-/- эмбриоидных тельцах, сходно с тем, что наблюдается в Pinch1-siRNA-обработанных клетках
HeLa29, это дает возможность объяснить фенотипическое сходство между Ilk-/- и Pinch1-/- эмбриоидными телами63. Однако, дефекты, которые наблюдаются в Pinch1-/- эмбриоидных тельцах, представляют ILK-независимые функции и указывают на то, что функциональная независимость между ILK и PINCH1 не полная. Это подтверждается наблюдением, что Ilk-/- клетки всё ещё экспрессируют низкие уровни PINCH1 и vice versa31, показывая существование разных функциональных пулов этих белков: основной пул, в котором ILK и PINCH1 взаимно зависимы, и второй, небольшой пул, в котором эти белки функционируют независимо.
Недавние данные также подтвердили роль членов IPP в регуляции клеточной полярности и межклеточных контактов63,74,104. Дефекты межклеточной слипчивости в Pinch1-/- эмбриоидных тельцах ассоциированы с диффузным распределением E-cadherin и отсутствием слипчивых соединений63. Однако. как PINCH1 регулирует межклеточную адгезию, изучено плохо. Локализация PINCH1 в межклеточных контактах не описана, но возможно, что PINCH1 регулирует межклеточную слипчивость косвенно. Хотя роль ILK в межклеточных контактах базируется на исследованиях кератиноцитов65,66, но в Ilk-/- эмбриоидных тельцах не выявлено дефектов межклеточной адгезии. Следовательно, PINCH1-обусловленная регуляция межклеточной слипчивости может быть независимой от ILK. В отличие от кератиноцитов66 и клеток эпибласта, клетки трофэктодермы и первичной энтодермы эмбриоидных телец могут поляризоваться в отсутствие ILK74, это указывает на то, что разные эпителиальные клетки могут иметь разные потребности в ILK.
Conclusions
The IPP complex serves as an important transducer
of extracellular signals to control many aspects of cell
morphology and cell behaviour. Although there are
many functions that are likely to be common among
all cell types, certain functions seem to be cell-type
specific. How does the IPP complex achieve specificity? The answer is not clear, but differential binding of ILK
to PINCH and parvin isoforms is likely to be involved.
Titration of binding sites by one isoform might lead to
trans-dominant effects on other isoforms. Therefore,
understanding how cells that express numerous isoforms
of PINCH and parvin control the composition of the IPP
complex to achieve spatial and temporal control over
IPP function will be an important direction for future
investigations.
In addition, the role of ILK as a kinase that is involved
in the phosphorylation of AKT/PKB and GSK3β is
still unclear. Immortalized cell lines or overexpressed
ILK have been used in most of the studies, and few
reports have examined the role of ILK in primary cells.
Many of the effects of ILK-specific inhibitors or PI3K
inhibitors that are observed in ILK-overexpressing cell
lines do not manifest in cells that express basal levels
of ILK. For example, cyclin-D1-promoter activity in
epithelial cells is reduced in response to PI3K inhibitors
only when ILK is overexpressed, which indicates that
PI3K-mediated pathways are not involved in the basal
control of cyclin-D1 expression105. On the other hand,
cyclin-D1 expression in endothelial cells is upregulated
in the presence of vascular endothelial growth factor
(VEGF) in an ILK-dependent manner85, and peroxisomeproliferator-
activated receptor-β (PPARβ)-dependent
upregulation of ILK expression in keratinocytes correlates
with increased phosphorylation of AKT/PKB on Ser473
(REFS 106,107). Interestingly, ILK expression is upregulated
in many human tumours108–110, and in vivo models have
revealed that ILK overexpression leads to the development
of mammary tumours in mice111. Differentiating
the functions of ILK under normal and pathological conditions
will provide insights into how ILK contributes to
disease, and under which conditions ILK can be exploited
therapeutically.
More fundamentally, careful enzymatic analysis of
the kinase activity of ILK and determining the substrate
specificity will address whether ILK is a biologically
relevant AKT/PKB HMK. Furthermore, the elucidation
of the three-dimensional structure of ILK is critical
to adequately address the functions of ILK as a kinase
and as an adaptor molecule. A structure will provide
insights into how a kinase activity can be achieved in
the absence of conserved subdomains, and will identify
potential mechanisms whereby ILK activity is regulated
by PtdIns(3,4,5)P3 and ILKAP. Extending a structural
analysis to PINCH and parvin isoforms will allow us
to identify the differences in their structures that lead to
their distinct biological functions.
Сайт создан в системе
uCoz