Посещений:
ИМПЛАНТАЦИЯ ЭМБРИОНОВ

Генетический контроль

Morphogenetic analysis of peri-implantation development
Mary C. Wallingford, Jesse R. Angelo, Jesse Mager
Developmental Dynamics 242:1110-1120, 2013.

Background:Although successful implantation is required for development in placental mammals, the molecular and morphogenetic events that define peri-implantation remain largely unexplored. Results: Here we present detailed morphological and immunohistochemical analysis of mouse embryos between embryonic day 3.75 and 5.25 of gestation, during the implantation process in vivo. We examined expression patterns of key transcription factors (Sox2, Oct4, Nanog, Cdx2, Gata6, Sox17, and Yy1) during pre- and postimplantation development. Additionally, we examined morphogenetic changes through analysis of ZO-1, Laminin, and E-Cadherin localization. The results presented reveal novel changes in gene expression and morphogenetic events during peri-implantation in utero. Here we show: (1) molecular and morphological changes in primitive endoderm cells as they transition from a salt and pepper distribution to a sheet covering the inner cell mass; (2) tissue-specific GATA6 levels; and (3) a striking pattern of SOX17 that is suggestive of a functional role either directing or permitting implantation at specific sites in the uterine epithelium. Conclusions: A growing number of knockout mice display peri-implantation lethality, and the data presented herein identify key morphogenetic landmarks that can be used to characterize mutant phenotypes, as well as further our basic understanding of peri-implantation development.


Рисунки к статье


Развитие млекопитающих начинается после слияния спермия с яйцом в ампуле яйцеводов. У мышей первое деление дробления происходит спустя 24 ч, при этом дополнительные асинхронные клеточные деления продуцируют ~ 64-клеточный эмбрион приблизительно спустя 100 ч после human chorionic gonadotropin (hCG; Barlow et al.,1972). По мере формирования бластоциста образуется несколько морфологически отличных признаков. Полость бластоцеля увеличивается ии возникают две самостоятельные популяции клеток с более ограниченными судьбами: inner cell mass (ICM) and trophectoderm (TE). Увеличившийся бластоцист затем подвергается морфорлогическим изменениям в форме из округлой в удлиненную одновременно или после имплантации (Finn and McLaren,1967). Эмбрион вылубпляется из zona pellucida, и экстенсивно взаимодействует с материнской маточной тканью (используя эпидермальный ростовой фактор, простагландины, цитокины и др. сигнальные пути) приводя к активации бластоциста, восприимчивости матки, деградации внеклеточного матрикса маточного эпителия и имплантации (Schlafke and Enders, 1975; Strickland et al.,1976; Copp and Rossant, 1978; Parr et al., 1987; Brenner et al., 1989; Yamazaki and Kato, 1989; Rohde and Carson, 1993; Kamijo et al., 1998; Galan et al., 2000; Paria et al., 2001; Zhang et al., 2013). У человека было подсчитано, что более 75% ранних эмбрионов теряется в результате неспособности к имплантации (Wilcox et al., 1988; Norwitz et al., 2001; Cockburn and Rossant, 2010).
В начале ст. морулы и в ходе свего формирования балстоциста происходят хорошо охарактеризованные соыбтия, которые влияют на и вызывают приобретение разных судеб ранними клетками. Напр., OCT4, SOX2, fibroblast growth factor-4 (FGF4), и NANOG ограничены внутренней клеточной массой (ICM), тогда как GATA3, CDX2 и EOMES специфически маркируют клетки TE (Feldman et al., 1995; Nichols et al., 1998; Ciruna and Rossant, 1999; Hancock et al., 1999; Avilion et al., 2003; Mitsui et al.,2003; Home et al., 2009). В позднем бластоцисте слой primitive endoderm (PrE) покрывает ICM и может быть идентифицирован c помощью экспрессии GATA4, GATA6, SOX7 и SOX17 expression (Cai et al., 2008; Plusa et al., 2008; Artus et al., 2011). Прогресс в определнии инициальных клонов экспрессии специфических генов и клеточных судеб достигнут в основном благодаря анализу knockout (KO) эмбрионов, которые выявили генетические взаимодействия и иерархию этих критических белков (reviewed in Rossant and Tam, 2009; Stephenson et al., 2012).
Спецификация ICM и TE тесно взаимосвязана. Oct4 нулевые эмбрионы неспособны формировать плюрипотентные ICM и хотя клетки трофобласта обнаруживаются, ни ICM, ни PrE не пролиферируют в спец. условиях (Nichols et al., 1998). Sox2 KO эмбриональные выросты экспрессируют пониженные уровни Oct4 и Fgf4, и повышенные уровни TE маркера Pl1 (Avilion et al., 2003). Напротив, Nanog нокаутные эмбрионы продуцируют баластоцисты, но выросты дифференцируются специфически в PrE (Chambers et al.,2003; Mitsui et al., 2003). Сравнительнонедавняя работа показала, что SOX2 активирует Fgf4 и позитивно регулирует экспрессию Oct4 в ICM (Avilion et al., 2003), тогда как TE маркер CDX2 репрессирует Oct4 и Nanog и способствует экспрессии Eom в TE (Strumpf et al., 2005). Др. исследованияя показали, что GATA3 активирует Cdx2 специфически в TE благодаря взаимодействию с интронным сайтом связывания GATA (Home et al., 2009), но контроль экспрессии Gata3 остается неясным.
Развитие PrE также тесно связано с формированием c ICM и TE. Предшественникеи PrE идентифицируются по экспрессии GATA-6 и platelet-derived growth factor receptorα (PDGFRα) они впервые возникают в ICM у 64-клеточных эмбрионов в виде гетерогенного паттерн "соль и перец" (Chazaud et al., 2006; Plusa et al., 2008; Yamanaka et al., 2010; Grabarek et al., 2012). Маркер примитивной энтодермы GATA6 не нужендля образования OCT4-позитивной ICM in vivo, но Gata6 KO эмбрионы неспособны формировать GATA4-позитивную PrE, DAB2-позитивную visceral endoderm (VE) или париетальную энтодерму (PE; Cai et al., 2008). Sox7 и Sox17 (оба маркеры PrE) также экспрессируются в виде мозаичногопаттерна у 64-клеточных эмбрионов, в PrE позднего бластоциста и во внеэмбриональной VE гаструлирующих мышиных эмбрионов (Artus et al., 2011). Было предположено, что два белка фцункционально перекрываются; однако отсутствие Sox17 в бластоцистах с задержкой имплантации ведет к потере эпителиальной целостности PrE, включая преждевременное отслоение и миграцию PE (Artus et al., 2011). Хотя инициальная экспрессия Sox17 и Gata6 не сказывается на FGF4, уровень и гетерогенность экспрессии Fgf4 являются критическими для дифференцировки клонов ICM и PrE lineages (Nichols and Smith, 2009; Yamanaka et al., 2010; Kang et al.,2013). Вскоре после "salt and pepper" экспрессии генов GATA6/NANOG в ICM, обнаруживается одиночный слой PrE, лежащий поверх ICM у ~80-клеточного эмбриона и затем четко покрывая поверхность ICM у 100-клеточного эмбриона (Plusa et al., 2008; Rossant and Tam, 2009; Morris and Zernicka-Goetz, 2012). Однако, динамика событий морфогенетической сортировки, которая происходит во время этих стадий (64-80 клеточного эмбриона ) недостаточно документирована in vivo.
На эмбриональный день (E) 5.5, эмбрион принимает форму радиально симметричного яйцевого цилиндра, которая хорошо описана (Wiley and Pedersen, 1977; Gonda and Hsu, 1980; Copp, 1981; Skreb et al., 1991; Hishinuma et al., 1995; Perea-Gomez et al., 2007; Rossant and Tam, 2009). Хотя инициальная динамика образования яйцевого цилиндра не полностью определена, направленный рост яйцевого цилиндра исследован детеально; экспансия яйцевого цилиндра сначала происходит antimesometrially в полость бластоцеля и затем mesometrially в направлении первичного просвета матки (Copp, 1979; Skreb et al., 1991). Увеличенные клетки примитивной энтодермы дифференцируются в висцеральную (классически наз. проксимальной) энтодерму, проамниотическая послость формируется внутри epiblast (EPI), а полярная трофэктодерма дифференцируется во внеэмбриональную эктодерму (Snell and Stevens, 1966). Кроме того, определено множество деталей относительно морфогенетических движений и формирования определенных тканей было определено во время гаструляции у постимплантационных эмбрионов (Downs and Davies, 1993). Хотя имеется большое количество литературы о преимплантационном (E0.5-E3.5) постимплантационном (E5.5-E8.5) развитии, мало известно о перимплантационном развитии in utero. Этот критический онтогенетический период соответствует первому взаимодействию эмбриона с и последующей имплантации в uterine luminal epithelium (ULE), а также переходу от бластоциста к яйцевому цилиндру. Информатисное описание стадий имплантации дано Finn and McLaren в 1967 (Finn and McLaren, 1967). Сравнительно недавно исследование ex vivo E5.0-E6.5 эмбрионов выявило новую модель формирования как внеэмбриональной эктодермы, так и висцеральной энтодермы, которое подтвердило, что передняя часть висцеральной энтодермы возникает из поликлональных источников во время пери-имплантации (Perea-Gomez et al., 2007).
Поскольку перимплантационные и постимплантационные эмбрионы могут бытьлегко выделены и культивированы, то анализ перимплантационных стадий ставит уникальные задачи, как развитие эмбрионов базируется на взаимодействиях с мктеринской тканью. Хотя современные протоколы позволяют проводить довольно успешно ex vivo культивирование эмбрионов во время ст. бластоцист и до ранней стадии перехода к яйцевому цилиндру (Morris et al., 2012), молекулярная динамика внутри бластомеров не была изучена детеально in utero. Добавив трудность выделения E4.0-E5.0 эмбрионов, матка не обладает наглядными внешними указаниями на нахождение коллекции эмбрионов вплоть до ст. яйцевого цилиндра, когда утолщение децидуальной оболочки указывает на расположение эмбриона (Snell and Stevens, 1966). Как результат, детальное молекулярное знание пери-имплантационного развития остается неизвестным для развития млекопитающих. Изучение этих стадий in vivo может предоставить определенную информацию относительно механизмов, которые контролируют инициальное формирование слоя примитивной энтодермы, переход от ICM к EPI и взаимодействия эмбриона с маткой или передачу сигналов.
Наши данные подтвердили современную модель, а также подтвердили, что in vivo : (1) первые GATA6-позитивные клетки примитивной энтодермы отсортировываются на периферию ICM и всё ещё экспрессируют OCT4; (2) GATA6-позитивные клетки примитивной энтодермы, которые образуют слой поверх ICM являются OCT4 и Laminin негативными, но позитивными по E-Cadherin; (3) клетки париетальнрой энтодермы обнаруживают значительно более высокие уровни экспрессии GATA6по сравнению с клетками висцеральной энтодермы; (4) материнский SOX17 в эпителии матки может наводить или маркировать место имплантации. Полученные результаты в основоном согласуются с сегодняшней моделью формирования и спецификации PrE и дополнили информацию о переходе эмбриона из бластоциста в ст. яйцевого цилиндра (reviewed in Stephenson et al., 2012).

DISCUSSION


Хотя имеется обширная литература о анатомии пери-имплантации, но относительно мало известно о in vivo молекулярном анализе. Мы исследовали динамику пери-имплантационного развития и интегрировали наши результаиы с известными ключевыми морфогенетическими событиями и моделями (Fig. 4). Это молекулярное и морфогенетическое картирование пери-имплантации может быть пригодно для анализа эмбриональных фенотипов, которые возникают между формированием бластоциста и гаструляции. Посредством анализа экспрессии генов в точные временные точки во время пери-имплантационного развития in utero, мы выявили незначительные изменения в морфогенетической дифференцировке примитивной энтодермы.
У 64-клеточных эмбрионов наблюдается паттерн "salt and pepper", который отражает дифференцировку клеток примитивной энтодермы, которые лишены SOX2 и NANOG и экспрессируют GATA6 и PDGFR? (Chazaud et al., 2006; Plusa et al., 2008; Yamanaka et al., 2010; Grabarek et al., 2012). У 80-клеточных эмбрионов клетки примитивной эyтодермы в основном покрывают ICM и клетки примитивной энтодермы совершенно ясно покрывают поверхность ICM у 100-клеточных эмбрионов (Plusa et al., 2008). Наши данные выявили единообразную локализацию клеток примитивной энтодермы на периферии ICM in vivo между этими стадиями (между 64-клеточной "salt and pepper" ст. и 80-клеточной ст. "PrE covered ICM"). На ст. 115 hp-hCG, эти периферические клетки примитивной энтодермы экспрессируют высокие уровни OCT4, GATA6 и Laminin, но негативны по SOX2 и E-Cadherin. Чуть позднее на ст. 121 hp-hCG, GATA6-экспрессирующие PrE клетки, которые покрывают ICM, являются E-Cadherin позитивными и Laminin/OCT4 негативными (Fig.2). PPrE , скорее всего, являются производными GATA6-позитивной примитивной энтодермы, впервые обнаруживаемой в "salt and pepper" ICM (Rossant et al., 2003; Chazaud et al., 2006). Однако, наши данные подтвердили, что морфогенетические события приводят к точной локализации этих клеток на периферии, прежде чем они покроют ICM, и что миграция поперек ICM может быть механизмом, с помощью которого формируется одиночный слой PrE. Напротив, Cadherin-обеспечиваемая сортировка может быть ответственна за локализацию CDH1-негативной/GATA6-позитивной PPrE; Cadherins, как известно, участвуют в нескольких онтогенетически регулируемых событиях сортировки (rev. Nelson et al., 2013), а соотв. регуляция клеточной адгезии существенна для формирования TE и имплантации (Larue et al., 1994; Fleming et al., 2001; Jha et al., 2006). Кроме того, в некоторых сообдщениях подтверждается модель сортировки "directionally biased relocation and apoptosis," которая обеспечивает выживание этих предшественников PrE, которые находятся на поверхности ICM, и апоптоз предшественников в глубине ICM (Rossant et al., 2003; Chazaud et al., 2006; Plusa et al., 2008). Наши наблюдения не согласуются с этой моделью и указывают, что эта сортировка может направлять клетки в точности в направлении точки пересечения ICM, TE и полости бластоцеля.
Недавно была подтверждена модель последовательной транскрипции фактора активации в примитивной энтодерме, где впервые экспрессируется Gata6, сопровождаемая Sox17,Gata4 и Sox7 (Artus et al., 2011). Было подтверждено, что экспрессия Nanog в ICM предупреждает от эктопической экспрессии Gata6, это в свою очередь замалчивает экспрессию Nanog в дифференцирующихся PrE (Chambers et al., 2003; Mitsui et al.,2003). К моменту клонального распределения этот механизм также контролируется с помощью специфических уровней гетерогенных FGF4, который играет важную роль в приобретении склонности клеточных клонов к позитивно регулируемой экспрессии Gata6 и негативной регуляции Nanog (Kang et al., 2013). Взаимоисключающие паттерны экспрессии Gata6 и Nanog, наблюдающиеся in utero согласуются с этой моделью. Функциональные исследования передачи сигналов между ICM, TE и PPrE клетками в это время могут пролисть свет на эти важные события развития.
In vitro преимплантационный анализ выявил, что Laminins (1, 2/4 и 10/11) и их рецептор integrin α7β1 может быть ключевым играком в адгезии и инвазии трофобласта (Klaffky et al., 2001). Важно, что делеция или Lamb1 или Lamc1 (генов, которые кодируют две из трех цепей, которые представляют Laminin 1) ведут к пери-имплантационной гибели (Smith and Wilson, 1971; Miner et al., 2004). Наш анализ экспрессии генов in utero подтвердил, что по ходу развития Laminin продуцируется с помощью примитивной энтодермы (Chazaud et al., 2006; Niakan et al., 2010), но также показал, что продукция Laminin является наивысшей в PPrE и в клетках париетальной энтодермы на ст. 115 hp-hCG (?E4.25), и подавляется в клетках PrE, когда они покрывают ICM на ст. 121 hp-hCG (Figs. 23). Эти результаты открывают возможность, что фенотипы нокаута Laminin могут быть обусловлены дефектами функции клеток PPrE.
Матка мышей двурогая с двумя заполненными жидкостью рогами. Места имплантации эмбрионов, как было установлено, случайны как у мышей, так и крыс (Krehbiel and Plagge, 1962). Однако, мы показали, что огромное большинство эмбрионов имплантируется специфически в регионы, экспрессирующие SOX17 в ULE. В соответствии с утвержденмием о случайности мест имплантации (Krehbiel and Plagge, 1962), эти области экспрессии SOX17 не униформны, вглядят в виде заплаток по всему ULE (Fig. 6). Недавно Sox17 был идентифицирован в качестве мишени прогестерона в ткани матки (Rubel et al., 2012), а прогестерон, как известно, контролирует имплантацию у всех исследованных млекопитающих (Zhang et al., 2013). Хотя функциональные эксперименты необходимы для проверки этой гипотезц, наши данные открывают возможность , что прогестерон необходим для повышения SOX17 в регионах ULE, разрешающих имплантацию в этих местах. Инициация деградации ULE , как было установлено, не зависит от передачи эмбриональных сигналов, поскольку образование децидуальной облочки может быть индуцировано в присутствии стеклянных шариков (Blandau, 1949a, 1949b). Однако, молекулярное общение между эмбрионом и материнской тканью было установлено для нескольких сигнальных путей (rev. Zhang et al.,2013).Наши данные показывают, что в матке SOX17 может выполнять важную роль во время имплантации и д. быть добавлен к всё увеличвающемуся списку генов и путей, участвующих в этом процессе.

Conclusions


The data presented herein have revealed novel information about both embryonic and maternal morphogenetic events and advance our understanding of mammalian implantation. Our results are largely consistent with current models of early lineage specification, but support a model of in vivoperi-implantation development, in which: (1) following the "salt and pepper" ICM stage, GATA6/OCT4/Laminin-positive peripheral primitive endoderm are sorted to the intersection of the ICM, TE and blastocoel cavity; (2) GATA6-positive primitive endoderm cells (that are OCT4/Laminin negative) progressively form a sheet over the ICM; (3) parietal endoderm cells exhibit higher GATA6 levels than visceral endoderm cells; (4) maternal SOX17 in the uterine epithelium either guides or marks implantation sites. These data provide subtle additional details regarding the molecular mechanisms that govern peri-implantation development.