Посещений:
РЕПАРАЦИЯ ДНК

Роль Убиквитилирования и СУМОилирования

Principles of ubiquitin and SUMO modifications in DNA repair
Steven Bergink & Stefan Jentsch
Nature 458, 461-467 (26 March 2009) | doi:10.1038/nature07963

With the discovery in the late 1980s that the DNA-repair gene RAD6 encodes a ubiquitin-conjugating enzyme, it became clear that protein modification by ubiquitin conjugation has a much broader significance than had previously been assumed. Now, two decades later, ubiquitin and its cousin SUMO are implicated in a range of human diseases, including breast cancer and Fanconi anaemia, giving fresh momentum to studies focused on the relationships between ubiquitin, SUMO and DNA-repair pathways.


Рис.1.
 | Schematic diagram of ubiquitin and SUMO modification pathways.


Рис.2.
 |  Scheme for XPC and DDB2 ubiquitylation.


Рис.3.
 |  The PCNA ubiquitin|[ndash]|SUMO switchboard.


Рис.4.
 |  Phosphorylation-dependent RNF8 recruitment.


Рис.5.
 | Hypothetical model for SUMO-driven protein-complex formation.

Табл.1 Examples of DNA-repair proteins modified by ubiquitin and SUMO



Galanty, Y. et al.
Mammalian SUMO E3-ligases PIAS1 and PIAS4 promote responses to DNA double-strand breaks.
Nature 462, 935–939 (2009)
Article

Morris, J. R. et al.
The SUMO modification pathway is involved in the BRCA1 response to genotoxic stress.
Nature 462, 886–890 (2009)
Article


Во время DNA damage response (DDR), репаративные белки, такие как E3 ubiquitin ligase breast cancer type 1 susceptibility protein (BRCA1) накапливается на DNA double-stranded breaks (DSBs), а ubiquitylation в этом месте помогает рекрутировать дальнейшие репаративные белки. Small ubiquitin-related modifier (SUMO) - который прикрепляется к белкам с помощью пути, использующего E1 энзим SAE1, E2 энзим UBC9 (также известный как UBE21) и E3 лигаза (такая как PIAS1 и PIAS4) - также участвуют в DDR, но их роль неясна. Galanty et al. and Morris et al. сообщают, что PIAS1 и PIAS4 способствуют репарации ДНК и необходимы для активности BRCA1 E3 ubiquitin лигазы на DSBs.
Обе группы обнаружили, что UBC9, SUMO1, SUMO2 и SUMO3 накапливаются на DSBs в клетках млекопитающих PIAS1- и PIAS4-зависимым образом. Более того, истощение PIAS1 и PIAS4 вызывает уменьшение репарации DSB за счет гомологичной рекомбинации и non-homologous end joining, указывая на функциональную роль этих E3 SUMO лигаз в репарации ДНК.
Какова же функция SUMO и PIAS белков в DSBs и как они вносят вклад в репарацию ДНК? Во время DDR, гистон H2AX фосфорилируется в хроматине, окружающем DSBs, это ведет к рекрутированию факторов репарации, таких как tumour suppressor p53-binding protein 1 (TP53BP1) и E3 ubiquitin лигазы BRCA1, RNF8 и RNF168, на поврежденную ДНК. Galanty et al. показали, что PIAS1 и PIAS4 рекрутируются на DSBs за счет своих SAP доменов и обеспечивают ассоциацию TP53BP1, BRCA1 и RNF168 с местом повреждения. Они также установили, что TP53BP1 и BRCA1 сумоилируются в ответ на ионизирующую радиацию и что эти события sumoylation обеспечиваются за счет PIAS1 и PIAS4. Morris et al. независимо показали, что PIAS1 и PIAS4 способствуют сумоилированию BRCA1 в местах повреждений ДНК в обработанных hydroxyurea клетках и что сумоилирование BRCA1 in vitro увеличивает её E3 ubiquitin ligase активность.
Убиквитилирование гистонов H2A и H2AX в местах повреждений ДНК, обеспечивает рекрутирование дальнейших репаративных белков, этому способствуют E3 ubiquitin ligases BRCA1, RNF8 и RNF168. Galanty et al. показали, что истощение PIAS4 снижает убиквитилирование гистона H2A на DSBs и нарушает рекрутирование RNF168 на эти места повреждений. Morris et al. показали, что истощение PIAS1, PIAS4 или BRCA1 снижает уровень BRCA1-завимого убиквитилирования на DSBs, и что PIAS1 и PIAS4 необходимы для накопления RNF168 и ubiquitin conjugates, генерируемых с помощью RNF168 на месте повреждения. Эти данные предоставляют дальнейшие доказательства, что SUMO и ubiquitin действуют совместно на DSBs , чтобы обеспечить репарацию ДНК.
Итак, E3 SUMO лигазы PIAS1 и PIAS4 играют важную роль в пути DDR у млекопитающих путем регуляции рекрутирования ключевых белков репарации ДНК на DSBs, sumoylation TP53BP1 и BRCA1 и E3 ubiquitin ligase активности BRCA1.
Модификации белков с помощью конъюгации ubiquitin (ubiquitylation) или его родственника SUMO (SUMOylation), являются центральными для большинства аспектов эукариотической жизни. Как и в случае фосфорилирования эти модификации обратимы. Конъюгация этих модификаторов АТФ зависима и использует активирующие энзимы (E1), конъюгирующие энзимы (E2) и лигазы (E3)1. В ubiquitin пути субстрат специфичность обычно обеспечивается с помощью E3 лигаз, которые обычно обладают сайтами связывания субстрата и иногда комбинацией E3 лигаз с E2 энзимами2. Чтобы достичь высокой специфичности клетки экспрессируют множество различных E2 и ещё больше E3 и эти энзимы часто являются мишенями для регуляции (Fig. 1). Неожиданно, хотя SUMOylation также затрагивает большое количество субстратов, его путь значительно проще и использует E1, одиночный E2 (Ubc9) и лишь немного E3 лигаз (Fig. 1). Ubc9 обычно связывает субстрат непосредственно, но SUMO E3s также, по-видимому, вносят вклад с субстрат специфичность. SUMOylation часто нацелено на лизиновый остаток внутри 'consensus' последовательности, но др. лизиновые остатки могут быть модифицированы также. В противоположность дрожжам позвоночные имеют три варианта SUMO.
Сложность возникает из-за того, что и ubiquitin и SUMO могут формировать poly-modifier 'цепочки' - т.е., они могут становиться конъюгированными с лизиновым остатком др. (уже конъюгированной с субстратом) молекулы модификатора. В противоположность polyubiquitin цепочкам мало известно о генеральной функции polySUMO цепочек (дрожжевой SUMO и у млекопитающих SUMO-2/3 могут формировать цепочки, но не SUMO-1). В случае белка PML, polySUMOylation рекрутирует ubiquitin лигазу RNF4 для polyubiquitylation и деградации белка3. Дальнейшие осложнения возникают с открытием, что разветвленные, 'tree-like' polyubiquitin модификации возникают in vivo (когда используются множественные ubiquitin лизины)4 и что SUMO может быть модифицирован с помощью ubiquitin, давая возможно смешанные ubiquitin-SUMO цепочки3, хотя значение этих модификаций пока неясно. Важно, что и ubiquitylation и SUMOylation обратимы, т.к. гидролазы могут удалить модификации полностью или состричь цепочки модификаторов или давать деревья определенной величины.
Доступные структурные данные указывают на то, что модификаторы могут вносить конформационные изменения в субстрат, но они обычно едва затрагивают укладку конъюгированного субстрата вокруг сайта прикрепления. Это, по-видимому, обусловлено тем фактом, что С-терминальные glycine остатки модификаторов позиционируются на флексибельных выступающих концах. Однако , т.к. модификаторы являются белками, то они часто обладают поверхностями для взаимодействий с белками или из-за своей объемности, предупреждают или ослабляют межбелковые взаимодействия. Нижестоящие факторы, партнеры, которые связываются разного типа модификациями или факторы, которые отталкиваются этими модификациями, и поэтому являются критическими. В самом деле, многие разные мотивы последовательностей были идентифицированы, которые представляют собой связывающие модули, специфичные для ubiquitin5 (такие как ubiquitin-associated (UBA) домены, ubiquitin-interacting motifs (UIM) или ubiquitin-binding zinc finger (UBZ) домены) или SUMO-interacting motifs (SIM)6. Удивительно, некоторые из них могут даже различать между разными типами poly-modifier сцеплений7.

Regulation of repair by ubiquitylation


Хотя ранние исследования подтвердили, что центральной функцией ubiquitin может быть протеосомная деградация, сегодня становится ясно, что модификации белков с помощью ubiquitylation или SUMOylation имеет более широкое значение. Особенно бросается в глаза тот факт, что различные ядерные функции , по-видимому, контролируются с помощью ubiquitylation и SUMOylation. Более того, масс-спектроскопия идентифицировала удивительные ядерные белки в качестве субстратов для этих модификаторов, особенно для SUMO8. Поразительно, все основные пути репарации ДНК, механизмы избегания повреждений и checkpoint реакции регулируются каким-то способом с помощью ubiquitylation, SUMOylation или обоих (Table 1). В самом деле, гены пути толерантности к RAD6-повреждениям кодируют в основном энзимы, участвующие в ubiquitin пути. Сходным образом, путь межнитевой crosslink-репарации, связанный с анемией Фанкони, по-видимому, состоит в основном из энзимов и субстратов ubiquitin системы.
ДНК может быть повреждена разными способами и повреждения могут возникать за счет экзогенных и эндогенных повреждений. Тип повреждений и стадия клеточного цикла, на которой это происходит, предопределяют путь, используемый для репарации9 (Box 1). Повреждения ДНК обычно индуцируют активацию репарации ДНК или пути избегания повреждений и часто checkpoint реакция, которая запускает арест клеточного цикла, чтобы иметь время для репарации. Эта реакция обозначается как DNA-damage response (DDR)10, 11, она обычно инициируется с помощью белков, которые распознают повреждения ДНК , и сопровождается рекрутированием и активацией белков, которые запускают checkpoint передачи сигналов или непосредственно осуществляют необходимые ступени репарации. В некоторых случаях репарация имеет место внутри крупных белковых ансамблей (для рекомбинационной репарации, напр. ), которые идентифицируются микроскопически как фокусы репарации. Когда репарация завершается, то необходимый аппарат разбирается и DDR выключается.
DDR пути представляют собой поразительные случаи регуляции с помощью ubiquitin и SUMO, т.к. каждый аспект этих модификаторов, по-видимому, используется. Более того, некоторые из этих путей представляют собой разъясняющие примеры того, как эти две системы модификаций могут взаимодействовать др. с др. и координировать эти сложные события. Здесь мы сфокусируемся на немногих разъясняющих случаях и отразим основные механизмы и принципы модификации с помощью ubiquitin и SUMO. Учитывая их связь в болезнями. такими как рак груди, анемия Фанкони и xeroderma pigmentosum, способы воздействия ubiquitin и SUMO на пути репарации ДНК становятся очень важными.

Regulation of nucleotide-excision repair


Большинство DDR путей контролируются с помощью ubiquitin-proteasome pathway (UPS). Примерами являются деградации остановившихся RNA polymerases на поврежденных матрицах ДНК12, или деградация репаративных белков после завершения репарации. Случай, который привлек специальное внимание, обнаружен в пути nucleotide-excision repair (NER) (see Box 1). NER, лучше всего известная своей способностью репарировать повреждения, индуцированные УФЛ, также действует на большинство helix-distorting повреждений. Повреждения этого типа распознаются с помощью XPC белкового (xeroderma pigmentosum group C) комплекса13 и ultraviolet light, DNA-damage-binding (UV-DDB) комплекса14. Когда повреждения распознаются, то ДНК, окружающая это место, плавится (melted) с помощью helicases из TFIIH комплекса. Когда повреждение содержащий нуклеотид вырезается, то DNA polymerases заполняет возникающий в результате пробел. XPC, кодируется одним из генов, мутантных у пациентов с нарушениями репарации ДНК xeroderma pigmentosum, он формирует комплекс с calcium-binding EF-hand centrin-2 белком (Cdc31 у дрожжей) и с любым из двух родственных белков человека, RAD23A и RAD23B15, 16. Эти два родственника дрожжевого экскорт-фактора Rad23 имеют C-терминальные ubiquitin-binding modules (UBA домены), которые распознают ubiquitin-белок конъюгаты, и N-терминальный ubiquitin-подобный домен, который обычно направляет белок вместе со связанным убиквитиновым конъюгатом к протеосомам17.
Как убиквитилирование и протеосомы используются в NER является споным вопросом, но некоторые находки указывают на не-канонические роли. У дрожжей XPC-родственный Rad4 белок ubiquitylated и деградируется с помощью протеосом18. Однако в противоположность др. протеосомным путям, Rad23, по-видимому, защищает Rad4 (и XPC) от деградации19, 20. У человека, XPC ubiquitylation осуществляется с помощью специфического, cullin-based ubiquitin-ligase комплекса (CUL4a-ROC1-DDB1; UV-DDB)21. Эта лигаза обычно находится под контролем за счет ассоциации с COP9 сигналосомами (частицами, родственными с 'lid complex' из 19S шапочки протеосомы), которые репрессируют её лигазную активность22. Однако сигналосомы диссоциируют от лигазы на повреждениях ДНК, вследствие чего два белка, распознающих повреждения, XPC и DDB2 убиквитилируются. Последствия модификаций этих двух субстратов различны, в то время как полиубиквитилирование DDB2 запускает его деструкцию23, тода как полиубиквитилирование XPC нет21 (Fig. 2). Полиубиквитилированный XPC обладает более высоким сродством к ДНК (как поврежденный, так и не поврежденный) in vitro, указывая на его регуляторную роль21. Вызывабтся ли эти очень различные судьбы разными типами цепочек убиквитина (напр., сцепленных с лизином в позиции 48 (Lys 48) или Lys 63) неизвестно, но привлекательна идея, что полиубиквитилированный XPC, вообще-то в комплексе с RAD23 белками, способствует образованию специфических белковых ансамблей, необходимых для эффективной репарации.
Исследования на дрожжах подтвердили не-протеолитическую роль для 19S cap протеосом при NER24. Это неожиданно, т.к. 19S шапочка является обычно частью полной в 26S протеосомы, функционирует нормально в разворачивании субстрата перед его деградацией. Т.к. 19S шапочка содержит AAA-типа ATPases25 , то было предположено, что 19S частица может действовать в NER путем ремоделирования комплексов белков репарации24. Хотя точные UPS-управляемые события при NER ещё далеки от ясности, разумно предположить, что вообще-то не протеолитическая функция (напр., ремодлирование) сопровождается протеосомной деградацией, возможно, чтобы очищать место репарации, замещая белки репарации. Т.к. в др. пути26, эти две ступени могут быть запущены двумя типами ubiquitin модификаций, напр., mono- или oligoubiquitylation, сопровождаемой (Lys-48-сцепленным) полиубиквитилированием.

A ubiquitin-SUMO switchboard


Одним из наиболее поразительных случаев контроля с помощью ubiquitin и SUMO является proliferating cell nuclear antigen (PCNA). Этот гомотримерный, кольцеобразный белок, который охватывает кольцом ДНК действует как фактор преобразования для DNA polymerases и как подвижная платформа для факторов, которые обеспечивают связанные с репликацией функции ( такие как сборка хроматина или слипание сестринских хроматид)27. Удивительно, PCNA может быть модифицирована по тому же самому консервативному лизиновому остатку (Lys 164) или с помощью monoubiquitylation, Lys-63-сцепленной polyubiquitin цепочки или SUMO (ref. 28) (Fig. 3). И ubiquitylation и SUMOylation PCNA происходят в S фазе, но ubiquitylation специфически происходит, когда ДНК повреждена. Неожиданно, около половины известных генов RAD6 DNA-damage-tolerance пути у дрожжей кодируют энзимы, которые катализируют убиквитилирование PCNA. Среди них, Rad18 и Rad5 являются E3 ubiquitin лигазами RING-finger класса29. Rad6 сам является обычным E2 ubiquitin-conjugating энзимом30, тогда как Ubc13 и Mms2 (последний лишен active-site cysteine остатка) формируют гетеродимерную E2 с уникальным свойством катализа прикрепления Lys-63-сцепленных polyubiquitin цепочек. Rad6 и Rad18 катализируют PCNA monoubiquitylation, тогда как Ubc13/Mms2 и Rad5 необходимы для расширенной модификации с помощью Lys-63-сцепленной polyubiquitin цепи. Две лигазы, Rad18 и Rad5, могут гетеродимеризоваться и обе непосредственно соединяются с PCNA28, 29.
Во время S фазы поврежденная ДНК может вызывать остановку репликационной вилки, это в свою очередь генерирует однонитчатые сегменты ДНК. Они в дальнейшем покрываются с помощью гетеротримерного RPA белка. RPA затем рекрутирует Rad18 на эти сайты31 благодаря сродству Rad18 с PCNA и Rad6, моноубиквитилируя PCNA по его Lys 164 остатку28. PCNA monoubiquitylation обеспечивает translesion synthesis (TLS), т.е. синтез ДНК через поврежденное место. TLS катализируется с помощью набора специфических полимераз, которые могут приспосабливаться к различным крупным повреждениям в своих активных участках32. Благодаря этому свойству, TLS polymerases являются склонными к ошибкам и могут также вставлять некорректные нуклеотиды, делая TLS мутагенным. Удивительно, что некоторые TLS polymerases имеют ubiquitin-связывающие мотивы (напр., UBM и UBZ домены), которые позволяют им взаимодействовать более специфически с monoubiquitylated PCNA33, 34. Polyubiquitylation может происходить, если TLS терпит неудачу (вообще-то в зависимости от повреждения) и ведет к связанному с рекомбинацией лишенному ошибок обходу. В точности как этот путь действует и может ли polyubiquitylated PCNA рекрутировать специфический фактор пока неизвестно.
Дрожжевой PCNA также может быть SUMOylated по Lys 164 и в меньшей степени по Lys 127 (ref. 28). Оба лизиновых остатка располагаются на наружном крае кольцеобразной молекулы, вдали от охватываемой ДНК. SUMOylated PCNA специфически рекрутирует Srs2, helicase-подобный энзим, который удаляет recombinase Rad51 с хроматина35, 36. Этот механизм может содействовать репликации путем предупреждения нежелательной рекомбинации между вновь образующимися сестринскрими хроматидами. Отметим, что Srs2 может соединяться с PCNA непосредственно, но благодаря C-терминальному SUMO-interacting domain (SIM), он соединяется с SUMOylated PCNA со значительно более высоким сродством35, 36. Второе место SUMOylation, Lys 127, расположено непосредственно в связывающем кармане для большинства белков, взаимодействующих с PCNA (PIP-box белки)28. Т.о., Lys 127 SUMOylation (и в меньшей степени Lys 164 SUMOylation). по-видимому, предупреждает взаимодействие с белками, которые соединяются с этим карманом посредством своих PIP боксов27. Одни из таких факторов является Eco1, который соединяется с PCNA посредством PIP-box и обеспечивает слипчивость сестринских хроматид в S фазе37. Неожиданно, Eco1 соединение с PCNA предупреждается не только с помощью PCNA SUMOylation, но и также с помощью соединения Ubc9 сPCNA37. Эти находки подтверждают 'reset button' модель. согласно которой соединение Ubc9 с PCNA, сопровождаемое PCNA SUMOylation, может 'сбрасывать' PIP-box белки с PCNA, делая возможным новое присоединение др. PIP-box белков, как только PCNA оказывается de-SUMOylated27.
Поскольку Lys 164 в PCNA является мишенью для ubiquitin и SUMO, эти два модификатора конкурируют за субстрат. Удивительно, Ubc9 также физически взаимодействует с Rad18 и Rad5 (ref. 28), указывая тем самым, что энзимы являются частью ubiquitin-SUMO распределительного щита и что PCNA ubiquitylation и SUMOylation могут действовать вместе во время репликации. Теоретически возможно, хотя и довольно спекулятивно, что индивидуальные субъединицы гомотримерного белка могут быть модифицированы разными модификаторами, чтобы регулировать события ступенчатообразно27.

SUMO and structural changes


В случаях, описанных выше, ubiquitin и SUMO может или привлекать белок (TLS polymerases, Srs2) или отталкивать фактор связывания (Eco1). Примером того, как SUMO может непосредственно влиять на свой субстрат служит путь base-excision-repair (BER) . BER избирательно устраняя повреждения ДНК, которые возникают обычно в её основаниях путём alkylation, oxidation или deamination. Повреждение распознается с помощью glycosylases, которые вырезают поврежденное основание, в результате возникает пустое abasic site (apurinic или apyrimidinic, AP). Фосфоэфирная связь 5' AP сайта затем выщепляется с помощью AP-endonucleases (APE), и пробел заполняется с помощью синтеза и ligation ДНК. Thymine-DNA glycosylase (TDG) гидролизует N-glycosidic мостики thymine или uracil, если несовместимы с guanine38. Модификация TDG с помощью SUMO-1 или SUMO-3 вызывает диссоциацию энзима от продукта AP сайта, это приводит к эффективному ферментативному обороту (turnover)39. Контролируемая диссоциация TDG от субстрата, по-видимому, необходима для правильно связи эксцизии основания с активностью APE, редуцируя воздействия потенциально вредного AP сайта. Данные по кристаллической структуре центрального домена энзима, конъюгирующего с SUMO, показали, что конъюгированный SUMO взаимодействует с элементом, связывающим SUMO в энзиме. Это внутримолекулярное взаимодействие, по-видимому, ведет к выпячиванию спирали, которое может в свою очередь мешать соединению с ДНК40.

SUMO and nuclear territories


Репарация double-strand breaks (DSBs) представляет др. пример пути SUMOylation, который может влиять на функцию белка и может кооперировать с ubiquitylation. DSBs вызываются в основном с помощью экзогенных агентов, таких как γ-облучение или определенные химические соединения, но они также появляются случайно во время несовершенной репликации. Они также активно индуцируются специфическими процессами, такими как мейоз, рекомбинация иммуноглобулиновых генов, и переключение типов спаривания у дрожжей. Основными путями репарации DSB являются homologous recombination (HR) и non-homologous end-joining (NHEJ). HR начинается с рекрутирования MRN complex (MRX у дрожжей) на место разрыва; комплекс затем соединяет разорванные концы вместе и обеспечивает вырезание нити ДНК, формируя однонитчатую ДНК в разрыве. Однонитчатая ДНК затем быстро покрывается и защищается с помощью гетеротримерного RPA комплекса. Важным медиатором рекомбинации является Rad52 (а у людей также BRCA2). Этот колесовидный гомо-олигомерный белок устраняет RPA из хроматина и замещает его рекомбиназой Rad51, формируя нуклеопротеиновые филаменты. Rad51 наконец катализирует рекомбинацию между гомологичными последовательностями41.
Rad52 SUMOylated, когда возникает DSB, и стимулируется с помощью MRX комплекса42. Интересно, что Rad52 SUMOylation затрагивает значительные количества HR субстратов, а мутантные Rad52 белки, лишенные сайтов SUMOylation деградируют быстрее с помощью ubiquitin-proteasome пути в этих условиях. Т.к. Rad52 является стабильным в отсутствие DSBs, то это указывает на то, что только рекомбинацией привлекаемые Rad52 белки склонны к ubiquitin-зависимой деградации42. SUMOylation может дать приют от ускоренной деградации, вообще-то за счет секвестрации белка в фокусах репарации.
Нежелательная рекомбинация между гомологичными последовательностями, такими как повторы ДНК, кодирующими ribosomal RNA (rDNA), является особым вызовом для HR. В случае rDNA, это, по-видимому, сопровождается частично ограничением активности HR внутри ядрышка, где rDNA обычно располагается. Если DSBs возникают в rDNA локусе, то они репарируются вне ядрышка, а внутри нуклеоплазмы, на что указывает образование внеядрышковых фокусов репарации43. В самом деле, ядрышки, по-видимому, являются динамическими, т.к. ДНК часто выходит и снова вступает в ядрышко. В отсутствие Rad52 SUMOylation, происходит гипер-рекомбинация внутри кластера rDNA, сопровождаемая появлением extragenomic rDNA circles (ERCs)43. Предупреждает ли Rad52 SUMOylation активно продуктивную сборку HR белков в ядрышке, или оно останавливает репаративные комплексы в нуклеоплазме, пока открытый вопрос.

Crosstalk between ubiquitylation and phosphorylation


Репарация DSBs в клетках млекопитающих связана с геном BRCA1, который мутанте у некоторых пациентов с раком груди. BRCA1 кодирует E3 ubiquitin лигазу44. Др. E3 лигаза, RNF8, также была картирована на поврежденных сайтах. RNF8 имеет N-терминальный FHA домен, который в ответ на повреждение ДНК соединяется с фосфорилированной областью MDC1. Это в свою очередь связывает фосфорилированную H2AX, хорошо известную хроматиновую метку повреждения ДНК. Накопление RNF8 на повреждениях ДНК приводит к рекрутированию 53BP1 и BRCA1, вызывая экстенсивное убиквитилирование белков в месте повреждения45-47. Известными мишенями RNF8 являются H2A и его вариант H2AX45, 47, из которых первый, как было установлено ранее, является субстратом для индуцированной УФЛ ubiquitylation48. RNF8 действует совместно с E2 энзимом UBC13, который также действует в свободной от ошибок ветви пути RAD6. В самом деле, в UBC13-дефицитных клетках кур, BRCA1 не накапливается в поврежденных сайтах и не происходит H2AX ubiquitylation после облучения49.
Белок RAP80, который содержит UIM, необходим для накопления BRCA1 в местах повреждений50-52. В истощенных по UBC13 и RNF8 клетках, RAP80 накопление не происходит45.Т.к. UBC13 участвует в катализе Lys-63-сцепленных polyubiquitin цепочек и т.к. RAP80 обнаруживает предпочтение к данному типу модификаций, то очень вероятно, что ubiquitin выполняет не-протеолитическую роль в этом пути. Неясно, соединяется ли RAP80 непосредственно с (poly)ubiquitylated H2A, модифицированным вариантом гистона, или с неидентифицированной ещё RNF8 мишенью (Fig. 4). В дополнение к облегчению рекрутирования нижестоящих факторов, ubiquitylation гистона может затрагивать структуру хроматина, возможно приводя к репарации или повреждению передачи сигналов.
Сходное накопление ubiquitin наблюдается в местах NER (refs 48, 53). Подобно фосфорилироанию H2AX54, H2A ubiquitylation также зависит от повреждений ДНК48. Однако неясно, могут ли разные типы повреждений ДНК приводить к сходной DDR реакции.

Regulating DDR signalling


Ubiquitylation и SUMOylation являются временными и обратимыми модификациями, и энзимы. который удаляют модификаторы выполняют важную регуляторную роль. Напр., deubiquitylation, наблюдаемое на пути к анемии Фанкони, которое обеспечивает устранение поперечных сшивок между нитями ДНК. Повреждение такого типа высоко токсично и нуждается в комбинации HR, NER и TLS путей. Дефицит одного из известных 13 FA генов приводит к гиперчувствительности к crosslinkers ДНК. Большинство из идентифицированных Fanconi anaemia белков составляют одиночную крупнуюмультисубъединичную E3 ubiquitin лигазу, а два др., FANCD2 и FANCI, являются соотв. субстратами, которые перемещаются на хроматин, если ubiquitylated55-57. Функция этих белков на хроматине и на последующих ступенях, пока неизвестна.
Деубиквитилирование энзима USP1 действует как на FANCD2, так и на FANCI, а также на PCNA57-59. Потеря активности USP1 ведет к убиквитилированию этих белков, даже если нет повреждений ДНК57-59. Клетки кур, в которых ген, кодирующий USP1, нокаутирован, обнаруживают гиперчувствительность к crosslinkers ДНК, признак анемии Фанкони60, указывая тем самым, что deubiquitylation FANCD2 и FANCI является критической для репарации. USP1 содержит внутренний домен, связанный с с концом ubiquitin, который способствует ауторасщеплению58. Однако , т.к. расщепляющий энзим всё ещё протеолитически активен61, преобразованный не-расщепляющий вариант может частично служить дополнением USP1-дефицитным клеткам60, роль USP1 ауторасщепления неясна. Тем не менее, т.к. и ubiquitylation и deubiquitylation FANCD2 и FANCI, по-видимому, является критическим для нормальной репарации поперечных сшивок ДНК, то очень возможно, что разные уровни регуляции являются важными для наведения и координации репарирующих энзимовв местах повреждений.

Thoughts and ideas


Future studies will no doubt reveal further links between ubiquitylation and SUMOylation and human diseases, including DNA-repair disorders. Both types of modification function in two general ways: as an adhesive or a repellent. The various surfaces of the two modifiers provide binding sites for protein–protein interactions, but their bulkiness can block other interactions. Several interactions of ubiquitin or SUMO with cognate binding proteins are relatively weak. Moreover, sometimes binding occurs even in the absence of modification, but the attached modifiers greatly strengthen the associations. It therefore seems plausible that protein assemblies may be firmly held in place by additive weak interactions between several modifiers and several modifier-binding modules present on different proteins of the assembly. As a result, the assembly of complexes is less efficient when there is no damage; that is, when proteins are unmodified (Fig. 5). In this model, disassembly is initiated by deubiquitylation and deSUMOylation enzymes or, alternatively, by the repellent activities of the modifiers. Because many nuclear functions take place within large protein assemblies, it will be interesting to see whether key functions of the two modifiers are perhaps to define nuclear territories, to assemble or disassemble nuclear activities, or to provide directionality to a pathway by a stepwise organization of protein complexes that should function one after the other.
Сайт создан в системе uCoz