Посещений:
МОЗЖЕЧОК

Спецификация Субтипов Нейронов

Neuronal subtype specification in the cerebellum and dorsal hindbrain
Mikio Hoshino
Development, Growth & Differentiation Special Issue: Neural Development Edited by T. Miyata. Volume 54, Issue 3, pages 317–326, April 2012

In the nervous system, there are hundreds to thousands of neuronal cell types that have morphologically, physiologically, and histochemically different characteristics and this diversity may enable us to elicit higher brain function. A better understanding of the molecular machinery by which neuron subtype specification occurs is thus one of the most important issues in brain science. The dorsal hindbrain, including the cerebellum, is a good model system to study this issue because a variety of types of neurons are produced from this region. Recently developed genetic lineage-tracing methods in addition to gene-transfer technologies have clarified a fate map of neurons produced from the dorsal hindbrain and accelerated our understanding of the molecular machinery of neuronal subtype specification in the nervous system.


Рисунки к статье.


Дорсальная часть заднего мозга или алярная пластинка заднего мозга, представляет собой прекрасную модельную систему для исследования молекулярного аппарата для спецификации подтипов нейронов, а также множество разных типов нейронов, генерируемых из этой области. У млекопитающих и птиц задний мозг состоит из 8 ромбомеров (r1-r8). Предыдущие исследования по трансплантациям, а также детальные уточняющие анатомические исследования показали, что алярная пластинка r1 продуцирует все нейроны мозжечка, алярная пластинка средней части заднего мозга (r2-r5) генерирует нейроны кохлеарного ядра, а алярная пластинка каудальной части заднего мозга (r6-r8) продуцирует предмозжечковые нейроны, хотя и существуют некоторые незначительные отличия между грызунами и птицами (Altman & Bayer 1987; Tan & Le Douarin 1991; Cambronero & Puelles 2000; Cramer et al. 2000; Farago et al. 2006). Более того, недавно разработанные методы отслеживания клонов в дополнение к технологиям по переносу генов прояснили карту судеб нейронов, продуцируемых дорсальной частью заднего мозга и ускорили наше понимание молекулярного аппарата спецификации подтипов нейронов в дорсальной части заднего мозга.

Neuron subtype specification in the cerebellum


Имеются три основных региона в мозжечке: кора, белое вещество и ядра. Кора мозжечка включает несколько типов глютаматергических возбуждающих и GABAergic ингибирующих волокон. Глютаматергические нейроны представлены гранулярными клетками и unipolar brush cells (UBCs), тогда как GABAergic популяция включает клетки Purkinje, Golgi, Lugaro, звездчатые, корзинкообразные (basket) и подсвечникобразные (candelabrum). Cerebellar nuclei (CN) представлены тремя основными типами нейронов: нейроны с крупными глютаматергическими проекциями (CN-Glu neurons), нейроны со среднего размера GABAergic ингибирующими проекциями (CN-GABA-ION neurons) и маленькие GABAergic интернейроны (CN-GABA interneurons). CN-GABA-ION нейроны простирают свои аксоны в нижние ядра олив (inferior olivary nucleus (ION)) (Carletti & Rossi 2008), тогда как CN-Glu нейроны посылают свои аксоны в ядра вне мозжечка, включая красное ядро и талямус. Эти нейроны взаимно регулируют активность др. др., чтобы собственно обеспечить функцию мозжечка.
Во время развития нейроэпителий алярной пластинки ромбомера 1 (r1) генерирует все типы нейронов мозжечка (Millet et al. 1996; Wingate & Hatten 1999; Chizhikov & Millen 2003; Zervas et al. 2004). Наиболее дорсальная часть нейроэпителия, верхняя (roof) пластинка, из r1 не генерирует нейроны, но продуцирует клетки хороидного сплетения (Chizhikov et al. 2006). Нейроэпителий, продуцирующий нейроны мозжечка может быть подразделен на два региона; rhombic lip (RL) и ventricular zone (VZ). Эти два региона могут быть морфологически различены по локализации на их границе notch.
Хотя исследования мозжечка имеют очень длинную историю (Cajal 1909), молекулярный аппарат, посредством которого происходит спецификация подтипов нейронов, всё ещё неясен. В 1997, Ben-Arie et al. сообщили, что basic-helix-loop-helix типа (bHLH) транскрипционный фактор, Atoh1 (также наз. Math1), экспрессируется в ромбической губе и участвует в генерации гранулярных клеток мозжечка (Ben-Arie et al. 1997). В то время верили, что только гранулярные клетки генерируются из ромбической губы, тогда как остальные нейроны продуцируются из VZ мозжечка. Хотя некоторые исследования прояснили способ спецификации гранулярных клеток, как развиваются др. типы нейронов мозжечка остается неясным до сих пор.
Во время генерации некоторых трансгенных мышей, наша группа получила мутантную линию "cerebelless", в которой гомозиготы обладали нескоординированными передвижениями, атактической походкой и тремором. Удивительно, взрослые мыши оказались лишены полностью коры мозжечка. У этих мутантов отсутствовали GABAergic ингибирующие нейроны, продуцируемые обычно зачатком мозжечка. Напротив, популяции glutamatergic нейронов первоначально генерировались, но glutamatergic гранулярные клетки вторично терялись на постнатальных стадиях. В конечном итоге вся кора мозжечка терялась у этих мутантов (Hoshino et al. 2005). Был идентифицирован чувствительный ген, pancreatic transcription factor 1a (Ptf1a), bHLH транскрипционный фактор, известный свои участем в развитии поджелудочной железы. Этот ген экспрессируется в нейроэпителии VZ, но не в RL и его экспрессия теряется у мутантов cerebelless. Анализ отслеживания клонов с помощью Cre-loxP рекомбинации показал, что большинство типов GABAergic нейронов мозжечка (Purkinje, Golgi, basket, stellate клетки и GABAergic нейроны в CN) происходят из нейроэпителиальных клеток, экспрессирующих Ptf1a в VZ, но glutamatergic нейроны, такие как гранулярные клетки и CN-Glu нейроны, нет. Потеря экспрессии Ptf1a у cerebelless также как и у Ptf1a-нокаутных мышей приводила к подавлению продукции GABAergic нейронов в зачатке мозжечка. Более того, эктопическое введение Ptf1a посредством in utero электропортации приводило к аномальной продукции нейронов с GABAergic характеристиками в дорсальной части телэнцефалона: дорсальная часть телэнцефалона продуцирует только glutamatergic нейроны в обычных условиях. Кроме того, Pascual et al. (2007) сообщили, что у Ptf1a-нулевых мутантов судьба нейронов, продуцируемых из VZ, изменяется так, что они становятся гранулярными клетками. Более того, недавнее исследование по генетическому картированию судеб с использованием Ascl1CreER knock-in мышей, показало, что др. GABAergic нейроны мозжечка, такие как клетки Lugaro и candelabrum, также происходят из VZ мозжечка (Sudarov et al. 2011). Эти наблюдения подтвердили, что Ptf1a, экспрессируемый в VZ мозжечка, детерминирует судьбы GABAergic нейронов с мозжечке. PTF1A был также идентифицирован в качестве причинного гена болезни человека, которая характеризуется постоянным диабетом mellitus новорожденных и агенезом мозжечка (Sellick et al. 2004).
Сразу же после нашего сообщения группы Zoghbi's и Fishell's сообщили о молекулярном картировании судеб производных нейроэпителиальных клеток, экспрессирующих Atoh1 в RL мозжечка (Machold & Fishell 2005; Wang et al. 2005). Они показали, что не только гранулярные клетки, но и также, по крайней мере, некоторые DCN нейроны происходят из RL, хотя они не делали различия между типами нейронов в CN. В их исследованиях RL-производные нейроны CN, как было установлено, нарушаются у мутантов Atoh1. Поскольку GABAergic, но не glutamatergic CN нейроны были производными Ptf1a-экспрессирующих нейроэпителиальных клеток в VZ (Hoshino et al. 2005), то это указывает на то, что glutamatergic нейроны мозжечка такие как гранулярные клетки и CN-Glu нейроны происходят из RL. Соотв., однополярные brush клетки, которые являются glutamatergic, также, как было установлено, возникают из RL (Englund et al. 2006).
Итак, эти исследования указывают на присутствие двух молекулярно предопределенных нейроэпителиальных областей в мозжечке, Atoh1-экспрессирующей RL и Ptf1a-экспрессирующей VZ, которые генерируют glutamatergic и GABAergic нейроны, соотв. Определенный bHLH транскрипционный фактор, участвует в продукции соотв. нейронального подтипа в мозжечке. Эти факты подтверждают модель, согласно которой регионализация нейроэпителия мозжечка на два самостоятельных региона, VZ и RL, обеспечивается двумя bHLH транскрипционными факторами, Atoh1 и Ptf1a (Hoshino 2006). Во время эмбрионального развития вентральная часть нейроэпителия мозжечка экспрессирует Ptf1a, наделяя VZ характеристиками мозжечок и способностью генерировать GABAergic нейроны, тогда как дорсальная часть нейроэпителия мозжечка экспрессирует Atoh1 и становится RL мозжечка, продуцируя glutamatergic нейроны. В телэнцефалоне происходит сходная регионализация с помощью bHLH транскрипционных факторов. Glutamatergic нейроны возникают из дорсального нейроэпителия, экспрессирующего Neurogenin 1/2 (Ngn 1/2), а GABAergic нейроны продуцируются из вентрального нейроэпителия, экспрессирующего Ascl1 (также наз. Mash1) (Wilson & Rubenstein 2000).
Как формируются эти области нейроэпителия? В целом roof пластинка может влиять на дорсальные структуры нервной трубки (Lee et al. 2000; Millonig et al. 2000). Chizhikov et al. (2006) установили, что roof пластинка играет важную роль в формировании дорсо-вентрального домена мозжечка путем анализа мутантных мозжечков, которые лишены roof пластинки. Более того, было установлено, что bone morphogenetic proteins (BMPs) , секретируемый roof пластинкой, а также передача сигналов Notch участвуют в формировании RL и VZ (Machold et al. 2007). Исследования in vitro показали, что индуцируемые из ES клеток клетки Пуркинье, которые лишены передачи сигналов sonic hedgehog, могут предоставлять дорсо-вентральную пространственную информацию о VZ мозжечка в нейроэпителий мозжечка, это в конечном счете приводит к экспрессии Ptf1a (Muguruma et al. 2010).
Хот и получены некоторые разъяснения относительно аппарата, управляющего спецификацией подтипов GABAergic и glutamatergic нейронов с помощью транскрипционных факторов, молекулярные механизмы спецификации каждого подтипа GABAergic (e.g. Purkinje, Golgi, basket, stellate cells и CN-ION, CN-interneurons) или glutamatergic (e.g. granule, unipolar brush cells and CN-Glu neurons) нейронов остается неизвестной. Исследования с использованием 3H-thymidine и BrdU (Chan-Palay et al. 1977; Batini et al. 1992; De Zeeuw & Berrebi 1995; Sultan et al. 2003; Leto et al. 2006) , а также аденовируса (Hashimoto & Mikoshiba 2003) выявили, что каждый тип нейронов генерируется на определенных стадиях онтогенеза.
Относительно GABAergic нейронов, клетки Пуркинье продуцируются рано (embryonic day (E) 10.5-13.5 у мышей), Golgi клетки несколько позднее (E13.5-postonatal day (P) 0) , а stellate/basket клетки в основном перинатально. Новейшие исследования Sudarov et al. показали, что candelabrum клетки генерируются около P0, тогда как GABAergic CN нейроны возникают на ранних стадиях (E10.5-11.5). Относительно glutamatergic нейронов в дополнение к приведенным выше исследованиям базирующимся на молекулах отлеживание клонов (Machold & Fishell 2005; Wang et al. 2005; Englund et al. 2006) прояснило, что CN-Glu нейроны покидают RL мозжечка на ранних стадиях (E10.5-12.5), а гранулярные клетки и однополярные brush клетки в середине поздней стадии (гранулярные клетки; ~ E12.5 - perinatal, ubc: приблизительно E12.5-E18.5). Кроме того, клональный анализ, базирующийся на соматической рекомбинации подтвердил, что Purkinje, Golgi и basket/stellate клетки, а также некоторые CN нейроны (возможно GABAergic) относятся к одному и тому же клону (Mathis et al. 1997; Mathis & Nicolas 2003). Эти данные указывают, что некоторая временная информация в нейроэпителии может быть использована для спецификации типов нейронов в RL и VZ, соотв. Однако лежащие в основе молекулярные механизмы ещё не установлены.
Некоторые ученые предприняли попытки разделить структуру зачатка мозжечка на несколько доменов (Fig. 1). Chizhikov et al. (2006) выявили 4 клеточные популяции (обозначены c1-c4 доменами) в зачатке мозжечка благодаря экспрессии немногих транскрипционных факторов. Домен c1 соответствует Atoh1-экспрессирующей RL, а c2 располагается непосредственно выше Ptf1a-экспрессирующей VZ (обозначен pc2), указывая, что клетки c2 в основном состоят из GABAergic ингибирующих нейронов. Хотя c3 и c4 экспрессируют Lmx1a и Lhx1/5, соотв., их нейрональные подтипы всё ещё неизвестны. Эта доменовая структура нарушается, когда roof пластинка удалена (Chizhikov et al. 2006).Более того, на ранних стадиях нейрогенеза (e.g. E12.5 у мышей), Minaki et al. (2008) подразделили домен c2 на дорсально (c2d) и вентрально (c2v) расположенные субдомены, которые экспрессируют corl2 и Pax2, соотв. В то время как corl2 экспрессируется исключительно в незрелых и зрелых клетках Пуркинье (Minaki et al. 2008), Pax2 экспрессируется в GABAergic интернейронах (e.g. Golgi, stellate, basket, CN-GABA нейронах) в мозжечке (Maricich & Herrup 1999; Weisheit et al. 2006). Они также подразделили Ptf1a-экспрессирующий нейроэпителиальный домен (pc2) на pc2d и pc2v, которые сильно и слабо экспрессируют E-cadherin, соотв. Исходя из позиции нейроэпителия и субдоменов нейронов, они предположили, что pc2d нейроэпителиальный субдомен продуцирует клетки в c2d домен, который дает клетки Пуркинье, тогда как pc2v субдомен генерирует клетки в c2v, которые становятся GABAergic интернейронами (Mizuhara et al. 2010). По ходу развития, pc2d и pc2v субдомены уменьшаются и расширяются, соотв. и на E14.5 у мышей Ptf1a-экспрессирующий pc2 домен представлен только субдоменом pc2v, который слабо экспрессирует E-cadherin. Это коррелирует с тем фактом, что на at E14.5, Ptf1a-экспрессирующий нейроэпителий не продуцирует клетки Пуркинье, а Pax2-позитивные интернейроны (Maricich & Herrup 1999; Hashimoto & Mikoshiba 2003). Экспрессия некоторых др. транскрипционных факторов в VZ мозжечка во время развития также описана. Напр., , Zordan et al. (2008) описали паттерны экспрессии пронейральных bHLH транскрипционных факторов, таких как Ngn1, Ngn2 и Ascl1 в VZ мозжечка, хотя их функция в развитии мозжечка всё ещё неизвестна. Сообщалось, что Pax2-позитивные нейроны, но не клетки Пуркинье, редуцированы в Ascl1-нулевом мозжечке (Grimaldi et al. 2009), тогда как клетки Пуркинье редуцированы у Ngn1-нулевых мышей (Lundell et al. 2009), указывая, что эти bHLH транскрипционные факторы играют разные роли в развитии мозжечка.
Кроме того, несколько транскрипционных факторов было описано, которые участвуют в развитии специфических типов нейронов мозжечка. Двойной нокаут Lhx1 и Lhx5 , а также целенаправленное разрушение их кофактора Ldb1 приводит к отсутствию продукции клеток Пуркинье в мозжечке, хотя Pax2-позитивные промежуточные нейроны, по-видимому, не затронуты. Поскольку Lhx1 и Lhx5 экспрессируются в постмитотических клетках, то это указывает на то, что Lhx1, Lhx5 и Ldb1 участвуют в постмитотической спецификации клеток Пуркинье (Zhao et al. 2007). Кроме того, у cyclin D2 KO мышей пул предшественников GABAergic интернейронов преждевременно растрачивается и количество предшественников существенно редуцируется, приводя к удивительному снижению количества поздно возникающих интернейронов, таких как звездчатые клетки (Huard et al. 1999; Leto et al. 2011).
Из RL генерируется несколько типов glutamatergic нейронов, таких как CN-Glu нейроны, гранулярные клетки и однополярные brush клетки (Machold & Fishell 2005; Wang et al. 2005; Englund et al. 2006). CN-Glu нейроны покидают RL рано во время нейрогенеза. Некоторые транскрипционные факторы, такие как Tbr1, Irx3, Meis2, Lhx2 и Lhx9 экспрессируются в постмитотических предшественниках CN-Glu нейронов, но из роли неясны (Morales & Hatten 2006). Др. молекула, такая как Zic1 (Aruga et al. 1998), как известно, играет важную роль в миграции, созревании и выживании гранулярных клеток, но молекулярные события, лежащие в основе спецификации качественных особенностей гранулярных клеток, неизвестны. Однако однополярные brush клетки строго экспрессируют Tbr2, его функция остается неизвестной.
Исследования гетротопических и гетерохронических трансплантаций также предоставили важные указания для понимания развития мозжечка (Carletti & Rossi 2008). Когда ткани из эмбрионального и постнатального мозжечка перемешивали и трансплантировали в четвертый желудочек взрослых мышей, то клетки постнатального происхождения дифференцировались только в интернейроны, такие как гранулярные, корзинчатые и звездчатые клетки, но не в проекционные нейроны, такие как клетки Пуркинье, тогда как клетки эмбрионального происхождения m,skb способны становиться всеми тапами нейронов мозжечка (Jankovski et al. 1996). Было также установлено, что диссоциированные клетки, взятые из зачатка мозжечка на ранних стадиях нейрогенеза могут дифференцироваться во все основные типы нейронов мозжечка, тогда как те, что происходили из постнатального мозжечка дифференцировались только в Pax2-позитивные интернейроны (Carletti et al. 2002). Эти находки указывают на то. что компетентность к дифференцировке предшественников мозжечка становится ограниченной по ходу развития. Однако молекулярные механизмы, лежащие в основе процесса ограничения судеб неизвестны. Интересно, Leto et al. (2006) предположили, что Pax2-позитивные интернейроны, такие как Golgi, stellate, basket клетки и CN-GABA интернейроны происходят из одного и того же пула предшественников. Leto et al. (2009) также выяснили, что после выхода из VZ, предшественники GABAergic интернейронов продолжают пролиферировать в проспективном белом веществе во время поздней эмбриональной и постнатальной стадии развития. Их трансплантационнные исследования показали, что терминального предопределения не происходит, поскольку предшественники всё ещё пролиферируют, но оно происходит постмитотически в соответствии со специфической для хозяина информацией, указывая на инструктивные сигналы, предоставляемые микроусловиями проспективного белого вещества.

Neuron subtype specification in the cochlear nucleus


Звуки, получаемые ухом передаются посредством слухового нерва в cochlear nucleus (CoN) заднего мозга млекопитающих, где слуховая информация собственно перерабатывается и передается по эстафете в головной мозг. CoN очень сложный комплекс клеток, который может быть подразделен на два субрегиона, вентральный и дорсальный кохлеарные ядра (VCoN и DCoN), которые отличаются по структуре и свойствам.
Из-за важности в восприятии звука CoN интенсивно исследовался с анатомической, физиологической и гистохимической точки зрения (Osen 1969; Ryugo & Willard 1985; Hackney et al. 1990). Гистологические наблюдения позволили сделать вывод, что часть нейронов, генерируемая нейроэпителием дорсальной части заднего мозга, мигрирует тангенциально, давая CoN нейроны (Pierce 1967; Ivanova & Yuasa 1998). Более прямые генетические исследования по картированию судеб с использованием трансгенных мышей подтвердили, что многие CoN клетки происходят из дорсальной области нейроэпителия заднего мозга, где активен Wnt1 промотор (Farago et al. 2006; Nichols & Bruce 2006). Что касается ростро-каудальной оси, то происхождение CoN нейронов кажется отличным у птиц и млекопитающих. Трансплантации выявили, что птичьи CoN нейроны происходят из более широкой части заднего мозга (r3-r8), (Tan & Le Douarin 1991; Cambronero & Puelles 2000; Cramer et al. 2000), тогда как генетические исследования на мышах показали более ростральное и более узкое происхождение (r2-r5) (Farago et al. 2006).
Более сложное исследование по генетическому картированию проведено Farago et al. (2006) с использованием FLP-FRT и Cre-loxP-based системы отслеживания двойных клонов. Кроме того, чтобы показать, что CoN нейроны происходят из r2 - r5, они также выявили, что нейроны в передней части VCoN (aVCoN), задней части VCoN (pVCoN) и DCoN, в целом имеют тенденцию быть генерированными из ростральной (~r2, 3), средней (~r3, 4) и каудальной (~r4, 5) частей заднего мозга, генерирующего CoN нейроны (r2-5), соотв., с некоторым перекрыванием.
CoN содержит разнообразные нейроны, которые обладают разными свойствами (Osen 1969; Ryugo & Willard 1985; Hackney et al. 1990). Напр., DCoN включает Golgi, molecular layer (ML)-stellate, cartwheel, tuberculo-ventral, unipolar brush, giant и fusiform клетки, тогда как VCoN представлен octopus, globular-bushy, spherical-bushy, T-stellate и D-stellate клетками.
В нейроэпителии средней части заднего мозга (r2-r5), определенные экспрессирующиеся транскрипционные факторы составляют несколько молекулярно определяемых доменов (Fig. 2, upper panel). Используя Cre-LoxP-based генетическое картирование судеб наша группа идентифицировала источник ингибирующих и возбуждающих нейронов кохлеарного ядра; ингибирующие (glycinergic и GABAergic) и возбуждающие (glutamatergic) нейроны происходят из Ptf1a- и Atoh1-экспрессирующих нейроэпителиальных регионов, соотв. (Fujiyama et al. 2009) и их развитие зависит от соотв. bHLH белков.

Subtype specification of precerebellar neurons


Существует два типа предмозжечковых афферентных систем; mossy fiber (MF) и climbing fiber (CF) систем. MF нейроны располагаются в нескольких ядрах по всему стволу головного мозга и распространяют свои glutamatergic проекции к гранулярным клеткам, передавая периферическую и кортикальную информацию в мозжечок. 4 основных ядра, содержащих MF нейроны это pontine gray nucleus (PGN), reticulotegmental nucleus (RTN), lateral reticular nucleus (LRN) и external cuneate nucleus (ECN) в заднем мозге (Altman & Bayer 1987). Некоторые MF нейроны также располагаются в spinal trigeminal nucleus (Sp5) в заднем мозге и столбе Clarke's спинного мозга. Напротив, CF нейроны располагаются исключительно в inferior olive nucleus (ION), которое получает сигналы от коры мозга, красного ядра, спинного мозга и др. ядер ствола мозга, и посылает glutamatergic проекции в клетки Пуркинье (Ruigrok et al. 1995). Оба типа предмозжечковых нейронов также посылают веточки аксонов к нейронам ядер мозжечка. Эти предмозжечковые системы, как полагают, передают как внешнюю, так и внутреннюю информацию в кору мозжечки, чтобы модулировать функцию мозжечка, включая регуляцию перемещений.
Предыдущие исследования на мышах установили, что CF нейроны генерируются относительно на ранних стадиях нейрогенеза (E9.5-11.5), тогда как MF нейроны продуцируются на несколько более поздних стадиях (E10.5-16.5) (Pierce 1973). Вдоль ростро-каудальной оси и MF и CF нейроны в заднем мозге генерируются из каудальной части заднего мозга вокруг ромбомеров 6-8, как показали трансплантационные исследования на птицах, а также картирование судеб у млекопитающих (Ambrosiani et al. 1996; Cambronero & Puelles 2000; Farago et al. 2006; Kawauchi et al. 2006). Напротив, MF нейроны в Clarke's ядре генерируются в спинном мозге (Bermingham et al. 2001). Классические анатомические и иммуногистохимические исследования подтвердили, что эти нейроны предмозжечковых ядер в заднем мозге появляются из дорсальной части заднего мозга и мигрируют тангенциально или по окружности к своим финальным локусам (Bloch-Gallego et al. 1999; Yee et al. 1999; Kyriakopoulou et al. 2002). Однако они имеют слегка отличающиеся др. от др. пути; MF и CF нейроны движутся extramurally и intramurally, соотв. Введение GFP-экспрессирующего вектора в эмбриональный дорсальный задний мозг сделало возможным визуализацию мигрирующих нейронов предмозжечковых ядер во время развития (Kawauchi et al. 2006; Okada et al. 2007).
Многими группами описаны транскрипционные факторы, которые экспрессируются внутри дорсального нейроэпителия каудальной части (r6-8) заднего мозга во время эмбрионального развития, в попытке определить домены вдоль дорсовентральной оси. Наиболее дорсальная часть, экспрессирующая Lmx1a соответствует roof пластинке, которая дает хороидное сплетение (Chizhikov et al. 2006). Отличный от roof пластинки, дорсальный нейроэпителий может быть подразделен на 6 доменов (dP1-dP6) в соответствии с паттерном экспрессии транскрипционных факторов, таких как Atoh1, Ngn1, Ascl1, Ptf1a и Olig3 (Fig. 2, lower panel). Что касается нейронов предмозжечковых ядер, ряд исследований предпринято с целью выяснения точного происхождения MF и CF нейронов с помощью методов отслеживания клонов.
С помощью анализа генетически преобразованных мышей, которые экспрессируют lacZ или Cre рекомбиназу под контролем эндогенного или экзогенного промотора Atoh1, MF нейроны из PGN, RTN, LRN и ECN, как было установлено, возникают из домена нейроэпителия, экспрессирующего Atoh1 (dP1, Ben-Arie et al. 2000; Rodriguez & Dymecki 2000; Landsberg et al. 2005; Wang et al. 2005). Целенаправленное разрушение гена Atoh1 ведет к потере этих MF нейронов, указывая тем самым на участие Atoh1 в развитии нейронов MF.
Atoh1 регулирует экспрессию транскрипционного фактора Barhl1 (Mbh2), который экспрессируется в MF нейронах. Потеря экспрессии Barhl1 приводит к снижению MF нейронов, приводя к уменьшению размера MF предмозжечковых ядер (Li et al. 2004). Кроме того, Flora et al. (2007) сообщили, что Tcf4, E-белок, взаимодействует с Atoh1 и регулирует дифференцировку специфического субнабора (PGN, RTN) MF нейронов.
Landsberg et al. также отслеживали клоны, используя два варианта FLP (Flippase recombinase) с разной рекомбиназной активностью, которые экспрессируются под контролем промотора Wnt-1, чья сила наивысшая в наиболее дорсальной части и постепенно снижается в вентральном направлении. Они продемонстрировали, что CF нейроны происходят из региона нейроэпителия, где Wnt-1 экспрессируется очень слабо, тогда как MF нейроны возникают из региона с сильной экспрессией Wnt1 (Landsberg et al. 2005). Кроме того, Nichols & Bruce (2006) получили трансгенных мышей, несущих трансген Wnt-1-enhancer/lacZ и наблюдали, что MF нейроны, но не CF нейроны были мечены с помощью β-gal у этих мышей. Эти находки подтверждают, что CF нейроны генерируются из области нейроэпителия, вентральнее домена экспрессии Atoh1.
С помощью Cre-loxP-based анализа по отслеживанию клонов наша группа показала, что все CF нейроны в ION происходят из области нейроэпителия, экспрессирующего Ptf1a (Yamada et al. 2007). Потеря гена Ptf1a приводит к изменению судеб некоторых CF нейронов в MF нейроны, подтверждая, что Ptf1a играет критическую роль в детерминации судьбы CF нейронов. Мы также показали участие Ptf1a в миграции, дифференцировке и жизнеспособности CF нейронов. Сообщалось также, что и MF и CF нейроны происходят из области нейроэпителия, экспрессирующей Olig3, который широко распространен внутри дорсальной части заднего мозга (Storm et al. 2009), путем Cre-loxP-based отслеживания клонов. Целенаправленное разрушение гена Olig3 вызывает дезорганизацию развития MF нейронов и полную потерю CF нейронов (Liu et al. 2008; Storm et al. 2009). Более того, эктопическая совместная экспрессия Olig3 и Ptf1a заставляет клетки экспрессировать маркер CF нейронов у эмбрионов кур (Storm et al. 2009). Эти находки подтверждают, что CF нейроны возникают из домена нейроэпителия, экспрессирующего Ptf1a/Olig3 (dP4) и что Ptf1a и Olig3 кооперативно участвуют в развитии CF нейронов. Доменовая структура дорсального нейроэпителия в каудальной области заднего мозга показана на нижней панели Рис. 2.

Conclusions


Various types of neurons are generated from the dorsal hindbrain. As described above, the dorsal neuroepithelium of the rostral hindbrain (r1) produces all types of cerebellar neurons, while the dorsal regions of the caudal hindbrain (r6–r8) generate neurons that include the precerebellar system neurons, such as MF and CF neurons. In addition, the dorsal part of the middle hindbrain (r2–r5 in mice) produces neurons of the cochlear nucleus, where auditory information is processed and relayed to the brain.
There are dorso-ventral domain structures defined by several transcription factors, which are longitudinally expressed throughout the hindbrain. In particular, two bHLH transcription factors, Atoh1 and Ptf1a seem to play important roles in specifying distinct neuronal subtypes. These two proteins are expressed in different neuroepithelial regions throughout the hindbrain (Fig. 3). In both the rostral (r1) and middle hindbrain (r2–r5 in mice), Atoh1 and Ptf1a participate in generating excitatory and inhibitory neurons, respectively. However, this rule is not applicable to the caudal hindbrain. The Ptf1a neuroepithelial domain in the caudal hindbrain (r6–r8) produces not only inhibitory neurons (local circuit neurons) but also glutamatergic neurons (CF neurons) (Yamada et al. 2007), while the Atoh1 domain generates glutamatergic MF neurons. This raises the possibility that the rostral/middle (r1–r5) and caudal (r6–r8) hindbrain subregions have distinct characteristics. Overall, throughout the hindbrain regions, transcription factors, such as Atoh1 and Ptf1a, seem to define neuroepithelial domains along the dorsoventral axis and participate in specifying distinct neuronal subtypes according to the rostrocaudal spatial information (Fig. 3).
In the spinal cord, Atoh1 and Ptf1a are also expressed in the dorsal neuroepithelium in a non-overlapping manner, defining specific neuroepithelial domains, although Ptf1a seems to be transiently expressed in immature postmitotic neurons. Ptf1a is involved in producing inhibitory neurons in the dorsal spinal cord (Glasgow et al. 2005). Atoh1 is known to participate in generating some types of neurons in the dorsal spinal cord, including commissural neurons (Helms & Johnson 1998; Bermingham et al. 2001; Miesegaes et al. 2009). These neurons in the Atoh1-lineage are believed to include glutamatergic populations, although the neurotransmitter subtypes have not been well studied. Thus, from the viewpoint of transcription factors and neurotransmitter subtypes, the dorsal spinal cord has similar characteristics of those of rostral (r1) and middle (r2–r5) hindbrain but not caudal hindbrain (r6–r8), which emphasizes the complexity of the hindbrain.
Сайт создан в системе uCoz