Посещений:
Эпигенетика

Феномены, Механизмы

Overview and Concepts
C.D.Allis, T.Jenuwein and D.Reinberg
Epigenetics. - Cold Spring Harbor (N.Y.), 2007. - Chapter 3, P. 23-61

The Mammalian Epigenome

B.E.Bernstein, A.Meissner, E.S. Lander

Cell. - 2007. - V. 128, No. 4. P. 669-681


Химические модификации ДНК и гистоновых белков формируют сложную регуляторную сеть, которая модулирует структуру хроматина и функцию генома. Под эпигеномом понимается полное описание этих потенциально наследуемых изменений по всему геному. Композиция эпигенома внутри данной клетки является функцией генетических детерминант, клонального происхождения и среды. С завершением секвенирования генома человека, исследователи увидели, что сложные эпигенетические изменения детерминируют, как генетическая информация будет проявляться на невероятно варьирующем генетическом фоне, на разных стадиях развития, в разных типах тканей и при болезненных состояниях. В обзоре литературы анализируются крупномасштабные исследования, технологии и задачи в этой области.
GENERAL SUMMARY


Секвенирование ДНК генома человека и геномов многих модельных организмов вызвало существенное возбуждение в биомедицинском сообществе и в общественности в целом в последнее время. Эти генетические "кальки" ("blueprints"), которые следуют хорошо известным правилам Менделевского наследования сегодня доступны для тщательного исследования, открывают дверь к наилучшему пониманию биологии и болезней людей. Это знание также возрождает также надежду на новые терапевтические стратегии и воздействия. Но множество нерешенных вопросов тем не менее остается. Напр., как осуществляется нормальное развитие, учитывая, что каждая клетка содержит одну и ту же генетическую информацию, но следуют они разными онтогенетическими путями, реализуя в точности пространственное и временное предназначение? Как клетки решают, когда делиться, а когда дифференцироваться, или когда сохранять неизменными качественные особенности клеток, отвечая на соотв. программы нормального развития? Ошибки, допускаемые в вышеозначенных процессах могут приводить к генерации болезненных состояний, таких как рак. Кодируются ли эти ошибки, наделяющие недостатками генетические blueprints, которые мы наследует от обоих наших родтелей, или существуют др. слои регуляторной информации, которые пока не прочитаны и не декодированы?
У людей генетическая информация (ДНК) организована в 23 хромосомные пары, содержащие приблизительно 25,000 генов. Эти хромосомы могут быть сравнены с библиотеками с разными наборами книг, которые вместе инструктируют развитие полностью человеческого существа. ДНК последовательности нашего генома состоят приблизительно из 3 x 109 оснований, обозначенных 4 буквами (или основаниями) A, C, G и T , последовательности которых дают хорошо-определяемые слова (гены), сентенции, главы и книги. Однако, что диктует, когда разные книги д. быть прочитаны и в какой последовательности, остается неясным. Встречи этих экстраординарных задач скорее всего и предоставляют информацию о том, как клеточные события будут координироваться во время нормального и аномального развития.
Если суммировать все хромосомы, то молекула ДНК у высших эукариот будет длиной примерно в 2 метра и следовательно, необходима максимальная конденсация примерно в 10,000-раз, чтобы она была совместима с клеточным ядром, компартментом, где клетка содержит свой генетический материал. Оборачивание ДНК вокруг "шпулек" из белков, т. наз. гистоновых белков, создает элегантное решение проблемы упаковки, создавая повторяющийся протеин:ДНК полимер, известный как хроматин. Однако, упаковка ДНК, чтобы она укладывалась в точно предопределенное пространство, создает проблемы, типа, когда слишком много книг на библиотечной полке: становится всё труднее найти и прочитать необходимую книгу, поэтому необходима система индексации. Хроматин в качестве геном-организующей платформы предоставляет такую индексацию. Хроматин не является униформной структурой; он состоит из по-рзному упакованных конструкций от высоко конденсированной части волокна хроматина (известной как гетерохроматин) до менее компактного типа, где гены обычно экспрессируются (известен как эухроматин). Вариации могут передаваться на базовый хроматиновый полимер посредством введения необычных гистоновых белков (известных как варианты гистонов), изменением хроматиновой структуры (ремоделирование хроматина) и посредством добавления химических меток (flags) к собственно гистоновым белкам (известны как ковалентные модификации). Более того, добавление метильной группы непосредственно к cytosine (C) основанию матричной ДНК (метилирование ДНК) может создавать места для присоединения белков, чтобы изменить состояние хроматина или повлиять на ковалентные модификации резидентных гистонов. Недавние доказательства подтвердили, что не кодирующие РНК могут "приводить" специализированные области генома в более компактные состояния хроматина. Т.о., хроматин д. рассматриваться как динамический полимер, который может индексировать геном и усиливать сигналы внешней среды, детерминируя в конечном итоге, какие гены будут экспрессироваться, а какие нет.
Вместе эти регуляторные опции наделяют хроматин организующим принципом генома, известным как "epigenetics," предмет данной книги. В некоторых случаях эпигенетически индексированные паттерны, по-видимому, наследуются при клеточных делениях, составляя клеточную "память", которая может расширять наследуемый информационный потенциал генетического (ДНК) кода. Эпигенетика может таким образом, определена как изменения в генной транскрипции посредством модуляции хроматина, которые не затрагиваются изменениями в последовательностях ДНК.
В обзоре объясняются основные концепции хроматина и эпигенетики и обсуждается, как эпигенетический контроль может дать нам указания по решению некоторых давно стоящих загадок, таких как качественные особенности клеток, туморогенез, пластичность стволовых клеток, регенерация и старение.

1. Genetics Versus Epigenetics


......

2. Model Systems for the Study of Epigenetics


......

3. Defining Epigenetics


Различные эпигенетические феномены связаны в основном с тем фактом, что ДНК не является "голой" у всех организмов, которые имеют настоящее ядро (эукариоты). Вместо этого, ДНК существует в виде интимного комплекса со специализированными белками, которые вместе и составляют хроматин. В своей простейшей форме хроматин - т.е. ДНК, обернутая вокруг нуклесомных единиц, состоящих из небольших гистоновых белков (Kornberg 1974) - которые первоначально рассматривались как пассивные упаковочные молекулы, для обматывания и упаковки ДНК. Определенные формы хроматина заставили, однако, думать о наборе ковалентных и нековалентных механизмов (Section 6). Сюда входят огромное количество посттрансляционных модификаций гистонов, энергия-зависимые ступени ремоделирования хроматина, которые мобилизуют или изменяют структуру нуклеосом, динамическая перетасовка новых гистонов (вариантов) в и из нуклеосом и позиционирующая роль не кодирующих РНК. ДНК сама по себе также может быть модифицирована ковалентно у многих высших эукариот, с помощью метилирования цитозинового остатка, обычно, но не всегда из CpG динуклеотидов. Вместе эти механизмы предоставляют ряд взаимодействующих путей, которые и обусловливают вариации хроматинового полимера (Рис. 3).
Многие, но не все из этих модификаций и изменений хроматина обратимы и следовательно, вряд ли распространяются посредством зародышевой линии. Временные метки привлекательны, т.к. накладывают изменения на хроматиновую матрицу в ответ на внутренние и наружные стимулы (Jaenisch, Bird 2003) и если это так, то регулируют доступ и/или готовность (processivity) транскрипционной кухни, необходимой для "считывания" подлежащей ДНК матрицы (Sims et al., 2004; Chapter 10). Некоторые гистоновые модификации (подобно метилированию лизина), метилированные области ДНК и измененные структуры нуклеосом могут, однако, быть стабильными в течение нескольких клеточных делений. Эти установившиеся "эпигенетические состояния" можно рассматривать как высоко организованные системы хранения информации или средство приобретения клеточной памяти, что изучено плохо. С этой точки зрения хроматиновые "сигнатуры" могут рассматриваться как высоко организованная система хранения информации, которая может индексировать определенные регионы генома и приспосабливать ответы на средовые сигналы, которые диктуют программы генной экспрессии.



Figure 3. Genetics Versus Epigenetics GENETICS: Mutations (red stars) of the DNA template (green helix) are heritable somatically and through the germ line. EPIGENETICS: Variations in chromatin structure modulate the use of the genome by (1) historic modifications (mod), (2) chromatin remodeling (remodefer), (3) histone variant composition (yellow nucleosome), (4) DNA methylation (Me), and (5) noncoding RNAs. Marks on the chromatin template may be heritable through cell division and collectively contribute to determining cellular phenotype.

Значение имеющейся хроматиновой матрицы, которая может придавать силу генетической информации, заключается в том, что она предоставляет многомерные слои для считывания информации с ДНК. Это является необходимым, учитывая огромные размеры и сложность генома эукариот, особенно у многоклеточных организмов (см. Section 11 for further details). У таких организмов оплодотворенное яйцо прогрессирует в ходе развития, начиная с одиночного генома, который становится эпигенетически запрограммированным, чтобы сгенерировать множество из самостоятельных "epigenomes" более чем в 200 различных типов клеток (Fig. 4). Такая запрограммированная изменчивость, как полагают составляет "epigenetic code", который существенно расширяет информационный потенциал генетического кода (Strahl and Allis 2000; Turner 2000; Jenuwein and Allis 2001). Хотя это является привлекательной гипотезой, мы подчеркиваем, что необходима еще большая работа по тестированию этой и сходных соблазнительных теорий. Др. выдвинутые альтернативные точки зрения предполагают, четкие комбинаторные "коды", сходные с триплетным генетическим кодом, маловероятны для гистонов или далеки от обнаружения (Schreiber and Bernstein 2002; Henikoff 2005). Несмотря на эти неопределенности мы согласны с общим мнением, что комбинация ковалентных и не-ковалентных механизмов д. действовать, чтобы создавать состояния хроматина, которые могли бы стать матричными в ходе клеточных делений и развития с помощью механизмов, которые только начинают выявляться. В точности, как такие измененные состояния хроматина в действительности распространяются во время репликации ДНК и митозов остается одной из фундаментальных задач для будущих исследований.


Figure 4. DNA Versus Chromatin The genome: Invariant DNA sequence (green double helix) of an individual. The epigenome: The overall chromatin composition, which indexes the entire genome in any given cell. It varies according to cell type, and response to internal and external signals it receives. (Lower panel). Epigenome diversification occurs during development in multicellular organisms as differentiation proceeds from a single stem cell (the fertilized embryo) to more committed cells. Reversal of differentiation or transdifferentiation (blue lines) requires the reprogramming of the cell's epigenome.

Фенотипические альтерации, которые появляются от клетки к клетке в ходе развития многоклеточных организмов, были описаны Уоддингтоном как "epigenetic landscape" (Waddington 1957). Однако, спектр клеток, от стволовых клеток до полностью дифференцированных клеток, каждая из которых обладает идентичными последовательностями ДНК, заметно отличается по профилю генов, которые в действительности экспрессируются. Учитывая это, эпигенетика позднее получила определение как "Nuclear inheritance which is not based on differences in DNA sequence" (Holliday 1994).
С открытием двойной спирали ДНК и с ранними объяснениями эпигенетики, наше понимание эпигенетического контроля и лежащих в её основе механизмов существенно возросло и позволило сделать описание в более возвышенных терминах "поля" скорее, нежели "феномена" (see Wolffe and Matzke 1999; Roloff and Nuber 2005; Chapter 1). В последнюю декаду достигнут значительный прогресс относительно большинства семейств энзимов, которые активно модифицируют хроматин. Т.о., в сегодняшних современных терминах эпигенетика может быть определена молекулярно (механистически) как "The sum of the alterations to the chromatin template that collectively establish and propagate different patterns of gene expression (transcription) and silencing from the same genome."

4 The Chromatin Template


Нуклеосома является фундаментальной повторяющейся единицей хроматина (Kornberg 1974). С одной стороны, базовая единица хроматина состоит из белкового октамера, содержащего по две молекулы каждого из канонических (или стержневых) гистонов (H2A, H2B, H3 и H4), вокруг которого оборачивается 147 п.н. ДНК. Детальные межмолекулярные взаимодействия между стержневыми гистонами и ДНК определены в исторического значения исследованиях, приведших к рентгеновской картине с атомным разрешением (2.8 Å) нуклеосом, собранных из рекомбинантных частей (Fig. 5) (Luger et al. 1997). Картины нуклеосом высокого разрешения, а также возникающих высшего порядка структур (tetranucleosomes) (Schalch et al. 2005), продолжают привлекать наше внимание, обещая лучше объяснить физиологически относящийся к делу субстрат, с помощью которого оперируют почти все, если не все, механизмы ремоделирования хроматина и транскрипционная кухня (machinery). Стержневые гистоновые белки, которые образуют нуклеосомы являются малыми и сильно щелочными. Они состоят глобулярного домена и гибких (довольно не структуированных) "гистоновых хвостов", которые выступают с поверхности нуклеосом (Fig. 5).



Figure 5. Nucleosome Structure (Left) A 2.8 A model of a nucleosome. (Right) A schematic representation of histone organization within the octamer core around which the DNA (black line) is wrapped. Nucleosome formation occurs first through the deposition of an H3/H4 tetramer on the DNA, followed by two sets of H2A/H2B dimers. Unstructured amino-terminal histone tails extrude from the nucleosome core, which consists of structured globular domains of the eight histone proteins.

Базируясь на аминокислотных последовательностях, гистоновые белки высоко консервативны от дрожжей до человека. Такая высокая степень консервации ведет к предположению, чт эти белки, даже не структуированные хвостовые домены, скорее всего выполняют критические функции. Хвосты, особенно у гистонов H3 и H4, по существу несут важные сигналы для вариабельности нуклеосом (а, следовательно, для хроматина), т.к. многие из остатков являются предметами обширных посттрансляционных модификаций. Ацетилирование и метилирование стрежневых гистонов, особенно H3 и H4, являются основными среди описанных ковалентных модификаций и уже давно считается, что они коррелируют с позитивными и негативными изменениями транскрипционной активности. С пионерских исследований Allfrey с сотр. (Allfrey et al. 1964), идентифицированы и охарактеризованы многие типы ковалентных модификаций гистонов, включая phosphorylation, ubiquitination, sumoylation, ADP-ribosylation, biotinylation, proline isomerization гистонов и сходные др., которые далеки от описания (Vaquero et al. 2003). Эти модификации происходят в специфических местах и остатках, некоторые из которых проиллюстрированы на Figure 6 и представлены в Appendix 2. Специфические энзимы и ферментативные комплексы, некоторые из которых подробно описываются в следующих обзорах литературы и отдельных главах, катализируют эти ковалентные маркировки. Т.к. этот список продолжает расти, то нашей целью является рассмотрение только индивидуальных меток и энзимов, которые иллюстрируют важные общие концепции и принципы.




Figure 6. Sites of Histone Tail Modifications The amino-terminal tails of histones account for a quarter of the nucleosome mass. They host the vast majority of known covalent modification sites as illustrated. Modifications do also occur in the globular domain {boxed), some of which are indicated. In general, active marks include acetylation {turquoise Ac flag), arginine methylation {yellow Me hexagon), and some lysine methylation such as H3K4 and H3K36 {green Me hexagon). H3K79 in the globular domain has anti-silencing function. Repressive marks include H3K9, H3K27, and H4K20 {red Me hexagon), Green = active mark, red = repressive mark.

В определенных областях хроматина нуклеосомы могут содержать варианты гистоновых белков. Первые исследования показали, что такое композиционное отличие вносит вклад в маркирование областей хромосом со специализированными функциями. Варианты белков для стержневых гистонов H2A и H3 сегодня известны, но не существуют для гистонов H2B and H4. Мы подозреваем, что варианты гистонов, хотя часто и минорные в количественных терминах и поэтому более трудны для изучения, обладают достаточной информацией и важны для эпигенетической регуляции.

5 Higher-Order Chromatin Organization


Хроматин, ДНК-нуклеосомный полимер, является динамичной молекулой, существующей во многих конфигурациях. Исторически хроматин классифицируется как эухроматин и гетерохроматин, исходя из паттернов окраски в ядре. Эухроматин является деконденсированным хроматином, он может быть транскрипционно активным и неактивным. Гетерохроматин может быть грубо определен как высоко компактизированный и молчащий хроматин. Он может существовать как постоянно молчащий хроматин (конституитивный гетерохроматин), где гены редко экспрессируются а каком-либо типе клеток организма, или репрессированный (факультативный гетерохроматин) в некоторых клетках во специфического клеточного цикла или стадий развития. Т.о., имеется спектр состояний хроматина, считается. что хроматин является высоко динамичной макромолекулярной структурой, склонной к ремоделированию и реструктуированию, когда он получает соотв. импульсы от вышестоящих сигнальных путей. Лишь недавно, однако, достигнут существенный прогресс в выявлении молекулярных механизмов, которые управляют этими ступенями ремоделирования.
Матрица в виде 11-nm "бусинок на ниточке" представляет собой активную и в основном "расправленную" интерфазную конфигурацию, при которой ДНК периодически оборачивается вокруг повторяющихся единиц нуклеосом (Fig. 7). Хроматиновая нить, однако, не всегда представлена регулярно расположенными наборами нуклеосом. Нуклеосомы могут быть нерегулярно упакованы и уложены в структуры высшего порядка, которые начинают обнаруживаться только при атомном разрешении (Khorasanizadeh 2004). Дифференциальные и высшего порядка конформации хроматина возникают в разных регионах генома во время спецификации клеточных судеб или на определенных стадиях клеточного цикла (интерфазный против митотического хроматина).


Figure 7. Higher-Order Structuring of Chromatin The 11 -nm fiber represents DNA wrapped around nucleosomes. The 30-nm fiber is further compacted into an as-yet-unconfirmed structure (illustrated as solenoid conformation here), involving linker histone HI. The 300-700-nm fiber represents dynamic higher-order looping that occurs in both interphase and metaphase chromatin. The 1.5-jam condensed chromosome represents the most compacted form of chromatin that occurs only during nuclear division (mitosis or meiosis). It is not yet clear how mitotic chromosome-banding patterns (i.e., G- or R-banding) correlate with particular chromatin structures.

Расположение нуклеосом в 11-nm матрице может быть изменено с помощью цис- и транс-эффектов ковалентно модифицированных хвостов гистонов (Fig. 8). цис-Эффекты вызываются изменениями в физических свойствах модифицированных хвостов гистонов, такими как модуляции электростатических зарядов или структуры хвостов, которые, в свою очередь, изменяют контакты между нуклеосомами. Хорошо известен пример ацетилирования гистона в результате чего, как полагают, нейтрализуются позитивные заряды высоко щелочных хвостов гистонов, это обусловливает локальную экспансию хроматиновой нити, что обеспечивает лучший доступ транскрипционной кухни к двойной спирали ДНК. Фосфорилирование путем добавления ряда негативных зарядов, может генерировать "заряженные участки" (Dou and Gorovsky 2000), которые, как полагают, изменяют упаковку нуклеосом или экспозируют N-концы гистонов путем изменения состояния укладки высшего порядка хроматинового полимера (Wei et al. 1999; Nowak and Corces 2004). В основном таким же способом линкерные гистоны (H1), как полагают, способствуют упаковке нитей высшего порядка путем экранирования негативного заряда линкерной ДНК между соседними нуклеосомами (Thomas 1999; Khochbin 2001; Harvey and Downs 2004; Kimmins and Sassone-Corsi 2005). Добавление объемных аддуктов, таких как ubiquitin и ADP-ribose, также может индуцировать разные расположения гистоновых хвостов и открывать наборы нуклеосом. Степень, с которой гистоновые хвосты могут индуцировать компактность хроматина посредством зависимых и независимых от модификации механизмов, неясна.
Модификации гистонов могут также выявлять то, что мы обозначаем как транс-эффекты путем рекрутирования связанных с модификацией партнеров на хроматин. Это можно рассматривать как "считывание" определенных ковалентных гистоновых меток зависимым от контекста способом. Определенные партнеры по связыванию обладают характерным сродством и поэтому известны как "пристани" на специфических гистоновых хвостах и часто действуют как хроматиновые "липучки" ("Velcro") для одного из полипептидов внутри значительно более крупных ферментативных комплексов, которые необходимы для образования хроматинового полимера. Напр., bromodomain - мотив, который распознает ацетилированные гистоновые остатки - часто, но не всегда, является частью энзима histone acetyltransferase (HAT), которая необходима для ацетилирования гистонов мишеней (see Fig. 10 in Section 7) как часть более крупного хроматин-ремоделирующего комплекса (Dhalluin et al. 1999; Jacobson et al. 2000). Сходным образом метилированный остаток lysine внедренный в гистоновые хвосты может быть считан с помощью chromodomains (Bannister et al. 2001; Lachner et al. 2001; Nakayama et al. 2001) или сходных доменов (напр., MBT, tudor) (Maurer-Stroh et al. 2003; Kim et al. 2006), чтобы облегчить нижестоящие хроматин-модулирующие события. В некоторых случаях, напр., ассоциация chromodomain белков преципитирует распространение гетерохроматина с помощью histone methyl-transferase (HKMT)-катализируемого метилирования соседних гистонов, которые могут затем считываться с помощью chromodomain белков (Chapter 5).
Гистоновые модификации как хвостовых регионов, так и глобулярного стержневого региона (Cosgrove et al. 2004) могут также нацеливать ATФ-зависимые ремоделирующие комплексы на 11-nm нить, что необходимо для перехода от сбалансированного эухроматина к транскрипционно активному состоянию. Такая мобилизация нуклеосом может происходить за счет скольжения октамера, альтерации структуры нуклеосом с помощью петлеобразования ДНК (Chapter 12) или замещения специфических стрежневых гистонов на гистоновые варианты (Chapter 13). ATФ-зависимые ремоделировщики хроматина (такие как SWI/SNF, исторически важный пример) гидролизуют энергию, чтобы вызывать существенные изменения контактов гистон:ДНК, приводя в результате к петлеобразованию, скручиванию и скольжению нуклеосом. Эти нековалентные механизмы, как было показано, являются очень важными для событий регуляции генов (Narlikar et al. 2002), точно также как и те, что участвуют в ковалентных модификациях гистонов (Chapter 10). Находки, что специфические ATФ-зависимые ремоделировщики могут перетасовывать гистоновые варианты внутрь и из хроматина, предоставляют средство для связи cis-, trans-эффектов и механизмов ремоделирования. Понимание, как эти взаимосвязанные механизмы действуют сочетанным способом, чтобы видоизменять эпигенетические состояния хроматина, ещё далеко от завершения.




Figure 8. Transitions in the Chromatin Template {as/trans) as-effects: A covalent modification of a histone tail residue results in an altered structure or charge that manifests as a change in chromatin organization. trans-effects: The enzymatic modification of a histone tail residue (e.g., H3K9 methylation) results in an affinity for chromatin-associated protein (mod binder, e.g., HPl). The association of a mod binder (or associated protein complexes) causes downstream alterations in chromatin structure. Histone replacement: A covalent histone modification (or other stimulus) can signal the replacement of a core histone with a histone variant through a nucleosome-remodeling exchanger complex.

Более компактные и репрессивные высшего порядка хроматиновые структуры (30-nm) также могут возникать в результате рекрутирования линкерного гистона Н1 и/или зависимых от модификации или "architectural" ассоциированных с хроматином факторов, таких как гетерохроматиновый белок (НР1) или Polycomb (PC). Хотя общепринято, что компакция нуклеосомного хроматина (11-nm) в 30-nm транскрипционно некомпетентную конформацию сопровождается инкорпорацией линкерного гистона Н1 во время интерфазы, функциональное и структурное исследование этого гистона вполть до недавнего времени было затруднено (Fan et aL 2005). Одной из проблем таких исследований является то, что гистон Н1 проявляется в разных изоформах (~8 у млекопитающих),что делает трудным детальный генетический анализ. Т.к. имеется избыток некоторых изоформ Н1, в то время как др. могут выполнять ткане-специфичные функции (Kimmins and Sassone-Corsi 2005). Интересно, что Н1 сам по себе может быть ковалентно модифицирован (phosphorylated, methylated, poly(ADP) ribosylated, etc.), это открывает возможность, что те транс механизмы, которые сегодня выявлены для стержневых гистонов, могут также распространяться на этот важный класс линкерного гистона, а также на негистоновые белки (Sterner and Berger 2000).
Идут многочисленные дебаты относительно деталей пути, с помощью которого организуются 30-nm хроматиновая нить. В целом предложены, или "solenoid" (одна стартовая спираль) модели, согласно которым нуклеосомы постепенно закручиваются вокруг центральной оси (6-8 нуклеосом на виток), или более открытые "zigzag" модели, согласно которым происходит высшего порядка само-сборка (две стартовые спирали). Новые доказательства, включая те, что получены от рентгеновской структуры с использованием модельной системы, содержащей 4 нуклеосомы, подтвержает, что организация нити более соответствует двух-стартовому, зигзагообразному расположению линкерной ДНК, соединяющей два набора нуклеосомных частиц (Khorasanizadeh 2004; Schalch et al. 2005). Несмотря на этот явный прогресс, следует отметить, что линкерный гистон не присутствует в современных структурах и даже если он присутствует, то 30-nm хроматиновая нить компактизует в 50 раз только нить ДНК. Т.о., безусловно существует больше уровней организации хроматина высшего порядка, чем это наблюдается при исследовании с помощью светового и электронного микроскопа, которые выявляют интерфазное или митотическое состояние хроматина. Несмотря на структурные неопределенности, недавние результаты на живых клетках показали существование множественных уровней укладки хроматина выше 30-nm нити в интерфазных хромосомах. Заслуживающим внимания успехом стала разработка новых подходов к мечению специфических последовательностей ДНК в живых клетках, что делает возможным изучение динамики открытия и закрытия хроматина in vivo в реальном времени. Интересно, что эти результаты выявили динамику взаимодействий позитивных и негативных хроматин-ремоделирующих факторов в в создании структур хроматина высшего порядка для состояний более или менее сравнимых с генной экспрессией (Fisher and Merkenschlager 2002; Felsenfeld and Groudine 2003; Misteli 2004).
Организация в крупные петлеобразные хроматиновые домены (300-700 nm) происходит вообще-то благодаря закреплению хроматиновой нити на периферии ядра или на др. ядерных каркасах посредством ассоциированных с хроматином белков, таких как ядерные lamins. Степень, с которой эти ассоциации дают значимые функциональные "хромосомные территории" остается неясной, но многочисленные сообщения показывают, что эта концепция заслуживает серьезного внимания. Напр., наблюдается образование кластеров из множественных активных хроматиновых сайтов для RNA polymerase II (RNA pol II) транскрипционных факторов и сходная концепция, по-видимому, приложима к образованию кластеров вокруг реплицирующейся ДНК и DNA polymerase. Напротив, образование кластеров "молчащего" гетерохроматина (в особенности перицентромерных фокусов) и генов, локализованных in trans также было задокументировано (see Chapters 4 and 21). Как такие ассоциации контролируются и степень, с которой ядерная локализация хроматиновых доменов затрагивает регуляцию геноа, ещё неясно. Тем не менее существуют интересные доказательства, обнаруживающие корреляции активных и молчащих конфигураций хроматина с определенных территориях ядра (Cremer and Cremer 2001; Gilbert et al. 2004; Janicki et al. 2004; Chakalova et al. 2005).
Большинство конденсированных структур ДНК наблюдается во время метафазной стадии митозов и мейоза. Это обеспечивает адекватную сегрегацию точных копий нашего генома (одна или две копии каждой хромосомы в зависимости от происходящего деления), посредством хромосом, в каждую из дочерних клеток. Такая конденсация вызывает драматическое реструктуирование ДНК из 2 метровой молекулы в полностью расправленном виде в дискретные хромосомы, измеряемые в среднем ы 1.5 µm в диаметре (Fig. 7). Это соответствует не менее чем 10000-кратной компакции и достигается за счет гиперфосфорилирования линкерного (H1) и стрежневого гистона H3 и ATФ-зависимого действия condensin и cohesin комплексов и topoisomerase II. В точности, как негистоновые комплексы ангажируют митотический хроматин (или M-фазные модификации хроматина) и какие правила диктует их ассоциация и высвобождение от хроматина способом, регулируемым клеточным циклом, еще предстоит изучить (Bernard et al. 2001; Watanabe et al. 2001). Сегодня хорошо известно митотическое фосфорилирование гистона H3 (т.e., serines 10 и 28) и членов семейства H1, это может предоставить важную информацию, но генетические и биохимические эксперименты еще не дали полной информации о том, какова функция этих митотических маркеров. Интересно, что формальная теория предполагает, что специфические метилированные маркеры, если в паре с более динамичными и обратимыми маркерами фосфорилирования, то могут действовать как "бинарные переключатели" в гистоновых белках, управляя связыванием и высвобождением нижестоящих эффекторов, которые ангажируют хроматиновую матрицу (Fischle et al. 2003a). Используя HP1 связывание с гистоном H3, метилированным по lysine 9 (H3K9me) и с митотическим фосфорилированием по serine 10 (H3S10ph) в качестве парадигмы, получили доказательства, подтверждающие митотические "methyl/phos переключение" (Daujat et al. 2005; Fischle et al. 2005; Hirota et al. 2005).
Специализированные хромосомные домены, такие как теломеры и центромеры, служат определенным функциям, связанными с собственно хромосомной динамикой. Теломеры действуют как хромосомные концы, обеспечивая защиту и уникальное решение того, как самые кончики молекулы ДНК будут реплицироваться. Центромеры обеспечивают соединительный якорь для микротрубочек веретена во время деления ядра. Оба эти специализированные домены выполняю фундаментальную роль в событиях, которые ведут к успешной сегрегации хромосом. Интересно, что как теломерный, так и центромерный гетерохроматин отличим от эухроматина и даже от др. гетерохроматиновых регионов присутствием уникальных хроматиновых структур, которые являются в основном репрессивными для генной активности и рекомбинации. Перемещая экспрессируемые гены из их нормального положения в эухроматине в новые позиции вблизи центромерного или теломерного гетерохроматина (see Chapters 4-6) может приводить к молчанию этих генов, давая мощный скрининг, описанный ранее, который позволяет идентифицировать супрессоры и энхансеры position-effect variegation (PEV) или telomere-position effects (TPE; Gottschling et al. 1990; Aparicio et al. 1991). Центромеры и теломеры обладают молекулярными сигнатурами, которые включают, напр., гипо-ацетилированные гистоны. Интересно, что центромеры также "маркированы" присутствием гистонового варианта CENP-A, который играет активную роль в сегрегации хромосом (Chapter 14). Т.о., собственно сборка и поддержание самостоятельных центромерного и перицентромерного гетерохроматина является критической для завершения митоза или мейоза и, следовательно, клеточной жизнеспособности. В дополнение к хорошо изученным формам центромерного и перицентромерного конституитивного гетерохроматина достигнут прогресс в отношении механизмов эпигенетического контроля качественных особенностей центромерного (и теломерного) гетерохроматина. Четкие эксперименты показали, что "neocentromeres" могут функционировать на месте нормальных центромер, демонстрируя, что последовательности ДНК не детерминируют качественные особенности центромер (Chapters 13 and 14). Вместо этого, эпигенетические отличительные признаки, включая специфичные для центромер паттерны модификации и гистоновые варианты, маркируют этот специализированный хромосомный домен. Существенный прогресс достигнут в том. как др. кодирующие и не кодирующие и повторяющиеся регионы хроматина вносят вклад в эти эпигенетические сигнатуры. Как любой из этих механизмов связан, если это так, с паттерном хромосомной исчерченности (banding) неизвестно, но остается такая интригующая возможность. Достижение понимания эпигенетической регуляции этих частей уникальных хромосомных регионов необходимо, это подчеркивается фактом, что многочисленные раковые опухоли у людей характеризуются геномной нестабильностью, которая является характерным признаком прогрессирования определенных болезней и новобразований.

6 The Distinction between Euchromatin and Heterochromatin


Существуют множественные формы обоих классов хроматина. Эухроматин или "активный" хроматин состоит в основном из кодирующих последовательностей, которые объясняют лишь малую фракцию (менее 4%) генома у млекопитающих. Каковы молекулярные сигналы, которые маркируют кодирующие последовательности с потенциалом продукции транскриптов и как структура хроматина влияет на этот процесс? Обширная литература указывает, что эухроматин существует в "открытой" (decompacted), более чувствительной к nuclease конфигурации, делая её "готовой" для генной экспрессии, хотя не обязательно транскрипционно активной. некоторые из этих генов экспрессируются повсеместно (гены домашнего хозяйства); др. регулируются в ходе развития или индуцируются стрессами в ответ на внешнесредовые сигналы. Кооперация отобранных цис-действующих последовательностей ДНК (промоторы, энхансеры и локус контрольных регионов), связанных с помощью комбинаций транс-действующих факторов, запускает транскрипцию гена вместе с RNA polymerase и ассоциированными факторами (Sims et al. 2004). Вместе эти факторы оказались отобранными во время эволюции, чтобы контролировать детально разработанные серии биохимических реакций, которые д. происходить в соответствующем месте и в соотв. время. Предоставляет ли хроматин "индексирующую систему", которая лучше сего гарантирует, что приведенная выше кухня достигнет своих последовательностей мишеней в соотв. типе клеток?
На уровне ДНК AT-rich вблизи промоторов часто лишены нуклеосом и могут существовать в ригидной неканонической B-form конфигурации ДНК, что способствует оккупации transcription factor (TF) (Mito et al. 2005; Sekinger et al. 2005). Однако, присоединение TF не достаточно для гарантии транскрипции. Рекрутирование машин, ремоделирующих нуклеосомы посредством индукции активированных гистоновых модификаций (напр., ацетилирования и H3K4 метилирования), облегчает запуск транскрипционной кухни с помощью путей, которые сегодня установлены (Fig. 9 и Chapter 10). Замена смещенных гистонов гистоновыми вариантами после того, как транскрипционная кухня распутает и транскрибирует хроматиновую нить, гарантирует целостность хроматиновой матрицы (Ahmad and Henikoff 2002). Получение полностью зрелых мРНК, однако, также нуждается в пост-транскрипционных процессах с участием сплайсинга, полиаденилирования и ядерного экспорта. Т.о., коллективный термин "эухроматин" скорее всего представляет собой комплекс хроматиновых состояний, которые соответствуют динамической и сложной смеси соотв. машин, которые взаимодействуют др. с др. и тесно с хроматиновой нитью, чтобы осуществить транскрипцию функциональных РНК. Изучение "правил" как, в наиболее широком смысле, "активирующая кухня" взаимодействует с транскрипционным аппаратом, а также с хроматиновой матрицей является важной областью современных исследований, хотя из-за её динамической природы невозможно строго классифицировать это как эпигенетику, а скорее как исследования динамики транскрипции и хроматина.
Что же определяет "гетерохроматин"? Хотя исторически он меньше изучен, чем эухроматин, но новая информация указывает, что гетерохроматин играет критическую важную роль в организации и соответственно функционировании генома от дрожжей до человека (хотя S. cerevisiae имеет отличную форму гетерохроматина). Подчеркивает его потенциальную важность тот факт, что 96% генома млекопитающих состоит из не кодирующих и повторяющихся последовательностей. Новая механистическая информация, лежащая в основе формирования гетерохроматина, приводит к неожиданным находкам. Напр., non-сиквенс-специфической транскрипция, которая продуцирует double-stranded RNA (dsRNA), и является предметом замалчивания с помощью RNA interference (RNAi)-подобного механизма. Продукция таких dsRNAs действует как "сигнал тревоги", отражающий тот факт, что лежащие в основе последовательности ДНК не могут генерировать функциональный продукт или захватываются РНК транспозонами или вирусами. dsRNA затем подвергаются процессингу с помощью Dicer и направляются на хроматин с помощью комплексов, предназначенных инициировать каскад событий, ведущих к образованию гетерохроматина. Используя разнообразные модельные системы был достигнут существенный прогресс в выяснении, чем является высоко законсервированный путь, ведущий к гетерохроматиновому "locked-down" состоянию. Хотя точная последовательность и детали могут варьировать, этот общий путь использует деацетилирование гистоновых хвостов, метилирование специфических лизиновых остатков (напр., H3K9), рекрутирование ассоциирующих с гетерохроматином белков (напр., HP1) и установление метилирования ДНК (Fig. 9). Возможно, что секвестрирование избирательных областей генома в репрессивные ядерные домены или территории может усиливать образование гетерохроматина. Интересно, что растут доказательства, подтверждающие, что гетерохроматин может быть изначальным состоянием ("default state"), по крайней мере, у высших организмов и что присутствие сильного промотора или энхансера, продуцирующего продуктивный транскрипт, может преодолевать гетерохроматин. Даже у низших эукариот приложима генеральная концепция сборки гетерохроматина. Характерные признаки включают гипоацетилированные гистоновые хвосты, сопровождаемые связыванием чувствительных к ацетилированию гетерохроматиновых белков (напр., SIR proteins; see Chapter 4). В зависимости от вида грибов (напр., почкующиеся или делящиеся дрожжи), существуют различнве количества метилированных гистонов и HPl-подобных белков. Даже в этих геномах большинство наборов общих исходных состояний приспособлено для транскрипции, присутствуют некоторые гетерохроматин-подобные регионы генома (локусы спаривания, теломеры, центромеры и т. д.), которые способны супрессировать генную транскрипцию и генетическую рекомбинацию, когда тестируемые гены помещаются в этом новом соседстве.



Figure 9. Distinction between Euchromatic and Heterochromatic Domains
Summary of common differences between euchromatin and constitutive heterochromatin. This includes differences in the type of transcripts produced, recruitment of DNA-binding proteins (i.e., transcription factor [TF]), chromatin-associated proteins and complexes, covalent histone modifications, and histone variant composition.


Какую же полезную функцию может выполнять гетерохроматин? Определение центромер, областей конституитивного гетерохроматина, прекрасно коррелирует с наследуемым эпигенетическим состоянием и как полагают эволюционно управляется с помощью самых крупных кластеров из повторов и повторяющихся элементов хромосом. Такое подразделение гарантирует крупные и относительно стабильные гетерохроматиновые домены, маркированные с помощью репрессивных "epigenetic signatures," облегчающих расхождение хромосом во время митозов и мейозов (Chapter 14). Примечательно, что центромерные повторы и соответствующие эпигенетические метки, которые ассоциируют с ними, удваиваются и перемещаются на др. хромосомные плечи, чтобы создать "silencing domains" в организмах, таких как делящиеся дрожжи. Конституитивный гетерохроматин на теломерах (защитных концах хромосом) сходным образом гарантируют стабильность генома путем функционирования в качестве хромосомных "шапочек". Наконец, формирование гетерохроматина, как известно, является защитным механизмом против вторжения в ДНК. Все вместе, эти результаты подчеркивают общее представление, что гетерохроматин служит важным функциям обслуживания генома, которые могут конкурировать даже с функциями собственно эухроматина.
Итак, широкие функциональные различия между эухроматином и гетерохроматином могут быть приписаны трем известным характеристикам хроматина. Во-первых, природе последовательностей ДНК - т.е. тому, содержит ли она богатую AT "ригидную" ДНК вокруг промоторов, повторяющиеся последовательности и/или последовательности, связывающие репрессоры, ассоциирующие сигнальные факторы. Во-вторых, качество продуцируемых РНК во время транскрипции предопределяет, будут ли они полностью превращены в мРНК, которые смогут быть транслированы, или РНК будет деградировать или бронироваться для использования с помощью RNAi кухни, чтобы осуществить гетерохроматинизацию. В-третьих, пространственная организация в ядере может играть существенную секвестрирующую роль для поддержания локальных конфигураций хроматина.

7 Histone Modifications and the Histone Code


Мы исследовали, как гистоновые модификации могут менять хроматиновую матрицу за счет сis-эффектов, которые меняют межнуклеосомные контакты и пространственное расположение, или за счет транс-эффектов, вызываемых с помощью ассоциаций гистоновых и негистоновых белков. Каков вклад и биологическое значение модификаций гистонов? Паттерны структуры хроматина, которые коррелируют с модификациями гистоновых хвостов, выявляются в ходе исследований с использованием большей части гистонов, подтверждая, что эпигенетические метки могут служить в качестве "ON" (т.e., активных) или "OFF" (неактивных) сигнатур. Это установлено благодаря длинной истории главным образом коррелятивных исследований, показавших, что определенные гистоновые модификации, главным образом ацетилирование гистонов, ассоциируют с активными доменами хроматина или регионами, которые генетически восприимчивы к транскрипции. Напротив, др. метки, такие как определенные фосфорилированные остатки гистонов, длительно ассоциируют с конденсированным хроматином, который, в целом, неспособен поддерживать транскрипционную активность. Гистоновые модификации, показанные в Appendix 2 суммируют места модификаций, известных на сегодняшнее время. Мы подчеркиваем, что они отражают модификации и места, которые не обязательно присутствуют у каждого организма.
Как гистоновые модификации устанавливаются и удаляются прежде всего? Многочисленные работы в области хроматина подтвердили, что модификации гистоновых хвостов устанавливаются ("записываются") или удаляются ("стираются") за счет каталитического действия системы энзимов. ассоциированных с хроматином. Однако, качественные особенности этих энзимов ускользали от исследователей долгие годы. В последнюю декаду идентифицировано очень большое количество хроматин-модифицирующих энзимов из многих источников, большинство из которых собраны в Appendix 2. Это было достигнуто благодаря многочисленным биохимическим и генетическим исследованиям. Энзимы часто находятся в крупных мультисубъединичных комплексах, которые могут катализировать включение или удаление ковалентных модификаций как с гистоновых, так и негистоновых мишеней. Более того, многие из этих энзимов катализируют свои реакции с удивительной специфичностью, чтобы соответствовать остатку и клеточному контексту (т.e., зависит от наружных и внутренне присущих сигналов). Коротко обсудим 4 основные ферментативные системы, которы катализируют модификации гистонов, вместе с их противоположными ферментативными системами, которые ревертируют модификации (Fig. 10) (Vaquero et al. 2003; Holbert and Marmorstein 2005). Вместе эти антагонистические активности управляют устойчивым состоянием баланса каждой из рассматриваемых модификаций.
Histone acetyiases (HATs) ацетилирует специфический лизиновый остаток в гистоновых субстратах (Roth et al. 2001), а возвращается обратно с помощью действия histone deacetylases (HDACs) (Grozinger and Schreiber 2002). Семейство энзимов гистоновых киназ фосфорилирует специфический сериновый или треониновый остаток, а фосфатазы (PPTases) удаляют метки фосфорилирования. Особенно хорошо изучены митотические киназы, такие как cyclin-зависимая киназа или aurora киназа, которая катализирует фосфорилирование стержневого (H3) и линкерного (H1) гистонов. Менее ясны случаи оппозитных PPTases, которые действуют, устраняя эти фосфориляции, когда клетка выходит из митоза.
Описаны два основных класса метилирующих энзимов: PRMTs (protein arginine methyltransferases), чьим субстратом является аргинин (Lee et al. 2005)и HKMTs (histone lysine methyltransferases), которая действует на лизиновый остаток (Lachner et al. 2003). Метилирование аргинина непрямо ревертируется с помощью действия deiminases, которые превращают methyi-arginine (или arginine) в остаток citrulline (Bannister and Kouzarides 2005). Метилированные остатки лизина, по-видимому, химически более стабильны. Метилированные лизины встречается в mono-, di- или tri-methylated состояниях. Некоторые три-метилированные остатки на N-концах H3 и H4, по-видимому, обладают потенциалом стабильно размножаться во время клеточных делений (Lachner et al. 2004), также как и H4K20mel метка в имагинальных дисках Drosophila (Reinberg et al. 2004). Недавно описана лизин-специфическая "demethylase" (LSD1) как amine oxidase, которая способна удалять H3K4 метилирование (Shi et al. 2004). Энзим действует с помощью FAD-зависимой оксидативной дестабилизации amino-methyl связей, приводя к формированию немодифицированного лизина и формальдегида. LSD1, как было показано, является избирательной для активированной метки метилирования H3K4 и может дестабилизировать только mono- и di-, но не tri-метлирование. Эта деметилаза является частью крупного репрессивного белкового комплекса, который кроме того содержит HDACs и др. энзимы. Др. доказательства подтверждают, что LSD1 может ассоциировать в комплекс с андрогеновым рецептором на локусах мишенях и деметилировать H3K9me2 репрессивную гистоновую метку, внося вклад в активацию транскрипции (Metzger et aL 2005). Различные классы гистоновых demethylases были охарактеризованы при использовании более мощного механизма - radical attack - известны как hydroxylases или dioxygenases (Tsukada et al. 2006). Одна из них дестабилизирует только H3K36me2 (an active mark), но не в три-метилированном состоянии. Эта новая Jumonji histone demethylase (JHDM1) содержит законсервированный jumonji домен, которых известно около 30 в геноме млекопитающих, это указывает на то, что некоторые из этих энзимов также способны атаковать др. остатки, а также три-метилированные состояния (Fodor et al 2006; Whetstine et al 2006).
Существенный прогресс был достигнут в выявлении ферментативных систем, которые управляют стабильным балансом этих модификаций, и мы подозреваем, что в этом направлении будут достигнуты более значительные успехи. Остаётся выяснить, как эти ферментативные комплексы регулируются и как находятся их физиологически соотв. субстраты и сайты.



Figure 10. Histone-modifying Enzymes Covalent histone modifications are transduced by histone-modifying enzymes (''writers") and removed by antagonizing activities. They are classified into families according to the type of enzymatic action (e.g., acetylation or phosphorylation). Protein domains with specific affinity for a histone tail modification are termed "readers." (HAT) Histone acetyltransferase; (PRMT) protein arginine methyltransferase; (HKMT) histone lysine methyltransferase; (HDAC) histone deacetylase; (PPTase) protein phosphatases; (Ac) acetylation; (P) phosphorylation; (Me) methylation.

Кроме того, остается неясным, как ковалентные механизмы влияют на эпигенетические феномены.
Гистоновые модификации не происходят изолированно, а скорее комбинаторным способом, как предположено для модификационных кассет (т.e., ковалентные модификации в соседних остатках хвоста определенного гистона, напр., H3K9me и H3S10ph или H4Slph, H4R3me и H4K4ac) и trans histone путей (ковалентные модификации между хвостами разных гистонов или нуклеосомами; see Fig. 11). Интересно, что почти все известные гистоновые модификации коррелируют с активирующей или репрессивной функцией, в зависимости от того, какие аминокислотные остатки на N-концах гистонов модифицированы (Zhang and Reinberg 2001; Berger 2002; Fischle et al. 2003b), они могут прогрессивно индуцировать комбинации активных маркеров, пока одновременно противодействуют репрессивные модификации. Однако, неизвестно, как существуют многие характерные комбинации модификаций в различных N-терминальных положениях гистонов для каждой данной нуклеосомы, т.к. большинство исследований проведенно на препаратах гистонов в массе. Кроме того, модификации N-концов в образующих складку доменах глобулярных гистонов, как было недавно показано, затрагивают структуру и сборку хроматина (Cosgrove et al. 2004), влияя, следовательно, на экспрессию генов и репарации поврежденной ДНК (van Attikum and Gasser 2005; Vidanes et al. 2005). Следует также отметить, что некоторые гистон-модифицирующие энзимы затрагивают также не-гистоновые субстраты (Sterner and Berger 2000; Chuikov et al. 2004). Рис. 11 иллюстрирует два примера установленной иерархии гистоновых модификаций, которые, по-видимому, индексируют транскрипцию активного хроматина или, напротив. паттерн гетерохроматиновых доменов.
Эти исследования поставили вопрос, существуют ли "гистоновый код" или даже "эпигенетический код". Хотя эта теоретическая концепция оказалась очень стимулирующей, было установлено, что корректны некоторые из её предсказаний, а вопрос, существует ли в действительности код в основном остается открытым. Сравнение с генетическим кодом кажется уместным, из-за его предсказуемости и почти универсальности. Он используется для большей части four-base "алфавита" в ДНК (т.e., нуклеотиды), формирующего в целом инвариантный и почти универсальный язык. Напротив, сегодняшние доказательства указывают на то, паттерны гистоновых модификаций скорее всего существенно варьируют от организма к организму, особенно между низшими и высшими эукариотами, такими как дрожжи и человек. Т.о., даже если гистоновый код существует, то он скорее всего не универсален. Эта ситуация становится ещё более усложненной, если участь динамическую природу гистоновых модификаций, вариации их в пространстве и во времени. Более того, хроматиновая нить ангажирует неустойчивые наборы ремоделирующих факторов (Vignali et al. 2000; Narlikar et al. 2002; Langst and Becker 2004; Smith and Peterson 2005). Однако, chromatin immunoprecipitation assays (ChIP), использованный на уровне всего генома (ChIP on chip), начинает расшифровывать неслучайные и до некоторой степени предсказуемые паттерны в некоторых геномах (напр., S. pombe, A. thaliana, клетки млекопитающих), такие как строгие корреляции H3K4me3 с регионами активированных промоторов (Strahl et al. 1999; Santos-Rosa et al. 2002; Bernstein et al. 2005) и H3K9 (Hall et al. 2002; Lippman et al. 2004; Martens et al. 2005) и H3K27 (Litt et al. 2001; Ringrose et al. 2004) метилирование с молчащим гетерохроматином. Вообще-то ограничением гистонового кода является то, что одна модификация не транслируется инвариантно в один биологический исход. Однако, модификации комбинаторно или кумулятивно, по-видимому, предопределяют или вносят вклад в биологические функции (Henikoff 2005).

8 Chromatin-remodeling Complexes and Histone Variants


Др. главный механизм, с помощью которого индуцируются переходы в хроматиновой матрице, осуществляется с помощью передачи сигналов по рекрутированию хроматин "ремоделирующих" комплексов, которые используют энергию (ATФ-гидролиз), чтобы изменить хроматин и состав нуклеосом нековалентным способом. Нуклеосомы, особенно если связаны репрессивными ассоциированными с хроматином факторами, часто накладывают внутренне присущее ингибирование на транскрипционную кухню. Следовательно, только некоторые сиквенс-специфические транскрипционные факторы и регуляторы (хотя и не базовой транскрипционной кухни) способны получить доступ к своим сайтам связывания. Эта проблема доступности решается, частично, с помощью белковых комплексов, которые мобилизуют нуклеосомы и/или изменяют структуру нуклеосом.
Ремоделирующие хроматин активности часто работают совместно с активирующими хроматин-модифицирующими энзимами и могут быть в целом быть отнесены к двум семействам: SNF2H или ISWI и Brahma или SWI/SNF семейства. Семейство SNF2H/ISWI мобилизует нуклеосомы вдоль ДНК (Tsukiyama et al. 1995; Varga-Weisz et al. 1997), тогда как Brahma/SWI/SNF временно меняют структуру нуклеосом, экспозируя тем самым ДНК:гистоновые контакты способом. который пока неустановлен (see Chapter 12).
Кроме того, некоторые из ATФ-гидролизующих активностей напоминают "exchanger complexes", которые посвящают себя замещению конвенциональных стержневых гистонов на специализированные гистоновый "варианты". Эта ATP-costing перетасовка может действительно быть способом, с помощью которого существующие модифицированные хвосты гистонов замещаются вариантами гистонов с безупречной репутацией (Schwartz and Ahmad 2005). Напротив, рекрутирование хроматин-ремоделирующих комплексов, таких как SAGA (Spt-Ada-Gcn5-acetyltransferase) также может быть усилено с помощью предсуществующих гистоновых модификаций, чтобы гарантировать способность к транскрипции намеченных промоторов (Grant et al. 1997; Hassan et al. 2002).



Figure 11. Coordinated Modification of Chromatin The transition of a naive chromatin template to active euchromatin (left) or the establishment of repressive heterochromatin (right), involving a series of coordinated chromatin modifications. In the case of transcriptional activation, this is accompanied by the action of nucleosome-remod-eling complexes and the replacement of core histones with histone variants (yellow, namely H3.3).

В дополнение к инициации транскрипции и установлению первичного контакта с промоторной областью, прохождение RNA pol II (или RNA pol I) во время транскрипционной элонгации в дальнейшем стопорится присутствием нуклеосом. Следовательно, необходимы механизмы, чтобы гарантировать завершение синтеза транскриптов (особенно для длинных генов). В частности, серии гистоновых модификаций и docking эффекторов действуют сочетанно с хроматин-ремоделирующими комплексами, такими как SAGA и FACT (for facilitate chromatin transcription) (Orphanides et al. 1998) чтобы позволить прохождение RNA pol II через набор нуклеосом. Эти сочетанные активности д., напр., индуцировать повышенную мобильность нуклеосом, смещение димеров H2A/H2B и способствовать замене стержневых гистонов гистоновыми вариантами. В качестве таковых они представляют собой прекрасный пример тесного взаимодействия между гистоновыми модификациями, ремоделированием хроматина и обменом гистоновыми вариантами, чтобы облегчить транскрипционную инициацию и элонгацию (Sims et al. 2004). Др. ремоделирующие комплексы также были охарактеризованы, такие как Mi-2 (Zhang et al. 1998; Wade et al. 1999) и INO-80 (Shen et al. 2000), которые участвуют в стабилизации репрессивного скорее, нежели активного хроматина.
Композиционные различия нити хроматина, которые возникают благодаря присутствию гистоновых вариантов, вносят вклад в индексирование хромосомных регионов для специализированных функций. Каждый вариант гистона представляет собой замену для определенного стрежневого гистона (Fig. 12), гистоновые варианты часто в минимальной пропорции по сравнению с общей массой гистонов и поэтому более трудны для изучения, чем регулярные гистоны. Растет литература (rev. Henikoff and Ahmad 2005; Sarma and Reinberg 2005) подтверждающая, что варианты гистонов имеют свой собственный паттерн чувствительности к модификациям, скорее всего связанный с небольшим количеством аминокислотных изменений, которые отличают их от остальных членов семейства. С др. стороны, некоторые варианты гистонов имеют характерные N- и С-терминальные домены с уникальной хроматин-регулирующей активностью и отличающимся сродством к связывающим факторам. В качестве примера, транскрипционно активные гены имеют обычно гистон H3, замещенный вариантом H3.3, в связанном с транскрипцией механизме, который не требует репликации ДНК (Ahmad and Henikoff 2002). Замещение стержневого гистона H2A на вариант H2A.Z коррелирует с транскрипционной активностью и может указывать на 5' конец промоторов, лишенных нуклеосом. Однако, H2A.Z может быть также ассоциирован с репрессированным хроматином. CENP-A, специфичный для центромер H3 вариант, является важным для функции центромер и следовательно, для сегрегации хромосом. H2A.X вместе с др. гистоновыми метками, ассоциирует с восприятием поврежденной ДНК

Figure 12. Histone Variants Protein domain structure for the core histones (H3, H4, H2A, H2B), linker histone HI, and variants of histones H3 and H2A. The histone fold domain (HFD) where histone dimerization occurs, and regions of the protein that differ in histone variants (shown in red) are indicated.

и, по-видимому, указывает на на повреждения ДНК для рекрутирования комплексов. репарирующих ДНК. MacroH2A является вариантом гистона, который специфически ассоциирует с неактивной X хромосомой (Xi) у млекопитающих (see Chapter 13).
Важно, в противоположность мнениям учебников, что гистоны синтезируются и откладываются только во время S фазы, синтез и замена многих из гистоновых вариантов на самом деле происходит независимо от репликации ДНК. Следовательно, замещение стержневых гистонов гистоновыми вариантами не ограничивается стадией клеточного цикла (т.e., S фазой), но может возникать в виде непосредственного эффекта в ответ на происходящие механизмы (напр., транскрипционная активность или натяжение кинетохор во время клеточных делений) или на стрессовые сигналы (напр., повреждения ДНК или пищевое голодание). Элегантное биохимическое исследование задокументировало ремоделирование хроматина или обменных комплексов, которые специфичны для замещения определенными вариантами гистонов, такими как H3.3, H2A.Z или H2AJC (Cairns 2005; Henikoff and Ahmad 2005; Sarma and Reinberg 2005). Напр., замещение H3 на H3.3 вариант происходит посредством действия HIRA (histone regulator A) exchanger комплекса (Tagami et al. 2004), a H2A замещается на H2A.Z благодаря активности SWR1 (Swi2/Snf2-related ATPase 1) exchanger комплекса (Mizuguchi et al. 2004). Вместе эти замены делают возможными варианты нуклеосом, чтобы давать особенно активный хроматин. Для некоторых др. гистоновых вариантов механизм нахождения и замены ещё предстоит определить, осуществляется он посредством или АТФ-зависимого histone exchanger комплекса или histone chaperone белка. Сегодня даже предполагается, что обменные комплексы могут существовать, чтобы замещать модифицированные гистоны их немодифицированными аналогами, в качестве механизма стирания наиболее сильных эпигенетических маркеров, которые располагаются на N-концах.

9 DNA Methytation


Метилирование ДНК является одним из старейших эпигенетических механизмов, как известно. коррелирующим с генной репрессией (Razin and Riggs 1980). Он присутствует в разной степени у всех эукариот за исключением дрожжей. Эта модификация состоит из рискованного добавления метильной группы к остатку цитозина матричной ДНК. Она происходит в CpG динуклеотидах у млекопитающих, в то время как известны др. симметричные, несимметричные и non-CpG паттерны метилирования у N. crassa и растений. Распределение метилированной ДНК в геноме обнаруживает концентрацию в некодирующих регионах (напр., центромерном гетерохроматине) и во вкрапленных повторяющихся элементах (транспозонах), но не в CpG островках из активных генов (Bird 1986). Соотв., повышение уровня метилирования ДНК коррелирует с относительным увеличением некодирующего и повторяющегося содержимого ДНК в матричном геноме высших эукариот (see Fig. 15 in Section 11). Экспериментальные доказательства указывают пределы этого, т.к. метилирование ДНК служит в основном в качестве защитного механизма для хозяина, чтобы делать молчащим большую часть генома чужеродного происхождения (т.e., реплицированные мобильные элементы, вирусные последовательности и др. повторяющиеся последовательности).
DNA methyltransferases (DNMTs) являются "эффекторами" метилирования ДНК и катализируют или de novo (т.e., на новом месте) или поддержание метилирования полуметилированных ДНК вследствие репликации ДНК (see Chapter 18). Потеря способности поддерживать метилирование ДНК может приводить к некоторым заболеваниям, таким как IСF (Immunodeficiency, Centromeric instability, and Facial abnormalities) (see Chapters 18 and 23 ). Дерегуляция на уровне метилирования ДНК также является фактором, участвующем в прогрессировании опухолей (Chapter 24).
Каковы сигналы, которые управляют метилированием с помощью DNMTs определенных регионов ДНК? Сегодня известно, что многократно повторяющиеся тандемные повторяющиеся последовательности генома (напр., перицентромерный хроматин) базируются на репрессивных H3K9 метиляционных метках, чтобы управлять метилированием ДНК de novo, как это показано на N. crassa и растениях (see Chapters 6 and 9). Вкрапленные повторы также могут передавать сигналы метилирования ДНК de novo, продемонстрировано в контексте RIP у N. crassa (Tamaru and Selker 2001) и молчания ретротранспозонов в зародышевой линии самцов млекопитающих. Белок, ответственный за такое молчание был идентифицирован как Dnmt3L, он может функционировать путем сканирования генома, чтобы идентифицировать высокие уровни homology-heterology соединений, которые передают сигнал потребности в метилировании ДНК (Bourc'his and Bestor 2004). У растений сигнал для de novo метилирования ДНК предоставляют РНК, посредством уникального механизма, наз. RNA-dependent DNA methylation (RdDM; see Chapter 9). Имеются доказательства того, что ремодельеры хроматина из семейства SWI/SNF каким-то образом необходимы для глобальных паттернов метилирования ДНК, как это продемонстрировано на растениях (Jeddeloh et al. 1999) для DDM1 белка и на млекопитающих с помощью Lshl гомолога (Yan et al. 2003). Наконец, HKMT-PcG белок Ezh2 также может участвовать в управлении метилированием ДНК на определенных промоторах у млекопитающих (Vireetal.2005).
Будучи установленным путь, с помощью которого метилирование ДНК может функционировать заставляя молчать хроматин, ясен не целиком, хотя имеющиеся доказательства подчеркивают транс-регуляцию. Факторы связывания метилированных цитозинов, наз. methyl-CpG-binding domain (MBD) белками, могут быть рассмотрены как эквиваленты при метилировании ДНК факторам связывания (или считывания)мотивов модифицированных гистонов (Fig. 13). Напр., methylcytosine-binding protein (MeCP2) связывает метилированные CpGs и рекрутирует HDACs, чтобы обеспечить репрессивными гистоновыми метками (see Chapter 18). Как известно, метилирование ДНК нарушает также распознавание сайтов транскрипционных регуляторов (напр., CTCF), которые участвуют в геномном импринтинге (see Chapter 19).
Существование метилированной ДНК в импринтированных локусах, которые заставляют молчать или материнский или отцовский аллель у растений и плацентарных млекопитающих, подтверждает, что в ходе эволюции они уникально использовали этот эпигенетический механизм для стабилизации репрессии генов. Интересно, что у сумчатых. наблюдается отсутствие метилирования ДНК в импринтируемых локусах, это указывает на то, что их участие в импринтинге у млекопитающих является относительно недавним эволюционным событием (see Chapters 17 and 19). Напротив, у двукрылых насекомых, таких ка Drosophila, метилирование ДНК в основном утеряно как функциональный эпигенетический механизм (Lyko 2001).
Высоко повторяющиеся области генома млекопитающих, которые обычно метилированы, становятся высоко мутагенными, если не метилированы, до такой степени, что вызывают геномную нестабильность (Chen et al. 1998). В результате возникают хромосомные аномалии, которые являются основными причинами многих заболеваний и прогрессирования раковых опухолей (see Section 15). Это подчеркивает критическую роль метилирования ДНК для целостности генома. Напротив, индивидуальные метилированные цитозиновые

Figure 13. DNA Methylation and Deamination Cytosine nucleotides that are methylated (Me) may be bound by methyl DNA-binding proteins (MBD). Unbound 5-methylcytosine is prone to spontaneous mutation through deamination (reaction shown in the lower panel), resulting in a 5-methyt CpG to TpA transition in the DNA sequence.

основания обладают высокой склонностью мутировать спонтанно. Т.о., со временем C-T переходы осуществляются посредством реакции deamination (Fig. 13), но эта характеристика, как полагают, благоприятна для защиты генома хозяина, т.к. она постоянно деактивирует паразитические последовательности ДНК, такие как транспозоны. В разных контекстах, та же самая химическая реакция активно катализируется с помощью активацией индуцированной deaminase или AID. Экспрессия энзима в B и T клетках вызывает "соматические гипермутации" в immunoglobulin (Ig) локусе. Это является важным механизмом для расширения репертуара рецепторов антигенов и следовательно, усиливает иммунитет у млекопитающих (Petersen-Mahrt 2005; Chapter 21). AID экспрессия, наблюдаемая в раннем развитии млекопитающих, ведет к предположению, что она м. предоставлять альтернативные маршруты для деметилирования ДНК, хотя это сопровождается повышенным риском возникновения точковых мутаций.
Метилирование ДНК и метилирование гистонов являются выдающимися механизмами для эпигенетической регуляции генома. Некодирующие РНК являются важными первичными пусковыми механизмами для индукции молчащего хроматина. Также известно, что РНК молекулы могут быть сильно метилированы по сахарам или нуклеозидному каркасу. более того, метилирование по 3' концу малых некодирующих РНК, как было установлено, стабилизирует эти молекулы (Yu et al. 2005). Интересно, что Dnmt2 была недавно идентифицирована как tRNA methyltransferase (Goll et al 2006). Следовательно, возможно, что подобно DNMTs и HKMTs, RNA methyitransferases может существовать в качестве "записывающего устройства" эпигенетической информации, хотя этому нет прямых доказательств. Однако, метилированные РНК, по-видимому, "ощущаются" определенными Toll-like рецепторами (трансмембранными рецепторами, которые распознают распространенные патогенные молекулярные мотивы), чтобы тем самым обеспечить врожденный иммунитет (Ishii and Akira 2005), это подтверждает данную гипотезу. Возникает интересная возможность, что метилирование РНК может составлять третью форму, базирующейся на метилировании, эпигенетической модуляции.

10 RNAi and RNA-directed Gene Silencing


Знание, что конституитивный гетерохроматин в центромерах и теломерах играет инструктивную роль для целостности генома вносит вклад в сдвиг парадигмы к способу, который учитывает повторяющуюся некодирующую "бросовую" ДНК. Возможно ли, что эти повторяющиеся последовательности служат целям экономии, которые только начинают выявляться? Возможно ли также, что такие последовательности ДНК не полностью "молчащие?"
Эта возможность появилась благодаря серии фундаментальных открытий, которые связывают RNAi с формированием молчащего хроматина (гетерохроматина). RNAi является механизмом защиты хозяина, которая разрушает dsRNA виды на малые молекулы РНК (известные как short interfering RNA или siRNA). Этот процесс в конечном итоге ведет к деградации РНК или использованию малыз РНК для ингибирования трансляции, известного как , known as posttranscriptional silencing (PTGS). Совсем недавно открыт механизм transcriptional gene silencing (TGS), приводящий к образованию гетерохроматина, он был открыт благодаря конвергенции независимых линий исследований хроматина и RNAi кухни. С одной стороны, большая часть того, что было известно о репрессивном метилировании ДНК (у грибов, растений и млекопитающих), о модификациях хроматина (напр., H3K9me3) и ассоциированных с хроматином факторах (HP1) являются характерными для гетерохроматиновых доменов. С др. стороны, исследователи осуществили прогресс в идентификации факторов кухни RNAi (напр., Dicer, Argonaute, RNA-dependent RNA polymerase или RdRP). Наиболее убедительный прогресс в совмещении этих двух кажущихся различными областей в элегантных исследованиях на S. pombe, у которых мутации любого из компонентов кухни RNAi приводили к дефектам в сегрегации хромосом (Hall et al. 2002; Reinhart and Bartel 2002; Volpe et aL 2002). Это было вызвано в результате неспособности стабилизировать центромерный гетерохроматин и подчеркнуло возможную широко распространенную роль RNAi-обеспечиваемых механизмов в продукции доменов молчащего гетерохроматина. Это также подчеркивает важность роли гетерохроматина помимо транскрипционного молчания генов в поддержании целостности генома, а следовательно, и жизнеспособности, на что указывает потребность в центромерном гетерохроматине для процесса расхождения хромосом. Появляются также доказательства, подтверждающие, что siRNAs необходимы для предопределения и др. специализированных регионов функционального гетерохроматина, таких как теломеры.
Транскрипция с обеих нитей ДНК перицентромерных повторов у S. pombe и обнаружение производных после процессинга siRNA предоставляют строгие доказательства, что производные dsRNA являются критическим субстратом для направления RITS комплекса на центромеры для молчания (Fig. 14) (Verdel et al. 2004). Более того, dr4 мутанты (ортолог у S. pombe Suv39h HKMT млекопитающих) неспособны осуществлять процессинг dsRNA в siRNAs, это подкрепляют случаи взаимодействия между кцхней RNAi и сборкой гетерохроматина (Motamedi et al. 2004). Как в точности siRNAs, генерируются с помощью RNAi кухни (т.e., Dicer, Argonaute, RdRP), инициирует ли она сборку гетерохроматина или наводит на соответствующие геномные области, пока неизвестно. Предложена модель, согласно которой сложные взаимодействия между RNAi machinery комплексом RITS и центромерными повторами ведут к циклу самоукрепления образования гетерохроматина с участием Clr4, HDACs, Swi6 (ортолог HP1 млекопитающих) и cohesin, возможно посредством Ago-управляемого отжига (annealing) РНК:РНК гибридов с синтезируемым транскриптом (Fig. 14) (see Chapters 6 and 8).
У Tetrahymena, сходный механизм РНК-обусловленного таргетинга, как установлено, управляет уникальным событием элиминации ДНК, которое происходит в соматическом ядре. В этом случае транскрипция происходит с последовательностей обеих нитей internal eliminated segment (IES) в "молчащем" (micronuclear) геноме зародышевой линии на соотв. стадии sexual пути (Chalker and Yao 2001; Mochizuki et al. 2002). Далее таже самая линейка, что и RNAi-зависимая TGS модель, предложена scan RNA (scnRNA) модель для объяснения того, как последовательности ДНК в родительском макроядре могут эпигенетически контролировать геномные альтерации в новом макроядре, с участием малых РНК (see Chapter 7). Эти удивительные результаты представляют собой первую демонстрацию RNAi-подобного процесса, непосредственно меняющего соматический геном. Открывается интригующая возможность, что межгенные РНК, продуцируемые в V-DJ локусе (Bolland et al. 2004), могут потенциально управлять элиминацией последовательностей ДНК во время V-DJ рекомбинации локуса immunoglobulin heavy chain (IgH) в B клетках и в T-cell receptor (TCR) локусах T клеток.
У растений имеется целый ряд ортологов для многих из компонентов RNAi, дающих в результате разнообразные пути РНК молчания, которые могут действовать с более высокой специфичностью в отношении определенных последовательностей ДНК, хотя имеется некоторое перекрывание

Figure 14. RNA-dfrected Heterochromatin Formation Complementary dsRNA transcripts, produced by transcription of both strands or the folding back of inverted repeat transcripts, result in the generation of siRNAs through the action of Dicer (top). Incorporation of the siRNAs into the RITS complex through binding with the Argonaute protein (Ago) activates the complex for targeting to complementary DNA or nascent RNA. The complex attracts Ck4, which transduces histone H3K9me2. The modification-specific binder, Swi6, binds to these modified histories, facilitating the spread of a repressive chromatin domain. The action of RdRP amplifies the levels of siRNAs by using existing siRNAs as primers, reinforcing the targeting capacity of the RTTS complex to specific regions of DNA.

между факторами. Исследования RNAi-обусловленного TGS у растений выявило новый класс РНК полимераз - RNA polymerase IV (или RNA pol IV) - которые могут транскрибировать ДНК исключительно гетерохроматиновых регионов (Herr et al. 2005; Ponder et al. 2005). Также уникальной для растений является демонстрация того, что RNAi пути непосредственно влияют на метилирование ДНК (Chan et aL 2004) (Chapter 9).
RNAi-подобные эффекты хроматина были также выявлены у Drosophila и млекопитающих, Напр., обработка RNase A ставших проницаемыми клеток млекопитающих быстро удаляет гетерохроматиновую метку H3K9me3, указывая на то, что РНК половинка может быть структурным компонентом перицентромерного гетерохроматина (Maison et al. 2002). Устранение факторов процессинга siRNA у позвоночных нарушает метилирование H3K9 и связывание HP1 с перицентромерным гетерохроматином (Fukagawa et aL 2004). Интересно, что эмбриональные стволовые (ES) клетки всё ещё пролиферируют, но не способны дифференцироваться у dicer-нулевых мутантов (Kanellopoulou et aL 2005), кепзваяч тем самым на сегодня непонятное соединение между RNAi кухней, некодирующими РНК и развитием млекопитающих. У Drosophila, молчание тандемных наборов из mini-white гена, субъекта для PEV , также, по-видимому, зависит от RNAi кухни (Pal-Bhadra et aL 2004).
В целом эти исследования показывают критическую и возможно первичную роль некодирующих РНК в запуске эпигенетических переходов и наследуемом поддержании специфических состояний хроматиновой матрицы. Фактически эти некодирующие РНК представляют ответ, как разнообразные повторяющиеся последовательности у разных организмов достигают гетерохроматинизации посредством RNA-targeted механизма. В попытке идентифицировать больше мишеней для RNAi секвенирование малых РНК выявило, что они в основном транскрибируются с эндогенных транспозонов и др. повторяющихся последовательностей у растений, Drosophila и млекопитающих, среди др. организмов (Almeida and Allshire 2005; Bernstein and Allis 2005). Итак, эти результаты показали, что RNAi участвует, частично, в поддержании геномной стабильности путем замалчивания мобильных ДНК элементов и вирусов и что существует законсервированный механизм у большинства видов эукариот. Сегодня кажется, что не только это РНК молчание репрессирует проникающие последовательности, но также, что этот основной механизм был использован клетками для гетерохроматинизации центромер, тем самым гарантируя правильное расхождение хромосом и целостность генома.
Все эти приведенные выше примеры показывают поразительную изменчивость центральной догмы контроля генов, что начинает проявляться следующим образом:ДНК → некодирующая РНК → хроматин → функция гена. Идея, что некодирующие РНК могут активно участвовать в RNAi-подобных механизмах, которые также затрагивают локус-специфические домены для ремоделирования хроматина и молчания генов,

From Unicellular to Multicellular Systems


5,000-6,000 генов. содержащихся в геномах почкующихся и делящихся дрожжей достаточны, чтобы регулировать основные метаболические процессы и деления клеток. Не имеется, однако, потребности в клеточной дифференцировке, т.к. одноклеточные организмы являются в основном клональными и как таковые являются без конца повторяющимися "бессмертными" единицами. Напротив, млекопитающие кодируют около 25,000 генов, необходимых для примерно 200 различных типов клеток. Понимание, как создавалась и координировалась многоклеточная сложность тз одной и той же генетической матрицы, является ключевым вопросом эпигенетических исследований.
Сравнение размеров геномов у дрожжей, мух, растений и млекопитающих показало, что размер генома значительно увеличился с увеличением сложности соотв. организмов. Существуют почти 300-кратные различия между размерами геномов дрожжей и млекопитающих и лишь незначительное в 4-5-увеличение общего количества генов (Fig. 15). Однако, соотношение кодирующих к некодирующим и повторяющимся последовательностям показывает сложность генома: в основном "открытые" геномы одноклеточных грибов имеют относительно мало некодирующих ДНК по сравнению с высоко гетерохроматиновыми геномами многоклеточных организмов. В частности, млекопитающие накопили значительные количества повторяющихся элементов и некодирующих регионов, которые объясняют большую часть последовательностей ДНК (52% некодирующих и 44% повторяющихся ДНК). Лишь 4% генома млекопитающих кодирует белковые функции (включая интронные последовательности). Такая массивная экспансия повторяющихся и некодирующих последовательностей у многоклеточных организмов скорее всего обусловлена включением инвазивных элементов, таки х как ДНК транспозоны, ретро-транспозоны и др. повторяющиеся элементы. Хотя это представляет собой бремя для программ скоординированной экспрессии генов, они также делают возможной эволюцию и пластичность генома и до определенной степени стохастичность генной регуляции. Экспансия повторяющихся элементов инфильтрирует даже транскрипционные единицы генома млекопитающих. Это ведет к транскрипции едниц, которые часто значительно крупнее (30-200 kb), обычно содержат множественные промоторы и ДНК повторы внутри нетранслируемых интронов. Напротив, у растений со сходными крупными геномами, обычно имеются меньшие транскрипционные единицы с маленькими интронами, т.к. они обладают защитными механизмами, гарантирующими , инсерции транспозонов в транскрипционные единицы не будут допущены.
Существуют важные различия между организмами, которые проявляются в типах эпигенетических путей, используемых несмотря на высокие степени функциональной консервации для многих механизмов среди видов. Различия, как полагают, частично связаны с размерами генома. Громадная экспансия генома за счет некодирующих и повторяющихся ДНК у высших эукариот нуждается в более обширных механизмах эпигенетического молчания. Это коррелирует с тем фактом, что млекопитающие и растения используют на полную мощь механизмы репрессивного метилирования гистоновых лизинов, метилирования ДНК и RNAi молчания. Др. затруднением, сопровождающим появление многоклеточности является то, как скоординированы и поддерживаются многочисленные типы клеток (клеточные качественные особенности). Это является деликатным балансом с вовлечением Polycomb (PcG) и Trithorax (trxG) групп белковых комплексов для регуляции генома. Белки PcG, в частности, коррелируют с появлением многоклеточности (see Section 12).
Клетки внутри многоклеточных организмов могут быть функционально разделены на два больших компартмента: зародышевые клетки (тотипотентные и необходимые для передачи генетической информации следующей генерации) и соматические клетки (дифференцированные "силовые станции" организма). Возникают важные вопросы, как компартмент зародышевых клеток

Figure 15. Pie Charts of Organismal Genome Organization Genome sizes are indicated for the major model organisms used in epigenetic research at the top of each pie chart. The increase in genome size correlates with the vast expansion of noncoding (i.e., intronic, intergenic, and interspersed repeat sequences) and repeat DNA (e.g., satellite, LINE, SINE DNA) sequences in more complex multicellular organisms. This expansion is accompanied by an increase in the number of epigenetic mechanisms (particularly repressive) that regulate the genome. Expansion of the genome also correlates with an increase in size and complexity of transcription units, with the exception of plants; they have evolved mechanisms that are intolerant to insertions or duplications within the transcription unit. P = Promoter DNA element.

поддерживает титипотентность своего эпигенома и каковы механизмы участвующие в стирании, установлении и поддержании клеточных судеб (клеточной памяти). Т.к. одна зародышевая клетка может давать др. зародышевую клетку, она безусловно обладает бесконечным пролиферативным потенциалом, как это делают одноклеточные "бессмертные" организмы. Однако, чтобы выполнить свою роль зародышевые клетки являются по большей части "покоящимися" и нечувствительными к внешним стимулам, так что целостность их эпиогенома может быть защищена. В самом деле,ооциты млекопитающих могут оставаться в покоящемся состоянии более 40 лет. Сходным образом, стволовые клетки взрослых (мультипотентные) являются в основном дремлющими клетками, пролиферирующими (и самообновляющимися) только, когда активируются митогенными стимулами, чтобы вступить в ограниченное число клеточных делений. Т.о., создание эпигенома сталкивается со многими внутренними (напр., транскрипция, репликация ДНК, сегрегация хромосом) и внешними (напр., цитокины. гормоны, повреждения ДНК или общие стрессовые реакции) сигналами, особенно. если соматическая дифференцировка форсирует клетки покидать защитные для зародышевых клеток и стволовых клеток условия.

12 Polycomb and Trithorax


Среди некоторых из основных эффекторов, которые могут трансдуцировать сигналы на хроматиновую матрицу и участвовать в поддержании качественных особенностей клеток (т.e., обеспечивают клеточную память) находятся члены групп генов PcG и trxG (Ringrose and Paro 2004). Эти гены были открыты у Drosophila благодаря положительной их роли в онтогенетической регуляции кластеров Hox генов и регуляции гомеозисных генов. PcG и trxG , как было установлено, являются ключевыми регуляторами пролиферации клеток и клеточных качественных особенностей у многоклеточных эукариот. Кроме того, эти группы генов участвуют в некоторых сигнальных каскадах, которые отвечают на митогены и морфогены; регулируют идентичность и пролиферацию стволовых клеток, vernalization у растений, гомеозисные трансформации и трансдифференцировку, клональную детерминацию во время B- и T-клеточной дифференцировки и во многих др. аспектах развития многоклеточных (see Chapters 11 and 12). Коротко рассмотрим что известно о том, как PcG и trxG семейства генов превращают онтогенетические сигналы в "эпигенетическую память" посредством структуры хроматина.
Группы белков PcG и trxG функционируют по большей части антагонистически: белки семейства PcG устанавливают состояние молчащего хроматина, а белки семейства trxG в общем распространяют генную активность. gene activity. Молекулярное распознавание гена Pc, как известно, стабилизирует паттерны генной репрессии на несколько клеточных поколений, это предоставляет первые доказательства молекулярного механизма клеточной или эпигенетической памяти. Также PC представляет собой пример chromodomain-содержащего белка с высокой степенью сходства с chromodomain ассоциированного с гетерохроматином белка HP1 (Paro and Hogness 1991). Как упоминалось выше, chromodomains являются хорошо известными специфическими модулями связывания гистонового methyl-lysine (illustrated in Fig. 10).
Приблизительно 20 PcG генов и, по крайней мере, 15 самостоятельных trxG генов было идентифицировано у Drosophila. Функциональный анализ показал, что эти группы генов составляют спектр разнообразных белков, сильно законсервированными у эукариот. Гены PcG кодируют продукты, которые включают ДНК-связывающие белки (напр., YY1), гистон-модифицирующие энзимы (напр., Ezh2) и др. репрессивные ассоциированные с хроматином факторы (напр., GAGA или Zeste), ATФ- зависимые хроматин-ремоделирующие энзимы (напр., Brahma) и HKMTs, такие как Ashl и Trx (или их гомологи у млекопитающих MLL, Set1 и MLL семейство). В большинстве примеров семейства белков trxG и PcG действуют как компоненты разнообразных комплексов, чтобы установить стабильную структуру хроматина, которая облегчает экспрессию или молчание онтогенетически регулируемых генов (see Chapters 11 and 12).
Несмотря на недавние успехи механизм, с помощью которого PcG- или trxG-содержащие комплексы доставляются на онтогенетически регулируемые регионы хроматина, понятен плохо. У Drosophila, наследуемая репрессия генов нуждается в рекрутировании элементов PcG белковых комплексов на ДНК, т.наз. polycomb response elements (PREs). Эквивалентные последовательности у млекопитающих пока неуловимы. Неясно, как PcG белковые комплексы вызывают дальнодействующее молчание PRE-зависимым способом, т.к. PREs обычно расположены на расстоянии в kilobases от места старта транскрипции генов мишеней. Предполагается, что отталкивание или привлечение комплексов PcG может осуществляться за счет изменений в транскрипционной активности или за счет различий в продуктивном или непродуктивном процессинге мРНК (Pirrotta 1998; Dellino et al. 2004; Schmitt et al. 2005). Современные модели подтверждают PcG связывание посредством взаимодействия с ДНК-связывающими белками и благодаря сродству chromodomain внутри PC белка с H3K27me3-модифицированныим гистонами (Cao et al. 2002). Однако, PcG комплексы могут также ассоциировать in vitro с нуклеосомами, которые лишены гистоновых хвостов (Francis et al. 2004), и более того, PRE элементы снижают плотность нуклеосом (Schwartz et al. 2005). Наиболее логичным объяснением для некоторых из этих несопоставимых наблюдений является то, что PcG связывание in vivo д. первоначально нуждаться во взаимодействии с ДНК-связывающими факторами, которое затем стабилизируется за счет ассоциации с нуклеосомами и модифицированными H3K27me3 в соседней области хроматина. Необходимы дальнейшие исследования, чтобы увязать имеющиеся доказательства того, как комплексы PcG нацеливаются на регионы хроматина и как они обеспечивают репрессию. Это является, скорее всего, организм-зависимым, т.к. существует значительная гетерогенность в комплексах PcG (see Chapter 11). Белки группы Trithorax поддерживают в целом активное состояние экспрессии генов для генов мишеней и преодолевают (или предупреждают) PcG-обусловленное молчание. Этот переход ещё менее понятен, но недавние доказательства указывают на то, что механизм. базирующийся на РНК, может являться пусковым устройством для рекрутирования Ashl на промоторы мишени (Sanchez-Eisner et al. 2006). Ряд переходных и стабильных изменений в структуре хроматина, как полагают, гарантируется и вообще облегчается с помощью межгенной транскрипции, которая может устанавливаться на доменах открытого хроматина и обеспечивать активное замещение гистонов. Задокументированные изменения хроматина касаются включения "активных" меток метилирования гистоновых лизинов с помощью trxG HKMTs, таких как Trx и Ashl и считывания этих меток (напр., WDR5 распознавание H3K4me; Wysocka et al. 2005). Действие trxG ATФ-зависимых хроматин-ремоделирующих факторов, таких как Brahma, также необходимо, хотя, как эти механизмы взаимодействуют, ещё до конца не установлено (детальнее см. Chapter 12).
Многие PcG и trxG белки кооперируют, чтобы обеспечивать тонко контролируемый уровень репрессированного гетерохроматина в противоположность активному эухроматину в нормальных клетках. В соматических интерфазных ядрах млекопитающих морфология ядер указывает, что конституитивные домены перицентромерного гетерохроматина группируются в 15-20 фокусов (see Fig. 16). Дерегуляция клеточных судеб и контроля пролиферации, которые ведут к онтогенетическим аномалиям и раку, часто обнаруживают аномальные морфологии ядер. Напр., ядерная организация в клетках PML-leukemia (родственные mixed lymphocyte leukemia [MLL]) обнаруживают отсутствие перицентромерных фокусов (Di Croce 2005). Напротив, старые (непролиферирующие) клетки имеют морфологию с крупными кластерами эктопического гетерохроматина (Narita et al. 2003; Scaffidi et al. 2005). Т.о., ядерная морфология, по-видимому, является хорошим маркером для отличия нормального и аберрантного клеточных состояний, указывая тем самым. что архитектура ядра также может играть регуляторную роль в поддержании специализированных доменов хроматина.
Изучение уровней модификаций гистонов является др. показателем нормальности или аномальности клеток. Многие из этих изменений приписывают дерегуляции PcG (напр., Ezh2) или trxG (напр., MLL) HKMTs, вносящей вклад в прогрессирование или даже в метастатический потенциал опухолей (see Section 15). В самом деле, увеличение общих уровней любого из упомянутых выше белков ассоциирует с повышением риска рака простаты, рака груди, множественных миэлом или лейкемии (Lund and van Lohuizen 2004; Valk-Lingbeek et al. 2004). В др. случаях неопластической трансформации проявляется снижение репрессивных гистоновых меток и увеличение общего состояния ацетилирования (Seligson et al. 2005), вызывающего повышение уровней транскрипции генов и геномной нестабильности. Ясно, что изменения в глобальном контроле хроматина, возможно посредством пертурбаций гистон-модифицирующих энзимов, затрагивает функциональную способность генома и нарушает собственно профили генной экспрессии в нормальных клетках.
В случае клеточного старения увеличение репрессивных гистоновых меток также является показателем дисфункции клеток. Это вместе с пониженным показателем ацетилирования гистонов, может усилить и даже повысить уровни молчащего хроматина, блокировать клеточную пластичность и перевести клетки в антипролиферативное состояние (Scaffidi et al. 2005). Это в основном возраст-зависимый эффект, хотя болезненное состояние, progeria, может способствовать преждевременному старению. Напротив, когда репрессивные перицентромерные метильные метки снижаются у мутантов, лишенных трансдуцирующего энзима (Suv39h), то клетки обнаруживают повышенные доли иммортализации, более не стареют и обнаруживают более высокие степени геномной нестабильности (Braig et al. 2005). Эти примеры иллюстрируют, что дерегуляция хроматина, демонстрируемая по уровням характерных гистоновых меток, часто трансдуцируется с помощью PcG и trxG энзимов, a ядерная морфология является важным индикатором прогрессирования болезни.

13 X Inactivation and Facultative Heterochromatin


PcG-обусловленное молчание генов и инактивация Х хромосом являются первостепенными примерами онтогенетически регулируемых переходов между активным и неактивным состоянием хроматина (see Fig. 17), часто обозначаемых как факультативный гетерохроматин. Он находится в контрасте с конституитивным гетерохроматином (напр., в перицентромерных доменах), который может быть default индуцирован в некодирующих или высоко повторяющихся регионах. Факультативный гетерохроматин появляется в кодирующих регионах генома, где генное молчание зависит от, а иногда обратимо в зависимости от онтогенетических решений, специфицирующих различные клеточные судьбы.
Одним из хорошо изученных примеров образования факультативного гетерохроматина является инактивация одной из двух Х хромосом у самок млекопитающих, чтобы компенсировать дозу экспрессии Х-сцепленных генов с самцами. которые обладают только одной Х хромосомой (and и гетероморфной Y) (Chapter 17). При этом, молчание генов по всей хромосоме

Figure 16.Cellular Identity by PcG and trxG Proteins Two cell compartments are established during embryogenesis, distinguished by their differentiation potency: They are germ cells (totipotent) and somatic cells (including stem cells) with restricted differentiation potentials. The plasticity of a germ or stem cell's genome expression potential is reflected in reduced levels of repressive histone marks which are no longer visible at pericentromeric foci. Normal proliferating cells typically have a nuclear morphology showing 15-20 het-erochromatic foci. Polycomb- and Trithorax-containing complexes operate in specifying the epigenetic and, hence, cellular identity of different lineages. They also function in response to external "stress" stimuli, promoting cellular proliferation and appropriate gene expression. Loss of genome plasticity and proliferation potential occurs in senescent (aging) cells, reflected by abnormally large heterochromatic foci and an overall increased level of repressive histone marks. Highly proliferating tumor cells, however, exhibit changes in the balance of repressive and activating histone marks through the deregulation of PcG and trxG histone-modifying enzymes. This is accompanied by perturbed nuclear morphology.

inactive X (Xi) индуцирует высокую степень Xi компакции, которая обнаруживается в виде телец Bar, расположенных на периферии ядра клеток самок млекопитающих. Как два аллеля из Х хромосом подсчитываются и как одна определенная Х хромосома выбирается для инактивации сегодня становится предметом эпигенетических исследований.
Инактивация X использует крупную (~17 kb) некодирующую РНК, Xisty, которая, по-видимому, действует как первичный триггер ремоделирования хроматина Xi. Хотя существует потенциал образования dsRNA между Xist и антисмысловым транскриптом Tsix (экспрессируемым только перед началом инактивации Х), но нет неопровержимых доказательств для RNAi-зависимых механизмов, участвующих в инициации инактивации Х. X-inactivation center (XIC) и возможно ДНК "entry" или "docking" сайты (предположительно являющиеся специализированными повторяющимися ДНК элементами, которыми обогащена одна из Х хромосом) играют роль для Xist РНК, чтобы ассоциировать и функционировать в качестве каркасной молекулы, декорирующей Xi в цис-положении. Xist способствует рекрутированию и действию как PRC1 (polycomb respressive complex), так и PRC2 комплексов, участвующих в установлении стабильной неактивной Х хромосомы. Компоненты PRC2 включают, напр., HKMT хроматин-модифицирующий энзим, EZH2, который катализирует H3K27me3. Свяывание PRC1 комплекса может обеспечиваться как H3K27me3, так и независимым от гистоновых модификаций способом, тогда как др. компоненты комплекса, такие как Ring1 белки, ubiquitinate H2A. Такой же является и гетерогенность PcG комплексов, разные компоненты которых могут действовать независимо от др. компонентов комплекса. Модификации хроматина, связывание PcG комплекса, последующее включение варианта гистона macroH2A вдоль Xi и сильное метилирование ДНК, всё это вносит вклад в генерацию факультативных гетерохроматиновых структур вдоль всей Xi хромосомы. После образования стабильной гетерохроматиновой структуры Xist РНК становится не нужной для её поддержания (Avner and Heard 2001; Heard 2005). Сходной формой моноаллельного молчания является геномный импринтинг, который также использует некодирующие или антисмысловые РНК, чтобы заставить молчать одну из аллельных копий специфичным для родительского происхождения способом (Chapter 19). Пока неясно, могут ли и как у Dicer-мутантных мышей ES клетки подвергаться процессу Х инактивации или геномного импринтинга.
Генеральная парадигма дозовой компенсации, классический эпигенетически контролируемый механизм, была также исследована и на др. модельных организмах, в частности C. elegans (Meyer et al. 2004; Chapter 15) и Drosophila (Gilfillan et al. 2004; Chapter 16). Пока неясно, встречается ли дозовая компенсация у птиц, несмотря на тот факт, что они являются гетерогаметными организмами. У Drosophila, дозовая компенсация между полами осуществляется не за счет инактивации Х у самок, а за счет двухкратного увеличения активности одиночной Х хромосомы у самцов. Интересно, чо две некодирующие РНК,

Figure 17. RNA Directed Induction of Repressed Chromatin States Different forms of silent chromatin have different primary signals, but many are likely to be RNA transcript-related (from aberrant transcripts, to Xist RNA, to dsRNAs), depending on the nature of the underlying DNA sequence. This triggers the establishment of a collection of chromatin changes, including a combination of histone modifications (H3K9, H3K27, and H4K20 methylation), the binding of repressive proteins or complexes (e.g., PC or HP1) to the chromatin, DNA methylation, and the presence of histone variants (e.g., macroH2A on the inactive X chromosome). Facultative or constitutive heterochromatin shows visible clustering in the nucleus. Euchromatic repression cannot be determined by nuclear morphology patterns.

roXl и roX2y известны в качестве существенных компонентов и их экспрессия специфична для самцов. Хотя сходные механистические детали, по-видимому, существуют между мухами и млекопитающими, однако ясно, что активирующее хроматин ремоделирование и гистоновые модификации, скорее всего MOF-зависимое ацетилирование H4K16 на Х хромосоме самцов играет ключевую роль в дозовой компенсации у Drosophila. В точности, как гистон-модифицирующие активности, такие как MOF histone acetyltransferase, поставляются на Х хромосому самцов, остается задачей будущих исследований. Более того, ATA зависимые хроматин-ремоделирующие активности, такие как nucleosome-remodeling factor (NURF), как полагают, противодействуют активности dosage compensation complex (DCC).
Итак, данный раздел и разделы 10 и 11 описывают механизмы РНК-управляемых модификаций хроматина, т.к. они касаются конституитивного гетерохроматина, Xi хромосомы и возможно PcG-обусловленного молчания генов. На основании интригующих параллелей можно постулировать, что РНК половинка(и) или неспаренная ДНК д. представлять привлекательный пример пускового устройства для стабилизации PcG комплексов на PREs или поставленной под угрозу функции промотора, где они могут "ощущать" качество транскрипционного процессинга. Аберрантная или остановившаяся элонгация и/ или ошибки сплайсинга д. побуждать к взаимодействию между PRE-bound PcG и промотором, приводя в результате к его выключению. Т.о., инициация молчания PcG д. индуцироваться с помощью перехода от продуктивной к непродуктивной транскрипции. Степень, с которой trxG комплексы могут использовать контроль качества РНК и/или процессинга первичных транскриптов РНК, как части поддерживающего транскрипционного "ВКЛ" состояния, только начинает раскрываться (Sanchez-Eisner et al. 2006).

14 Reprogramming of Cell Fates


Вопрос, как клеточные судьбы могут быть изменены или обращены, давно интересует исследователей. Зародышевые клетки и ранние эмбриональные клетки отличаются от др. клеточных компартментов как коренные ("ultimate") стволовые клетки по своей прирожденной тотипотентности. Хотя спецификация клеточных судеб у млекопитающих делает возможным образование около 200 различных типов клеток, имеются в принципе два основных дифференцирующих перехода: от стволовых (плюрипотентных) клеток к полностью дифференцированным клеткам и между покоящимися (молчащими или G0) и пролиферирующими клетками. Они представляют собой крайние конечные точки среди множества промежуточных в соответствии с совокупностью из различных заготовок (makeups) эпигенома в развитии млекопитающих. Во время эмбриогенеза выявляется динамическое увеличение эпигенетических модификаций, выявляемых при переходе от оплодотворенного ооцита к стадии бластоцист а и затем к имплантации, гаструляции, развитию органов и росту плода. Большинство из этих модификаций или отпечатков могут быть стерты путем переноса дифференцированного клеточного ядра в цитоплазму энуклеированного ооцита. Однако, некоторые маркеры могут сохраняться и тем самым ограничивать нормальное развитие клонируемых эмбрионов, а немногие могут даже наследоваться как germ-line modifications (g-mod) (see Fig. 18), которые у млекопитающих скорее всего включают метилирование ДНК.
Регенерация печени и репарации мышечных клеток являются исключениями из тканей млекопитающих, которые могут регенерировать в ответ на повреждения или ранения, хотя большинство др. тканей неспособны репрограммироваться. У др. организмов, таких как растения и Axolotl, определенные соматические клетки могут действительно репрограммировать свой эпигеном и повторно вступать в клеточный цикл, чтобы регенерировать потерянную или поврежденную ткань (Tanaka 2003). В целом, однако, репрограммирование соматических клеток невозможно, за исключением того, когда они искусственно перестраиваются, чтобы рекапитулировать раннее развитие после ядерного переноса (NT) в энуклеированные ооциты. Это впервые было продемонстрировано на клонируемых лягушках (Xenopus), и сравнительно недавно получением овцы Dolly, первого клонированного млекопитающего (Campbell et al. 1996; see Chapter 22).
Выявлены три основных препятствия к эффективному соматическому репрограммированию у млекопитающих. Во-первых, определенные соматические эпигенетические маркеры (напр., репрессивные H3K9me3) стабильно передаются посредством делений соматических клеток и сопротивляются репрограммированию в ооците. Во-вторых, ядро соматической клетки неспособно воспроизводить асимметрию репрограммирования, которая происходит у оплодотворенного эмбриона как следствие дифференциальных эпигенетических маркеров, наследуемых с помощью гаплоидных геномов самца и самки (see Mayer et al. 2000; van der Heijden et al. 2005; Chapter 20). В-третьих, передача импринтированных локусов, которые особенно важны для плодного и плацентарного развития, сохраняются не полностью после NT (Morgan et al. 2005). Большинство клонируемых эмбрионов абортируют, указывая тем самым, что нарушенные эпигенетические импринты представляют собой узкое горлышко для нормального развития и могут быть причиной низкой эффективности assisted reproductive technologies (AST) и снижают жизненную силу (vigor) клонируемых животных.
Использование эмбриональных стволовых клеток по сравнению с соматическими обнаруживает более значительный потенциал репрограммирования. Демонстрация, что молчащие клетки (частая характеристика стволовых клеток) характеризуются глобальным снижением H3K9me3 и H4K20me3 состояний, это может быть фактором, указывающим на повышенную пластичность эпигенома (Baxter et al. 2004). Это также согласуется с фактом, что "бессмертные" одноклеточные организмы (напр., дрожжи) в основном с отрытым и активнм геномом лишены некоторых репрессивных эпигенетических механизмов.

Figure 18. Reprogramming by Nuclear Transfer During the lifetime of an individual, epigenetic modifications (mod) are acquired in different cell lineages (left). Nuclear transfer (NT) of a somatic cell reverses the process of terminal differentiation, eradicating the majority of epigenetic marks (mod); however, some modification that would also be present in the germ line (g-mod) cannot be removed. During neoplastic transformation (from a normal to tumor cell), caused by a series of genetic mutations (red stars), epige-netic lesions accumulate. The epigenetic lesions (mod), but not the mutations, can be erased through reprogramming upon NT This approach evaluates the interplay between genetic and epigenetic contributions to tumorigenesis. (Figure adapted from R. Jaenisch.)

Др. признаком нормального эпигенетического репрограммирования у млекопитающих после оплодотворения является его четкая асимметрия. Это можно в первую очередь приписать разным программам эпигенетической спецификации зародышевых клеток самцов и самок (Chapters 19 and 20). Геном спермиев в основном строится из protamines, хотя имеются остаточный, хотя и достоверный уровень CENP-A (варианта гистона H3) и др. предположительно эпигенетических импринтов (Kimmins and Sas-sone-Corsi 2005), в то время как ооцит строит регулярный содержащий нуклеосомы хроматин. После оплодотворения гаплоидные геномы спермия и яйцеклетки подвергаются циклу репрограммирования, с участием деметилирования ДНК и замены гистоновых вариантов. Модификации могут или усиливать или балансировать эпигенетические отличия двух родительских геномов перед слиянием ядер в первом клеточном цикле. Во время дифференцировки эмбриональных (т.e., inner cell mass [ICM) и внеэмбриональных (т.e., trophectoderm [TE] и плаценты) тканей устанавливаются различные профили метилирования ДНК и гистоновых модификаций между клонами (Morgan et al. 2005). Соматическое клонирование не могут в точности воспроизвести эти паттерны репрограммирования, обнаруживая быструю, но немее экстенсивное деметиирование в первом клеточном цикле и нарушения метилирования ДНК и метилирование лизинов гистонов между ICM и TE клетками.
Близко родственные процессы при соматическом репрограммировании предопределяют судьбу импринтированных генетических локусов. При нормальном эмбриональном развитии корректная аллельная экспрессия импринтируемых локусов необходима (Chapter 19). Это было продемонстрировано с помощью плодотворных экспериментов, которые генерировали однородительских эмбрионов (Barton et al. 1984; McGrath and Solter 1984; Surani et al. 1984). Андрогенетические эмбрионы (оба генома отцовского происхождения) обнаруживают задержку эмбрионального развития, но гиперпролиферацию внеэмбриональных тканей (напр., плаценты). У гино- или партеногенетических эмбрионов (оба генома женского происхождения), плацента оказывается недоразвитой. Специфический для родителей инпринтинг д. устанавливаться в зародышевых клетках вследствие стирания предсуществующих меток (Chapter 20). Считается, что это происходит примерно в 100 или более импринтированных генах, в основном участвующих в системах снабжения ресурсами эмбрионального и плацентарного развития (напр., Igf2 фактор роста).Интересно, что имеются доказательства, что импринтинг может быть нарушен во время культивирования in vitro эмбрионов, полученных с помощью ART или переноса ядер (Maher 2005).

15 Cancer


Имеется деликатный баланс между самообновлением и дифференцировкой. Неопластическая трансформация (tumorigenesis) рассматривается как процесс, при котором клетки подвергаются изменениям, приводящим к неконтролируемой клеточной пролиферации, потере checkpoint контроля, позволяющим избегать накопления хромосомных аберраций и геномных анеуплоидий, и неправильно контролируемой дифференцировке (Lengauer et al. 1998). Общепринято, что трансформация обусловливается, по-видимому, крайней мере, одним генетическим повреждением, таким как точковая мутация, делеция или транслокация, нарушающими или ген супрессор опухолей или онкоген (Hanahan and Weinberg 2000). Гены супрессии опухолей оказываются молчащими в опухолевых клетках. Онкогены активируются посредством доминантных мутаций или избыточной эксрессии нормальных генов (proto-oncogene). Важно, что накопление аберрантных эпигенетических модификаций также связано с опухолевыми клетками (see Chapter 24). Эпигенетические изменения вызывают изменения паттернов метилирования ДНК, модификации гистонов и структуры хроматина (see Fig. 19). Т.о., неопластическая трансформация является ложным многоступенчатым процессом, связанным со случайной активацие1 онкогенов и/или замалчивания генов, супрессирующих опухоли, считается, что посредством генетических или эпигенетических событий, и это обозначается как "Knudson two-hit" теория (Feinberg 2004; Feinberg and Tyko 2004). Чтобы проиллюстрировать молчание гена retinoblastoma (Rb), опухолевого супрессора, вызывающего потерю checkpoint контроля, что не только создает пролиферативные преимущества, но и также способствует "второму удару" путем нарушения нижестоящих функций, связанных со структурой хроматина, которая поддерживает геномную целостность (Gonzalo and Blasco 2005). Несоответствующая активация онкогенного продукта, такого как гена myc может оказывать сходный эффект (Knoepfler et al 2006).
Возникает вопрос, до какой степени аберрантные эпигенетические изменения вносят вклад в показатели и вообще в в поведение опухолей? Это исследовали с помощью NT экспериментов, используя клетки меланомы nudeus в качестве донорских (Hochedlinger et al. 2004). Любое генетическое повреждение донорской клетки остается; однако, NT стирает эпигенетические надстройки. Показатель опухолей у клонируемых мышиных эмбрионов показал, что спектр опухолей, которые возникают de novo варьирует существенно, что согласуется с разным вкладом эпигенетических модификаций в разные ткани, которые запускают неопластический рост.
Гипометилирование ДНК (в противоположность гиперметилированию) может происходить в дискретных локусах или на широких регионах хромосом. Гипометилирование ДНК было. фактически, первым типом эпигенетического перехода, ассоциированного с раком (Feinberg and Vogelstein 1983). Это в свою очередь ведет к широким фенотипическим проявлением раковых клеток. На уроне индивидуальных генов гипометилирование ДНК может быть неопластическим из-за активации прото-онкогенов, депрессии генов, которые вызывают аберрантные клеточные функции, или из-за биаллельной экспрессии импринтируемых генов (называется также потерей импринтинга loss of imprinting или LOI) (see Chapters 23 and 24). На более глобальной геномной шкале широкое гипометилирование ДНК, особенно в областях конституитивного гетерохроматина, предрасполагает клетки к хромосомным транслокациям и анеуплоидиям, которые вносят вклад в прогрессирование опухолей. Этот эффект воспроизводится у мутантов Dnmtl (Chen et al. 1998). Геномная нестабильность, которая возникает, когда имеет место гипометилирование ДНК, скорее всего обусловлена мутагенным эффектом реактивации транспозонов. С привлечением внимания к существенной роли, которую играют гистоновые модификации для поддержания гетерохроматина в центромерах и теломерах, появились доказательства, что эти метки теряются, геномная нестабильность кроме того обеспечивает вклад в прогрессирование раковых опухолей (Gonzalo and Btasco 2005).
Напротив, гиперметилирование ДНК концентрируется в промоторных регионах CpG островков в большинстве раковых опухолей. Молчание генов, супрессирующих опухоли, в результате подобного гиперметилирования ДНК является критическим для прогрессирования раковых опухолей. Недавние исследования показали, что имеется серьезное взаимодействие между модификациями хроматина и метилированием ДНК, демонстрирующее, что более одного эпигенетического механизма участвует в молчании генов опухолевых супрессоров. В качестве иллюстрации известно, что гены супрессоров опухолей, pl6 и hMLHl, принуждаются к молчанию как метилированием ДНК, так и репрессивным метилированием гистоновых лизинов при раке (McGar-veyetal. 2006).
Дерегуляция модификаторов хроматина участвует во многих формах рака. Определенные гистон-модифицирующие энзимы становятся онкогенными, такие как PcG белок EZH2 и trxG белок MLL, и осуществляют свои эффекты посредством пертурбации клеточных эпигенетических характерных особенностей, которая затем или транскрипционно замалчивает или активирует несоотв. гены (Schneider et al. 2002; Valk-Lingbeek et al. 2004). Очевидно, что эпигенетические характеристики являются критическими клеточными функциями. Фактически, паттерн глобальных acetyl и methyl гистоновых меток составляет отличительные признаки для прогрессиорования определенных опухолей, как показывают исследования прогрессирования опухоли простаты (Sdigson et aL 2005).

Figure 19. Epigenetic Cancer (a) Aberrant epigenetic marks at cancer-causing ioci typically involve the derepression of oncogenes or silencing of tumor suppressor genes. Epigenetic marks known to alter a normal cell include DNA methylation, repressive histone methylation, and histone deacetylation. (d) The use of epigenetic therapeutic agents for the treatment of cancer has consequences on the chromatin template, illustrated for a tumor suppressor locus. Exposure o to Dnmt inhibitors results in a loss of DNA methylation, and exposure to HDAC inhibitors results in the acquisition of histone acetyl marks and subsequent downstream modifications, including active histone methyl marks and the incorporation of histone variants. The cumulative chromatin changes lead to gene re-expression.

Разработка лекарственных мишеней, ингибирующих функцию хроматин-модифицирующих эффекторных энзимов, открывает новые горизонты в противоопухолевой терапии (see Fig. 19). Использование DNMT и HDAC ингибиторов наиболее продвинуто на стадии клинических испытаний. Zebularine и SAHA являются, соотв., двумя такими ингибиторами. Они особенно целительны для раковых клеток, в которых репрессированы гены опухолевых супрессоров (J.C. Cheng et al. 2004; Garcia-Manero and Issa 2005; Marks and Jiang 2005), т.к. обработка ведет стимуляции транскрипции. Основная пропорция репрессивного метилирования гистоновых лизинов теряется во время лечения в основном в результате связанных с транскрипцией замен гистонов и замещения нуклеосом; однако, эти ингибиторы не меняют существенно H3K9me3 в регионах промоторов мишеней (McGarvey et al. 2006). Остается разрешить вопрос, могут ли индуцировать репрессивные метки, которые персистируют, последующее повторное молчание генов опухолевых супрессоров, если в лечении наступает пауза, что могло бы противодействовать успешности "эпигенетической терапии". Возможно, что стратегия двойной эпигенетической терапии с использование ингибиторов DNMT и HDAC м. обещать лучший прогноз в клинических испытаниях.
Идентификация ингибиторов др. классов гистоновых модификаторов, а именно HKMTs и PRMTs, сегодня в фазе развития. Имеется приблизительно около 50 SET доменовых HKMTs в геноме млекопитающих. Большинство из хорошо охарактеризованных энзимов, таких как SUV39H, EZH2, MIX и RIZ участвуют в развитии опухолей (Schneider et al. 2002). Т.о., высокопроизводительный скрининг (high-throughput screens (HTS)) д. использоваться для успешной идентификации низкомолекулярных ингибиторов, которые может быть использованы в поисковых исследованиях и в конечном счете для противоопухолевой терапии. Все классы гистон-модифицирующих энзимов пригодны для подобных подходов, т.к. их специфические субстрат-связывающие сайты (т.e., к гистоновым пептидам), в противоположность связывающим сайтам к общему кофактору (напр., acetyl-CoA и SAM), д. позволять разработку более избирательных лоекарств. HTS оказался успешным для HDACs (Su et al. 2000), PRMTs (D. Cheng et al. 2004) и HKMTs (Greiner et aL 2005).
Необходимы как hypothesis-driven, так и эмпирические подходы для окончательного определения эффективности и пригодности любого из гистон-модифицирующих ингибиторов. Напр., избирательные HKMT ингибиторы против MLL или EZH2 могут быть ценными терапевтическими агентами против лейкемии и рака простаты. Альтернативно, использование SUV39H HKMT ингибитора, который кажется контринтуитивным, из-за потребности в этом энзиме для поддержания конституитивного гетерохроматина и стабильности генома, всё ещё может преимущественно сенсибилизировать опухолевые клетки. Кроме того, анализ HDAC ингибитора SAHA показал, что он может оперировать посредством дополнительных путей, которые отличны от реактивации транскрипции (Marls and Jiang 2005). Напр., HDAC ингибиторы могут также сенсибилизировать повреждения хромат ина, ингибируя эффективную репарацию ДНК и обеспечивая геномную нестабильность, которая может запускать апоптоз опухолевых клеток. Эти наблюдения обязательно д. отслеживаться, при оценке эффективности двойной комбинационной терапии. Исходя из результатов, однако, вполне возможно, что комбинационная терапия с использованием HDAC и HKMT ингибиторов может быть более избирательной в убивании про-неопластических клеток путем вовлечения их в информационный переизбыток и хроматиновую катастрофу. Следует надеяться, что продолжающиеся исследования позволят идентифицировать жизнеспособные кандидаты для эффективной эпигенетической терапии рака.

16 What Does Epigenetic Control Actually Do?


Приблизительно 10% белкового пула, кодируемого с помощью генома млекопитающих, играет роль в транскрипции или регуляции хроматина (Swiss-Prot database). Учитывая, что геном млекопитающих состоит из 3 X 109 bp, то он может быть приспособлен к примерно 1 X 107 нуклеосомам. Это порождает несметное количество возможных регуляторных посланий, включая ДНК-связывающие взаимодействия, гистоновые модификации, гистоновые варианты, ремоделирование нуклеосом, метилирование ДНК и некодирующие РНК. Всё же этот процесс транскрипционной регуляции сам по себе является совершенно запутанным, часто нуждается в сборке крупных мультибелковых комплексов (MOO белки), чтобы гарантировать инициацию, элонгацию и корректный процессинг мРНК с одиночного избранного промотора. Если ДНК сиквенс-специфическая регуляция столь сложна, то следует ожидать, ассоциаций низкого сродства вдоль динамичного полимера ДНК-гистоны и даже более того. На основании этих рассуждений редко может быть так, что одна модификация коррелирует с одним эпигенетическим состоянием. Скорее всего и как подтверждают экспериментальные доказательства существует комбинация или кумулятивный эффект нескольких (возможно многих) сигналов поверх расширенной области хроматина, которые стабилизируют и распространяют эпигенетические состояния (Fischle et al. 2003b; Lachner et al. 2003; Henikoff, 2005).
По большей части, связывание транскрипционного фактора является временным и теряется в последующих клеточных делениях. Для сохранения паттернов генной экспрессии, необходимы транскрипционные фактории в каждом последующем клеточном делении. Как таковой эпигенетический контроль может усиливать первичный сигнал (напр., стимуляция промотора, молчание генов, определение центромеры) чтобы обеспечить последовательные (но не бесконечные) клеточные генерации с помощью наследственной передачи информации посредством хроматиновых матриц (Fig. 20). Интересно, что у S. pombe, Swi6-зависимая эпигенетическая variegation может быть супрессирована на многие клеточные деления во время как митозов, так и мейоза (Grewal and Klar 1996) с помощью гистоновых модификаций (наиболее вероятно H3K9me2). Аналогичные исследования были осуществлены на Drosophila, используя пульсовой активирующий транскрипционный фактор, чтобы передавать клеточную память для экспрессии Hox генов в зародышевой линии самок (Cavalli and Paro 1999). В обоих этих примерах эпигенетическая память обеспечивается изменениями хроматина, которые представлены разными гистоновыми модификациями и, скореее всего, также включением вариантов гистонов.
Если гистоновые модификации функционируют совместно, то может накладываться отпечаток (imprint) на хроматиновую матрицу, что д. помочь пометить нуклеосомы, особенно, если сигнал восстанавливается после репликации ДНК (Fig. 20). Для даже более стабильного наследования сотрудничество между гистоновыми модификациями, включением вариантов гистонов и ремоделированием хроматина д. превращать протяженные области хроматина в персистирующие структурные альтерации, которые затем могут распространяться в течение многих клеточных делений. Несмотря на объяснение наследуемых транскрипционных "ВКЛ" состояний, сходная синергичность между репрессивными эпигенетическими механизмами д. быть более стабильно заперта регионами молчащего хроматина, что в дальнейшем д. усиливаться за счет дополнительного метилирования ДНК.
Двойная спираль ДНК может быть рассмотрена затем как самох-организующийся полимер, который, благодаря своему упорядочиванию в хроматин, может отвечать на эпигенетический контроль и амплифицировать первичный сигнал в более долговременную "память". Кроме того, многие гистоновые модификации возможно участвуют в реакции на внутренние и внешние стимулы. Учитывая это, хроматин-модифицирующие энзимы д. нуждаться в кофакторах, таких как ATP (kinases), acetyl-CoA (HATs) и SAM (HKMTs), чьи уровни диктуются внешнесредовыми изменениями (напр., диетой). Т.о., измененные условия могут транслироваться в более динамичный или стабильный полимер ДНК-гистоны. Прекрасным примером является NAD-зависимая HDAC, Sir2, которая действует в качестве "сенсора" питательных веществ и life span/aged клеток (Guarente and Picard 2005; Rine 2005). Понимание того, как эти внешние сигналы превращаются в биологически важные эпигенетические сигнатуры и как они считываются, транслируются и наследуются, является сутью современных эпигенетических исследований. Однако, важно подчеркнуть, что эпигенетический контроль нуждается в сложном балансе многих факторов и что функциональное взаимодействие не всегда полностью восстанавливается после каждого клеточного деления. Это является функциональным контрастом по отношению к генетике, где используются альтерации последовательностей ДНК, которые всегда стабильно передаются через митозы и мейоз, если мутация возникает в зародышевой линии.
Возникает важный вопрос из представленных выше рассуждений, как информация, содержащаяся в хроматине, передается от материнской дочерним клеткам. Если клетка теряет свои качественные особенности из-за болезни, неправильной регуляции или репрограммирования, то сопровождается ли потеря качественных характеристик изменениями в структуре хроматина? Массовый синтез большинства стержневых гистонов высоко регулируется во время клеточного цикла. Транскрипция стержневых гистоновых генов происходит во время S фазы, стадии, когда ДНК реплицируется (replication coupled). Такая "координация" подтверждает, что т.к. количество ДНК удваивается в клетке, то имеется достаточно стержневых гистонов для откладывания их на новую реплицированную ДНК и тем самым для упаковки ДНК, происходящей одновременно с репликацией ДНК. Как показано выше разные регионы хроматина могут обладать самостоятельными отличиями по гистоновым модификациям, которые программируют область или к транскрипции или наоборот. Как домены вновь синтезированного дочернего хроматина сохраняют эту критическую информацию для соотв. экспрессии генов? Как программа полностью передается в виде матрицы из одной клеточной генерации следующей во время митозов или формирования зародышевых клеток (спермиев и яиц)? Эти центральные вопросы ждут дальнейшего исследования.
Хотя первоначальные исследования показали полуконсервативный процесс, при котором новый H3/H4 тетрамер откладывается, сопровождаемый включением двух новых H2A/H2B димеров, но недавние данные поставили под вопрос эту гипотезу. В этой недавней модели "новые" H3 и H4 полипептиды, которые уже могут нести некоторые посттрансляционные модификации, инкорпорируются во вновь синтезируемые H3/H4 гистоновые димеры вместе со "старыми" H3/H4 димерами, сегрегирующими между материнской и дочерней ДНК. Если это так, тогда модифицированные родительские H3/H4 димеры теперь также д. присутствовать вместе с вновь синтезированными димерами на той же самой ДНК. Их совместное присутствие может затем диктовать как соотв. модификации будут помещаться на вновь добавленных димерах (Tagami et aL 2004). Эта модель привлекательна и может помочь объяснить наследование гистоновых модификаций и тем самым распространение эпигенетической информации во время репликации ДНК и делений клеток. Однако, необходимо больше доказательств, подтверждающих действенность данной или др. интригующих моделей, объясняющих передачу хроматиновых меток при клеточных делениях.
В завершение этой части зададимся вопросом, отличается ли эпигенетический контроль фундаментально от базовых генетических принципов? Хотя мы можем пожелать рассмотреть эпигенетические ландшафты Уоддингтона в качестве демаркирующих участков активирующих или репрессивных гистоновых модификаций вдоль континуума хроматинового полимера, это мнение может быть



Figure 20. Epigenetic Potentiation of a Primary Signal (Memory/Inheritance) Classic genetics predicts that gene expression is dependent on the availability and binding of the appropriate panel of transcription factors (TF). Removal of such factors (i.e., a primary signal) results in the loss of gene expression, and thus constitutes a transient activating signal (top). Chromatin structure contributes to gene expression, where some conformations are repressive and others active. The activation of a locus may therefore occur through a primary signal and result in the downstream change in chromatin structure, involving active covalent histone marks (mod) and the replacement of core histones with variants (e.g., H3.3). Through cell division, this chromatin structure may only be reestablished in the presence of an activating signal (denoted "recurring signal"). Epigenetic memory results in the maintenance of a chromatin state through cell division, even in the absence of the primary activating signal. Such a memory system is not absolute, but involves multiple levels of epigenetic regulation for remodeling chromatin structure. The dynamic nature of chromatin means that although a chromatin state may be mitotically stable, it is nonetheless prone to change, hence affecting the longevity of epigenetic memory..


легко интерпретировано по другому. Только в последнее время, когда мы узнали о крупных ферментативных системах, посредством которых могут распространяться гистоновые модификации. Это повлияло на наше современное понимание стабильности, а следовательно, и наследование определенных гистоновых маркеров. Кроме того, даже заниженные оценки недавних открытий показывают, что мутации хроматин-модифицирующих активностей, таких как ремодельеры нуклеосом (Cho et al. 2004; Mohrmann and Verrijzer 2005), DNMTs (Robertson 2005), HDACs или HMKTs (Schneider et al. 2002), т.к. они часто обнаруживаются при аномальном развитии и неоплазии, являются наглядным примером предельной мощности генетического контроля. Как таковой показатель опухолей у таких мутантных мышей в целом рассматривается как генетическое заболевание. Напротив, альтерации в структуре нуклеосом, метилировании ДНК и профилей гистоновых модификаций - не вызываются мутантными генами - д. классифицироваться как "настоящие" эпигенетические аберрации. Прекрасным примером такой наиболее пластичной системы являются стохастические решения во время раннего эмбрионального развития, репрограммирование с помощью перенося ядер, транскрипционная память, геномный импринтинг, мозаичная инактивация Х, качественные характеристики центромер и прогрессирование опухолей. Генетика и эпигенетика являются тесно связанными феноменами и наследование обоих является их распространением посредством клеточных делений, которые, для генетического контроля, заключают в себя зародышевую линию, если мутации происходят в зародышевых клетках. В случае др., часто слишком легко категоризированных, эпигенетических модификаций, мы не знаем отражают ли они лишь минорные и временные реакции на изменения во внешней среде или вносят существенный вклад в фенотипические различия, которые могут быть затем поддержаны в течение многих, но не бесконечных делений соматических клеток и иногда затрагивают зародышевую линию. С нашим сегодняшним знанием эпигенетических механизмов имеется мало, если вообще новые подтверждения Ламаркизма.

17 Big Questions in Epigenetic Research


This book discusses the fundamental concepts and general principles that explain how epigenetic phenomena occur, as puzzling as they may seem. Our ultimate goal is to expose the reader to the current understanding of mechanisms that guide and shape these concepts, drawing upon the rich biology from which they emerge. In just a few years, epigenetic research has prompted exciting and remarkable insights and breakthrough discoveries, yet many long-standing questions remain unanswered (see Fig. 21). Although it is tempting to draw broad-brush conclusions and to propound general rules from this progress, we caution against this tendency, suspecting that there will be many exceptions that break the rules. For example, it is dear that striking organismal differences occur. Notably, from unicellular to multicellular organisms, the extent and type of histone modifications, histone variants, DNA methylation, and use of the RNAi machinery does vary.
There are, however, plenty of reasons for renewed energy in research programs designed to gain molecular insights into epigenetic phenomena. Elegant biochemical and genetic studies have already successfully dissected many of the functional aspects of these pathways, in an unprecedented manner. It could therefore be predicted that careful analysis of epigenetic transitions in different cell types (e.g., stem versus differentiated; resting versus proliferating) will uncover hallmarks of pluripotency (Bernstein et al. 2006; Boyer et al. 2006; Lee et al. 2006). This wiD most likely be valuable in diagnosing which chromatin alterations are significant during normal differentiation as compared with disease states and tumorigenesis. For example, using large-scale mapping approaches with normal, tumor, or ES cells-"epigenetic landscaping" along entire chromosomes (Brachen et al. 2006b; Squazzo et al. 2006; Epigenomics AG, ENCODE, GEN-AU, EPIGENOME NoE)-it is anticipated that the knowledge generated could be harnessed for novel therapeutic intervention approaches and work toward promoting a worldwide consortium to map the entire human epigenome (Jones and Martienssen 2005). It is conceivable that differences in the relative abundance between distinct histone modifications, such as the apparent underrepresentation of repressive histone lysine tri-methylation in S. pombe and A. thaliana, may reflect the greater proliferative and regenerative potential in these organisms as compared to the more restricted developmental programs of metazoan systems. In addition, the functional links between the RNAi machinery, histone lysine methylation, and DNA methylation will continue to provide exciting surprises into the complex mechanisms required for cell-fate determination during development. Similarly, an enhanced understanding of the dynamics and specificity of nucleosome-remod-eling machines will contribute to this end. We predict that more "exotic" enzymatic activities will be uncovered, catalyzing epigenetic transitions through modifications of histone and non-histone substrates. It would appear that chromatin alterations, as induced by the above mechanisms, act largely as a response filter to the environment. Thus, it is hoped that this knowledge can ultimately be applied to enhanced therapeutic strategies for resetting

Figure 21. Big Questions in Epigenetic Research The many experimental systems used in epigenetic research have unveiled numerous pathways and novel insights into the mechanisms of epigenetic control. Many questions, as shown in the figure, still remain and require further elucidation or substantiation in new and existing model systems and methods.

some of an individual's epigenetic response that contribute to aging, disease, and cancer. This includes tissue regeneration, therapeutic cloning (using ES cells and their derivatives), and adult stem cell therapy strategies. It is believed such strategies will extend cellular life span, modulate stress responses to external stimuli, reverse disease progression, and improve assisted reproductive technologies. We predict that understanding the "chromatin basis" of pluripotency and totipotency will Ik at the heart of understanding stem cell biology and its potential for therapeutic intervention.
Many fundamental epigenetic questions remain. For example, What distinguishes one chromatin strand from the other allele when both contain the same DNA sequence in the same nuclear environment? What defines the mechanisms conferring inheritance and propagation of epigenetic information? What is the molecular nature of cellular memory? Are there epigenetic imprints in the germ line that serve to keep this genome in a totipotent state? If so, how are these marks erased during development? Alternatively, or in addition, are new imprints added during development that serve to "lock in" differentiated states? We look forward to the next generation of studies (and students) bold enough to tackle these questions with the heart and passion of previous generations of genetic and epigenetic researchers.
In summary, the genetic principles described by Mendel likely govern the vast majority of our development and our outward phenotypes. However, exceptions to the rule can sometimes reveal new principles and new mechanisms leading to inheritance that have been underestimated, and in some cases, poorly understood previously. This book hopes to expose its readers to the newly appreciated basis of phenotypic variation-one that lies outside of DNA alteration. It is our hope that the systems and concepts described in this book will provide a useful foundation for future generations of students and researchers alike who become intrigued by the curiosities of epigenetic phenomena.
Сайт создан в системе uCoz