Посещений:
ДЕГРАДАЦИЯ мРНК

Роль в регуляции экспрессии генов

A complex ‘mRNA degradation code’ controls gene expression during animal development
Claudio R. Alonso
Trends in Genetics, 17 January 2012 Copyright © 2011 Elsevier Ltd All rights reserved. 10.1016/j.tig.2011.10.005





RNA regulation and the molecular control of developmental programmes


В начале 20-го столетия пионерские исследования роли геномной информации у животных привели исследователей к правильному заключению, что ядра у ранних эмбрионов функционально эквивалентны, подразумевая, что разные 'активности' во всем остальном сравнимых ядер ответственны за инициацию и становление разных онтогенетических программ у эмбрионов [1]. С тех пор достигнут значительный прогресс в вычленении механизмов, лежащих в основе программ генной регуляции, которые ведут к формированию многоклеточных организмов. Большинство таких работ, однако, было сфокусирована на регуляции синтеза мРНК. В соответствии с этим паттерны онтогенетической экспрессии рассматривались всеми часто как искомые почти исключительно в терминах регулируемой транскрипции. Тем не менее, уровни мРНК у эмбрионов определялись не только скоростью транскрипции, с которыми эти мРНК синтезировались, но и также скоростью их деградации.
В этом обзоре я сконцентрировался на деградации мРНК и путях, с помощью которых изменчивость скорости деградации мРНК ведет к дифференциальной регуляции генов во время развития животных.

RNA degradation as a parameter controlling gene expression kinetics


Скорость деградации мРНК эукариот может варьировать 100-кратно или более от транскрипта к транскрипту [2,3] и может устанавливаться в ответ на информацию, которая является внутренней или внешней по отношению к клетке [4]. Однако насколько значительным является контроль деградации мРНК по отношению к функции онтогенетических генов? Чтобы исследовать роли скорости деградации РНК, нужно иметь генные продукты, это позволит нам рассматривать различные сценарии, затрагивающие продукцию и деградацию мРНК (Box 1). Это показывает, что контроль скорости деградации РНК является критическим для определения природы продукта, получаемого с данного гена: если скорость деградации слишком велика, то ген может достигать нежизненных низких уровней экспрессии или обнаруживать искаженный продукт как результат непосредственного отражения флюктуаций, присущих процессам транскрипции; если скорости деградации слишком низки, то уровни экспрессии могут быть слишком высоки и/или очень индифферентны к изменениям транскрипционного статуса, приводя клетки в потенциально вредоносное состояние, при котором их реакция на ключевые онтогенетические сигналы будет нарушена. Какие молекулярные механизмы предопределяют скорость деградации мРНК и как такие механизмы модулируются во время развития организма?
Внутри клеток молекулы мРНК покрыты несколькими белками, чтобы сформировать ribonucleoprotein particles (mRNPs). Этот базовый принцип лежит в основе модуляции скорости деградации ген-специфичных мРНК с участием контролируемого демаскирования молекул мРНК с помощью многих факторов, прикрепленных к ним, чтобы сделать транскрипт восприимчивым к кухне деградации РНК. Воздействие на 'незащищенную' мРНК клеточной среды ведет к деградации мРНК за счет активности exoribonuclease Xrn1, в то время как голые 3' концы подвергаются атаке крупных белковых комплексов из многих субъединц с 3'-5' экзорибонуклезной активностью, известных как exosome [5,6] (Figure 1). Однако концы большинства эукариотических молекул мРНК защищены от экзорибонуклазной деградации присутствием CAP структур (т.e. 7-methyl-guanosine; m7G) и poly(A) хвостов [т.e. сегмента приблизительно в 25-250 adenine (A) нуклеотидов], которые украшают 5' и 3' концы мРНК транскриптов, соотв. Специфические белки взаимодействуют со структурами и последовательностями на каждом из концов mRNA; напр., Cap-binding complex (CBC) соединяется с 5' CAP структурой, а poly(A)-binding proteins (PABPs) распознают и связывают poly(A) хвост [7,8]. Несмотря на это CBC и PABPs, как полагают, представляют только минимум из нескольких ещё не охарактеризованных белковых факторов, покрывающих синтезируемые РНК. Трудности, которые мешают полному биохимическому анализу таких mRNPs связаны с тем, что большинство комплексов очень временные. Напр., в цитоплазме ядерный CBC замещается eukaryotic initiator factor 4 (eIF4B), а большинство ядерных PABPs замещаются их цитоплазматическими аналогами [9]. В самом деле, выявляемая сложность ряда RBPs и их динамические паттерны ассоциации со специфическими мРНК, привели к гипотезе, что эукариотические mRNPs могут быть критическими для скоординированной экспрессии генов, представляя эукариотический эквивалент прокариотического оперона [10]. Кроме того, недавние наблюдения [11] подтвердили контроль из белкового 'dress code' мРНК, т.к. их путешествие с хромосом на рибосомы нуждается в существенной RNA chaperone активности и пост-трансляционных модификациях, подчеркивающих динамическую природу mRNPs.
Учитывая существование многих защитных факторов, ассоциированных с молекулой мРНК, для того чтобы она была деградирована она д. стать прежде всего доступной. В этой связи удаление poly(A) хвостов (деаденилирование mRNA) и элиминация CAP структуры с 5' конца мРНК (mRNA decapping) становятся двумя ключевыми ступенями в регуляции деградации мРНК (Figure 1). Из двух процессов деаденилирование рассматривается как наиболее распространенная и скорость-ограничивающая ступень в процессе деградации и идентифицировано несколько комплексов с deadenylase активностью, включая CCR4/POP2/NOT [4], PAN2/PAN3 [12] и DAN/PARN [13,14] комплексы. Устранение шапочки контролируется с помощью decapping энзима DCP2 [15,16,17,18], который нуждается в кофакторах DCP1, EDC4(GE1), PAT и RCK(Me31B) для достижения полной активности [19] и Nudt16 [20-22].
Немотря на это деградация РНК играет активную роль в контроле генной экспрессии в развивающемся организме, критической потребностью при этом является специфичность. Учитывая, что мРНК являются дискретными, мобильными молекулами, информация, которая предопределяет деградацию мРНК должна быть закодирована прежде всего в форме последовательностей и/или структур на самом транскрипте. Эксперименты по делеционному картированию показали, что деградация мРНК в самом деле контролируется посредством цис-регуляторных элементов, обычно. хотя и не исключительно, расположенных в мРНК 3'-untranslated regions (3'UTRs). Чтобы запустить деградацию мРНК, цис-регуляторные элементы должны оккупироваться trans-mRNA регуляторами (Figure 1), такими как RBPs и малые РНК, включая микроРНК и piwiRNAs (piRNAs). Специфический репертуар транс-факторов рекрутируется на данную мРНК и возможно их стоихометрия и позиция внутри мРНК диктует определенные паттерны распада мРНК посредством прямых или косвенных взаимодействий с энзимами, контролирующими деградацию мРНК.

mRNA degradation control by RBPs


Все RBPs имеют , по крайней мере, РНК-связывающий домен, хотя они часто имеют более чем одна такая единица [23,24]. Остановимся на этих RBPs, связанных с деградацией РНК, одним из наиболее охарактеризованных семей являются Hu, ELAV белки, которые взаимодействуют с 3'UTRs транскрипта, несущим прототипический цис-регуляторный элемент, связанный с контролем деградации РНК: adenylate/uridylate-rich elements (AREs) [25-28]. Добавление 51-mer ARE элемента, происходящего из GM-CSF гена человека на 3'UTR последовательность во всем остальном стабильной β-globin мРНК (half-life ~17h) делает транскрипт чрезвычайно нестабильным (half-life ~30min), это демонстрирует важность этих последовательностей для жизнеспособности мРНК в клетке [28,29]. Hu/ELAV белки экспрессируются в нейронах и их биологическое значение подчеркивается болезнями человека, затрагивающими уровень функциональных Hu белков в головном мозге в результате действия перекрестно-реагирующих антител, что приводит к тяжелым патологиям головного мозга, таким как paraneoplastic neurological disorder [23,30,31]. Хотя детали, как HuR ведет к изменениям стабильности мРНК ещё до конца неизвестны [32], его эффекты наблюдались на большом числе мРНК мишеней. Напр., HuR регулирует стабильность мРНК, кодирующей ukaryotic translation initiation factor 4E (eIF4E) человека посредством механизма, с использованием компетентности к связыванию между HuR и др. RBP с ролями по регуляции распада РНК: ARE связывающий фактор AUF1 - т.e. p42(AUF1) [33]. Сходный сценарий с использованием взаимодействий между HuR и AUF1, был обнаружен также на др. мишенях, таких как cyclin B и p21; в сомом деле, эксперименты на клетках HeLa показали, что 57% из всех HuR мишеней связаны с AUF1, указывая тем самым, что взаимодействия между этими двумя RBPs могут быть частыми и иметь отношение к их эффектам на стабильность многих мРНК мишеней [34]. Др. мишенью HuR является регулятор клеточного цикла у млекопитающих p27(Kip1) [35], у которых взаимодействия между HuR и мРНК обеспечиваются с помощью U-rich элементов как в 5'- так и 3'UTR последовательностях в p27(Kip1). У Drosophila melanogaster, HuR белок ELAV [36] необходим для нормальной дифференцировки нейронов посредством контроля процессинга мРНК генов мишеней [37]; однако, роли ELAV на уровне контроля деградации РНК пока неясна.

In addition to HuR and AUF1, several other proteins are able to interact with ARE elements, increasing or decreasing the RNA degradation rates of target mRNAs. These include tristetraprolin (TTP), butyrate response factor-1 (BRF1), poly(C)-binding protein (ACP) and KH-type splicing regulatory protein (KSRP) [38].



Box 1 The impact of мРНК degradation on gene expression during development
С кинетической точки зрения скорость деградации мРНК, как полагают, предопределяет относительное содержание всех видов мРНК в клетке и скорости, с которыми уровни мРНК будут достигать сигналов на выходе. Чтобы проиллюстрировать важность роли деградации мРНК на активность генов, рассмотрим три примера с разными сценариями (Figure I). Во всех случаях концентрация данного вида мРНК (напр., мРНК X, Y и Z) со временем d [X]/dt будет зависеть от взаимоотношения между скоростями, с которыми эти мРНК транскрибируются (Kt) и деградируют (Kd). В целом формула этого выражения динамики для мРНК X может быть написана как уравнение I:[I] d[X]/dt=Kt-Kd[X].
Сначала предположим, что мРНК X (обычно необходима на уровне 103 молекул на клетку, чтобы поддерживать эмбриональную физиологию) синтезируется с постоянной скоростью транскрипции Kt (Figure Ia). В этих условиях изменение в клеточной концентрации X мРНК со временем d [X]/dt будет диктоваться скоростью, с котрой X мРНК деградирует (Kd). Если с данного момента времени (t1), значение Kd повысилось (Figure Id), то ожидается существенное снижение уровней X мРНК в момент (t2), так что уровень X мРНК теперь ниже физиологического порога (серый четырехугольник). Если вместо этого Kd снизилось к моменту (t2) (Figure Ie), то может быть предсказано, что к (t2) уровниX мРНК д. повыситься выше физиологического предела. Это иллюстрирует, что достоверное изменение в концентрации X мРНК может быть достигнуто исключительно за счет модуляции Kd.

Figure I The roles of мРНК degradation on gene activity.
Во втором и родственных случаях др. вид мРНК (мРНК Y, кодирующая регуляторный белок) обычно экспрессируется на 'хорошо-контролируемых' низких уровнях (напр., 10 molecules/cell). Как и выше приведенном случае, если Y мРНК синтезируется с контрастирующей скоростью транскрипции Kt (Figure Ib), более высокие и более низкие значения Kd для Y mRNAs будут предсказывать или снижение (Figure If) или повышение (Figure Ig), соотв., уровней Y мРНК, так что они будут попадать вне физиологически переносимых уровней экспрессии у эмбриона (серые области). Однако принимая во внимание, что количества молекул здесь сильно уменьшены, следует ожидать, что возникающие в результате профили экспрессии Y мРНК будут боле подвержены действию 'шумов' и прямо отражать транскрипционные всплески продукции Y мРНК (стрелки in Figure If,g). Этот пример показывает, что отклонения от нормальных значений Kd могут вызывать существенные осцилляции в экспрессии мРНК, кодирующих регуляторные белки, обычно экспрессируемых на хорошо контролируемых низких уровнях.
Третий пример рассматривает случай, в котором нормальная экспрессия мРНК (напр., мРНК Z, кодирующей секреторный белок, используемый в формировании эмбрионального паттерна) достоверно увеличивается в ответ на сигнал, определяемый клетками посредством активации транскрипции (головки стрелок, Figure Ic). В этом случае скорость индукции для Z мРНК (IZ(t1-t2) = [Z]t2/[Z]t1) будет достоверно ниже, если значения Kd будут выше, чем обычно (Figure Ih), тогда как уровни индукции будут аномально высокими, если значения Kd слишком низкие (Figure Ii). Принимая во внимание предполагаемую онтогенетическую роль гена Z, достоверные изменения уровней его экспрессии, исключительно обусловленные модуляциями в скорости деградации, скорее всего, буду мешать нормальному эмбриональному развитию.


Др. пример белка RBP с предпочтительной ролью в контроле деградации РНК у Drosophila Smaug (SMG), первоначально идентифицированного по его роли в репрессии трансляции на формирование паттерна в задней части гена nanos (nos) [39]. SMG соединяется с двумя цис-регуляторными two элементами в 3'UTR nos мРНК, формируя стебель-петля (stem-loop) структуры и подчеркивая свойства, характерные для большинства RBPs: специфичность взаимодействия с мишенью зависит как от первичной последовательности, так и вторичных структурных свойств [39]. SMG, как было установлено позднее, отвечает за контроль стабильности Hsp83 мРНК путем рекрутирования deadenylase комплекса CCR4/POP2/NOT [14] (Figure 1).
Помимо упомянутых выше, некоторые др. цис-регуляторные элементы связаны с контролем деградации РНК. Сюда входят U-rich, CU-rich, GC-rich, poly(C), CA-rich и GU-rich (GRE) элементы [38,40], которые регулируются с помощью широкого круга RBPs. Это разнообразие цис-регуляторных элементов деградации мРНК указывает на сложный регуляторный ландшафт контроля паттернов деградации мРНК в клетках.
miRNAs маленькие (~ 22-mer) некодирующие РНК, которые способны регулировать экспрессию мРНК путем комплементарного соединения с последовательностями мишени в 3'UTRs мРНК. Они [41,42,43,44,45] сегодня рассматриваются как ключевые регуляторы многих генов у большинства метазоа [46,47,48].
Хотя miRNAs первоначально рассматривались как регулирующие экспрессию генов мишеней преимущественно путем репрессии трансляции, не влияя на уровни мРНК , но недавние эксперименты показали, что большинство регуляторных эффектов на гены мишени являются результатом индукции деградации мРНК [19,48,49,50,51]. Это указывает на то, что остается возможность, что эффекты на распад мРНК являются результатом ранней задержки инициации трансляции, что затем ведет к быстрой деградации мРНК [19]. Согласно современной точке зрения микроРНК вызывают деградацию мишеней, направляя мРНК на 5'-3' мРНК разложение с использованием инициального деаденилирования мРНК посредством CCR4/POP2/NOT комплекса [4], сопровождаемое удалением шапочки с помощью DCP2 [19] (или Nudt16 [52]) и финальной деградацией РНК с помощью 5'-3' exonuclease Xrn1 (Figure 1). Чтобы происходило активное взаимодействие с мРНК мишенью, miRNAs должны быть загружены на рибонуклеопротеиновые комплексы, наз. miRISCs, которые включают Argonaute (AGO) и GW182 белки [53]. мРНК мишени, как и многие из молекулярных составляющих miRISCs, концентрируются в цитоплазматических фокусах. наз. P тельцами, которые могут действовать как места хранения или деградации мРНК мишеней [53,54,55]. Разумно предположить, что прирожденная сложность биогенеза miRNA и механизмы взаимодействия между miRNAs и мРНК мишенями обладают множественными возможностями для модуляций. В самом деле, при определенных средовых условиях, miRNA-обеспечиваемая регуляция может быть устранена или даже обращена в противоположное направление [53,56,57] и поэтому специфические факторы, как было установлено, необходимы для функционирования разных видов miRNA [53,58,59].
Недавно др. класс малых РНК, piRNAs, как было установлено, контролирует паттерны деградации РНК у Drosophila; piRNAs, как известно, участвуют в репрессии мобильных элементов прежде всего в зародышевой линии. Неожиданно, искусственное снижение piRNAs у ранних эмбрионов Drosophila влияло на деаденилирование и деградацию nanos (nos) мРНК [60], демонстрируя, что малые РНК помимо miRNAs являются активными регуляторами деградации мРНК.

mRNA degradation control via miRNA-RBP combinatorial regulation


Учитывая, что сложные и динамические смеси complex miRNAs и RBPs ассоциируют с большинством мРНК, разумно предположить, что эти два типа регуляторов РНК взаимодействуют др. с др. и, что исходом таких взаимодействий буду паттерны деградации мРНК мишеней. В самом деле, несколько примеров показывают, что RBPs могут снижать или усиливать эффекты miRNAs, возможно путем закрепления несоответствий и/или облегчения. Напр.. в клетках зародышевой линии человека dead end 1 (Dnd1) RBP уменьшает репрессию мРНК, кодирующих гены опухолевого супрессора p27, LATS2 и connexin-43, со стороны miR-221, miR-372 и miR-1, демонстрируя функциональное взаимодействие между RBP Dnd1 и miRNA регуляцией [57]. В др. случае, связывание RBP HuR с 3'UTR CAT1 мРНК в клетках человека снижает репрессирующие эффекты miR-122 на CAT1[56]. Более того, в моноцитарных лейкоцитах в условиях гипоксии RBP hnRNP L модулирует репрессивную функцию miR-297 и miR-299 на мРНК , кодирующую VEGFA (критический регулятор ангиогенеза), запуская ряд событий, участвующих в васкуляризации опухолей [61] и подтверждая, что RBPs могут противостоять воздействию miRNA. В др. случаях RBPs могут в действительности усиливать регуляцию с помощью miRNA. Напр., у C. elegans, TRIM-NHL белок NHL-2 усиливает обеспечиваемую с помощью miRNA репрессию мРНК мишеней, включая hbl-1, let-60/Ras и cog-1, которые являются ключевыми онтогенетическими генами, участвующими в спецификации судеб клеток личинок, развитии вульвы и спецификации судеб нервных клеток. соотв. [58]. В клетках млекопитающих Pumilio RBPs PUM1 и PUM2 способствуют регуляторным эффектам miR-221/miR-222 на p27 мРНК путем индукции конформационного изменения 3'UTR последовательности p27 мРНК, так что она экспозирует последовательности мишени для miR-221/222 [62]. Эти взаимодействия значительны, учитывая, что подавление p27 с помощью miR-221/222 важно для пролиферации клеток и может выполнять центральную роль в развитии рака. Хотя в этом случае miR-221/222, по-видимому, влияют на экспрессию p27 в основном посредством репрессии трансляции (вообще-то не оказывая существенных эффектов на стабильность мРНК), этот пример иллюстрирует важность физических взаимодействий между RBPs и miRNAs для достижения эффективной регуляции генов [62]. Наконец, компьютерный анализ последовательностей 3'UTR показывает, что связывающие последовательности для Pumilio-Fem-3-binding factor (PUF) RBPs концентрируются вблизи сайтов связывания miRNA и что специфические сайты связывания miRNA концентрируются в 3'UTRs экспериментально установленных PUF мишеней, подтверждая широко распространенные взаимодействия PUF белков человека с регуляторными miRNA системами [63]. Регуляторные взаимодействия между miRNAs и RBPs, следовательно, являются ключевыми в детерминации уровня экспрессии данной мРНК путем модуляции скорости деградации РНК (Figure 2).

Figure 2. Interactions between cis-regulatory elements and RNA trans-regulators determine mRNA degradation rates during development. (a) A typical mRNA molecule is shown, including its 5? untranslated region (UTR), coding sequence (CDS) and 3?UTR; the latter including two alternative polyadenylation (APA) sites (PAS1 and PAS2; blue) and a series of cis-regulatory elements recognised by miRNA? (red) and RNA-binding protein ? (RBP?; purple). In a given tissue, and assuming constant transcriptional activity, the absence of miRNA? and RBP? determines that this mRNA is stable, as it shows no appreciable change in expression level between time 1 (t1) and time 2 (t2) (see graph). (b) Expression of miRNA? (as from t1) leads to miRNA?–mRNA interactions via cis-regulatory modules within the 3?UTR (red) of the transcript; these interactions trigger a detectable reduction in target level at (t2) (i.e. 80%; see graph). (c) Expression of RBP? (as from t1) leads to RBP?–mRNA interactions via cis-regulatory modules within the 3?UTR (purple) of the transcript. These interactions promote mRNA degradation so that a significant reduction in mRNA level is observed at (t2) (i.e. 60%; see graph). (d) The combined expression of miRNA? and RBP? (as from t1) results in a synergic effect on mRNA levels so that levels of mRNA are reduced to just 10% of those detected in the absence of mRNA regulators. (e) The use of a the proximal polyadenylation site (PAS1) instead of the distal one (PAS2) via APA produces a different type of mRNA transcript lacking many of the cis-regulatory sequences detected by miRNA? and RBP?, thus leading to differential interactions between miRNA?, RBP? and the mRNA target. Owing to this change, the effects on target degradation at (t2) are less pronounced (50% vs 10%). See the main text for specific examples of this type of interaction in different developmental contexts.

A cis-regulatory 'degradation code' controls мРНК degradation


Цис-регуляторные мотивы, участвующие в контроле деградации РНК обладают несколькими отличающимися свойствами. Во-первых, состав первичных последовательностей в мотивах деградации, по-видимому, играет менее важную роль в определении специфичности, по сравнению со случаями регуляции транскрипции. Вместо этого существует интеграция состава первичных последовательностей и локальной укладки РНК, которая в конечном итоге предопределяет потенциальную регуляторную роль цис-регуляторных элементов, контролирующих деградацию мРНК [64]. Высшего порядка топологические конфигурации мРНК молекулы также играют роль в спецификации цис-регуляторных моделей. Недавний вычислительный подход с целью определения функциональных элементов, влияющих на эволюцию 3'UTR последовательности Hox гена в 12 геномах Drosophila, подчеркнул, что специфические 3'UTR мотивы предсказуемо обладают разным регуляторным потенциалом с соответствии со вторичной структурой, принимаемой в целом 3'UTR [65]. Во-вторых, цис-регуляторные последовательности, контролирующие паттерны деградации РНК, могут варьировать во время развития (Figure 2). Вычислительные исследования показали, что высокая пропорция мРНК позвоночных (напр., по крайней мере 50% генов человека) , подвергающихся альтернативному полиаденилированию (APA), дает транскрипты с разными последовательностями 3'UTR [66]. Кроме того, эксперименты с использованием клеток млекопитающих в культуре показали. что клетки во время активной пролиферации экспрессируют мРНК в общем-то с более короткими 3'UTRs, чем те, что продуцируются в стационарных условиях, подчеркивая потенциальное значение процессинга 3'UTR для биологии живых клеток [67]. Более того, недавнее исследование продемонстрировало, что во время развития Drosophila мРНК, кодирующие 4 Нох белка, подвергаются процессу APA, приводящему к продукции мРНК, имеющими существенно отличающиеся наборы сайтов мишеней для miRNA [68]; эта работа также показала, что репортерные конструкции, включающие разные Hox 3'UTR последовательности, определяемые с помощью APA, обнаруживают дифференциальные паттерны экспрессии, демонстрируя биологическое значение Hox APA in vivo[68]. Наконец, недавнее исследование на C. elegans показало, что процессинг 3'UTR необходим для нормальных синапсов и развития аксонов [69]. Т.о., хотя онтогенетические роли вариаций 3'UTR остаются в основном не исследованными, имеющиеся данные строго указывают, что ген- и онтогенез-специфические альтерации последовательностей 3'UTR, скорее всего, имеют значение для регуляции генов, т.к. они обеспечивают изменчивость в контрольных регионах, обнаруживаемых с помощью РНК регуляторов [68,70].

Figure 3. The role of RNA degradation during developmental transitions. (a) An illustration of a developmental transition (DT) from an initial stage (S1) to a later stage (S2). (b,c) Depending on the identity and expression level of RNA-binding proteins (RBPs) and miRNAs (green) and the cis-regulatory elements present in the mRNA at S1 and S2, a course of RNA degradation is determined so that certain mRNAs are stable (e.g. mRNA1), others are degraded only up to the developmental transition (e.g. mRNA2), others are degraded only after the transition (e.g. mRNA4) and another group is degraded before and after the transition but at specific rates in each case (e.g. mRNA3). A specific example of developmental transition is provided by the maternal-to-zygotic transition (MZT) affecting early development in most animal embryos. During the MTZ, mRNA levels cease to be controlled by maternally encoded factors and become regulated by the factors expressed by the zygotic genome. Experiments in a wide spectrum of animal systems have established that mRNA degradation is at the core of the MZT (see main text for further details).

Figure 4. The role of RNA degradation during developmental patterning and differentiation. The figure describes the general impact that mRNA degradation can have on developmental patterning and differentiation. Despite uniform transcriptional patterns for the developmental gene X across the field of cells C1–C10, cell-specific expression levels of miRNAs (light grey) and RNA-binding proteins (RBPs, dark grey) lead to differential expression levels of X mRNAs within this cellular field (red). Thus, the differential degradation of X mRNAs by miRNAs and RBPs determines that only a subset of cells express sufficient X mRNA to trigger cell differentiation (i.e. C2, C3 and C10, red).

Итак, специфические скорости деградации РНК, касающиеся данной мРНК в специфическом клеточном пространственно-временном контексте диктуются природой физических контактов между специфическими RBPs и малыми РНК (ко-экспрессирующихся в этих определенных клетках) с цис-регуляторными мотивами, присутствующими в мРНК мишенях в данный момент времени (Figure 2). Следовательно, качественные особенности и распределение цис-регуляторных мотивов в каждой из молекул мРНК обеспечивает код транскрипта (code-script) или 'код деградации РНК', в котором зашифрован паттерн будущей деградации этой мРНК. Преобладание APA событий [66] , затрагивающих 3'UTR регуляторные последовательности, подтверждает, что эти мотивы цис-регуляторной деградации базируются как на композиции последовательностей, так и локальной укладке РНК и тканеспецифическом распределении транс-регуляторов РНК в развивающихся эмбрионах [71,72,73,74] , это подтверждает, что кодирующая способность кода деградации РНК высока и приводит к разным исходам деградации в соответствии с временными и пространственными сигналами в развивающемся организме.

The role of RNA degradation during animal development


До какой степени дифференциальная регуляция генов, обеспечиваемая за счет модуляций деградации мРНК, быть связана со специфическими процессами развития? На ум приходят два сценария. Первый связан с временными изменениями в онтогенетических программах, осуществляемых внутри клетки или одновременно в больших популяциях клеток (Figure 3). Примером такого типа процесса является maternal-to-zygotic transition (MZT), переживаемый большинством животных во время раннего эмбриогенеза, во время которого клетки раннего эмбриона изменяются так, что больше не контролируются матерински закодированными продуктами (т.e. РНК и белками) , а начинают управляться генными продуктами, происходящими из зиготического генома [75]. Др. контекстом является то, что одна из дифференциальных деградаций мРНК ведет к формированию молекулярного паттерна (Figure 4). В этом случае скорость деградации РНК для данной мРНК модулируется поперек поля клеток так, что в целом результатом генной экспрессии (и функции) будет неуниформное или структуированное распределение.

RNA degradation during developmental switches and transitions


Контроль уровней мРНК является критическим для переходов от одной программы развития к др. Типичным примером такого перехода является MZT: во время этого изменения 'старая' генетическая программа (глобально кодируемая матерью продуцируемыми продуктами) должно быть стерта и замещена новым набором инструкций, поскольку клетки раннего эмбриона несут онтогенетический комплекс программ дифференцировки и поведения (Figure 3). Эксперименты, исследующие контроль MZT у эмбрионов позвоночных и беспозвоночных демонстрируют, что деградация мРНК является сутью этого процесса. У Drosophila, два аппарата деградации мРНК, отличающиеся генетическим происхождением, конвергируют, чтобы удалять матерью продуцируемые транскрипты из раннего эмбриона. Во-первых, материнский аппарат, которые согласно своему имени состоит из факторов, кодируемых матерью, инициирует деградацию матерью поставляемых мРНК, в ответ на активацию яйца (механически индуцируемый молекулярный процесс, который подготавливает ооцит к эмбриогенезу) [2,76] Вскоре после этого др. система деградации мРНК (зиготический аппарат) собирается из генных продуктов, кодируемых зиготическим геномом и приходит в действие, чтобы воздействовать на мРНК как материнского, так и зиготического происхождения. Состав обоих аппаратов деградации мРНК остается в основном неизвестным, хотя ключевые компоненты были идентифицированы в обеих системах (Figure 3). Среди материнских компонентов, напр., RBPs SMG и BSF, как известно, играющие критическую роль во время деградации мРНК [77]. Относительно зиготических элементов, субнабор miRNAs, как было установлено, направляет на деградацию материнские мРНК, является частью зиготического пути деградации [78]. Как отмечалось выше, недавние работы по системе nos продемонстрировали, что piRNAs также участвуют в деаденилировании и деградации материнских мРНК [60], указывая, что piRNAs действуют совместно с SMG , чтобы рекрутировать комплекс деаденилирования CCR4 на избранные мишени мРНК и способствовать их деградации. Несколько геномных исследований вместо этого использовали биологически важный контекст Drosophila MZT, чтобы исследовать механизмы, лежащие в основе деградации мРНК. Напр., сравнение динамики транскриптома у ранних эмбрионов Drosophila и в неоплодотворенных яйцеклетках, что позволило разделить материнские и зиготические процессы и установить специфические тенденции в паттернах деградации мРНК, как диктуемые материнскими и зиготическими компонентами, также выявили связь между паттернами локализации мРНК, скоростями трансляции и оборотом белка [2].
Взаимодействие аппаратов деградации материнской и зиготической мРНК контролирует ранний эмбриогенез не только у Drosophila, но и также среди Bilateria [75,79]. У лягушки Xenopus laevis , напр., материнский RBP Eden-BP, как было установлено, находит субнабор материнских мРНК, индуцирует деаденилирование и деградацию мРНК (а также репрессию трансляции) [80]. Кроме того, некоторые семейства miRNA, как было установлено, участвуют в связанной с MZT деградации мРНК у Xenopus и рыбок данио, включая miR-430 [81,82]. Интересно, что сравнение эффектов Drosophila miR-309 и miR-430 рыбок данио подтвердило их роли во время MZT, это представляет собой случай конвергентной эволюции [78,79]. Хотя примеры из систем млекопитающих пока отсутствуют, но очень возможно, что miRNAs (также как и RBPs) участвуют в MZT млекопитающих.
Хотя MZT прекрасно иллюстрирует роль деградации РНК во время ключевого онтогенетического перехода, др. примеры столь же важны. Сюда входят события гормонально регулируемого ремоделирования ткани, такие как те, что затрагивают молочные железы или имагинальные диски дрозофилы и более обобщенно дифференцировку нормальных и аномальных типов клеток из состояний клеточных предшественников, как иллюстрируется дифференцировкой стволовых клеток и возникновением рака, соотв. Во всех случаях существует общая необходимость стирания существующего транскриптома и замещения его путеводным построением и поведением нового клеточного состояния.

The role of мРНК degradation during developmental patterning


Во время развития асимметрично распределенные детерминанты, также как и индуктивные процессы, базирующиеся на межклеточных коммуникациях, ведут к становлению паттернов дифференциальной экспрессии генов. В какой степени регуляция деградации мРНК вносит вклад в генерацию пространственных паттернов мРНК? Drosophila предоставляет отличный пример того, как дифференциальная экспрессия генов ведет к формированию морфологических признаков, обнаруживаемых в специфических позициях вдоль оси голова-хвост эмбриона. При этом асимметричное распределение продуктов материнских генов закладывает основные координаты для инициации 'каскада сегментации', который участвует в прогрессивной временной активации серий классов генов, включая gap, pair-rule и сегментной полярности гены [83]. мРНК для некоторых генов сегментации подвергается регулируемой деградации мРНК во время раннего эмбриогенеза Drosophila. Среди материнских генов, напр., bicoid мРНК испытывает регулируемый паттерн деградации: bicoid мРНК стабильна во время первых 2-х ч эмбриогенеза, но стремительно деградирует между 2-3 ч после оплодотворения (период полужизни ~30 мин). Эксперименты с использованием химерных мРНК показали, что принципиальный цис-регуляторный элемент, обеспечивающий деградации bicoid мРНК, расположен в bicoid 3'UTR [84]. В классе pair-rule генов паттерн мРНК в виде семи полос fushi-tarazu (ftz) возникает благодаря комбинации репрессии транскрипции и деградации мРНК [85]. Более того, период полужизни ftz мРНК изменяется с приблизительно 14 мин во время раннего клеточного цикла 13 до приблизительно 7 мин во время последующего клеточного цикла 14, тогда как в тот же самый период развития др. 12 poly-A+ мРНК имеют период полужизни более 40 мин, демонстрируя, что деградации ftz мРНК находится под специфической регуляцией [85]. В самом деле, последующее делеционное картирование выявило существование двух дестабилизирующих элементов внутри ftz мРНК [86]. Было бы интересно установить в какой степени цис-регуляторные элементы, которые предопределяют паттерны деградации bicoid и ftz мРНК, перекрывают паттерны специфических мотивов мишеней для RBPs и miRNAs [87].
В противоположность одновременному формированию паттерна голова-хвост, переживаемому эмбрионами Drosophila, формирование паттерна у позвоночных прогрессирует во времени и пространстве, разворачиваясь постепенно с передних к задним регионам животного. Такого типа развитие нуждается в точной пространственно-временной координации дифференцировки ткани. В значительной степени такая координация обеспечивается градиентом передачи сигналов fibroblast growth factor (FGF), в особенности касательно распределения FGF8, который регулирует процесс сегментации пресомитной мезодермы [88] и начало дифференцировки нервной трубки [89]. Отметим, что эксперименты на эмбрионах кур демонстрируют, что градиент FGF8, который связан с аксиальной элонгацией при формировании паттерна, не является результатом активной транскрипции, а вместо этого результатом регулируемой деградации мРНК, транскрибируемой на уровне предшественников хвостовой почки: экспрессия fgf8 мРНК в задних тканях поддерживается и распределяется в виде градиента после инкубации с ингибитором транскрипции actinomycin-D [90]. Дифференциальная деградация мРНК также играет роль во время спецификации клонов у эмбрионов рыбок данио: miR-430 воздействует на 3'UTR nanos1, чтобы вызывать деградацию мРНК (и репрессировать трансляцию) в соматических клетках; так, цис-регуляторные элементы, присутствующие в nanos1 3'UTR, защищают экспрессию nanos1 в примордиальных зародышевых клетках (PGC), обходя miRNA-обеспечиваемую репрессию и указывают на то, что дифференциальные мРНК регуляторные события, контролируемые с помощью miR-430 в соматических клетках и PGCs. вносят вклад в специфическую для зародышевой линии экспрессию генов [91]. В общем, эта работа установила, что miRNAs могут быть эффективными регуляторами мРНК мишеней в одной ткани (соматические клетки), но не в др. (PGCs), подразумевая, что регуляция мРНК с помощью miRNAs является обусловленной для тканеспецифических факторов, это расширяет возможности клетко- и тканеспецифической регуляции экспрессии генов во время развития.
Такой тканеспецифический контроль деградации мРНК может зависеть от существования специфических RBPs и miRNAs (Figure 4) или обеспечиваться за счет дифференциальных сигнальных процессов, затрагивающих определенные ткани, но не др.; относительно последних мало известно о молекулярных механизмах, которые связываю передачу эмбриональных сигналов с регуляцией деградации мРНК. Несмотря на это, эксперименты на клеточных культурах позволяют предположить, как это могло бы происходить при физиологически подходящих условиях в развивающемся эмбрионе. Напр., недавняя работа на клетках человека показала, что деградация мРНК, контролируемая с помощью RBP tristetraprolin (TTP), репрессируется с помощью p38 mitogen-activated protein kinase (MAPK)-активируемой киназы MK2 благодаря неспособности фосфорилированного TTP рекрутировать деаденилазы на мРНК мишени [92]. Удивительно, эксперименты на Drosophila показали, что decapentaplegic (Dpp) и Fat-Hippo пути действуют сочетанно, приводя к активации транскрипции микроРНК bantam (ban) , способствующей росту органов. Это указывает на то, что комбинация сигнальных событий может запускать специфические паттерны деградации мРНК (и трансляции) путем регуляции специфических регуляторов мРНК, таких как ban[93].

Concluding remarks


In this review, I focused on the process of мРНК degradation and the ways in which variation in мРНК degradation rates relates to differential gene regulation during animal development. Current understanding of the molecular mechanisms underlying мРНК degradation suggests that the specific degradation rates experienced by individual мРНК transcripts in the embryo are, by and large, encoded within the message itself in the form of cis-regulatory elements bearing specific primary sequence elements and/or characteristic secondary structure motifs. The majority of such cis-regulatory sequences appear to be located within 3'UTRs. For cis-regulatory activity to emerge in the form of a specific мРНК degradation pattern adopted by the target mRNA, such regulatory elements must be bound to RNA regulators, including RBPs and/or miRNA-containing complexes. Based on the large number of RBPs and miRNAs encoded in metazoan genomes and examples showing that the effects of RNA regulators on target mRNAs depend on homotypic and heterotypic interactions between RBPs and miRNAs, I suggest the existence of a combinatorial ‘mRNA degradation code’ with high information capacity. Events at the local cellular level, involving мРНК processing of 3'UTRs modifying мРНК visibility to miRNAs and RBPs, and activation of specific signalling pathways that impact on RBP and miRNA activities, are predicted to expand the capacity of the мРНК degradation code even further, coupling it to dynamic events experienced by cells within specific spatiotemporal coordinates within the developing embryo. Given that the developmental distribution of many RBPs and miRNAs is non-uniform, and that their activities on мРНК substrates are needed during critical developmental transitions and in developmental patterning, I suggest that the roles of мРНК degradation during animal development are much more pervasive than originally thought. The mapping and quantitative analysis of мРНК sequences so as to expose the logical arrangements of cis-regulatory motifs encoding degradation rates, the elucidation of the molecular mechanisms that link the binding of particular RNA degradation factors to specific мРНК degradation outcomes, together with fine-grain expression analyses of RNA regulators during development, emerge as some of the natural experimental routes needed to achieve a better understanding of the roles of мРНК degradation during animal development.
Сайт создан в системе uCoz