Посещений:
ГАНГЛИОЛЯРНЫЕ КЛЕТКИ и РЕТИНОТЕКТАЛЬНЫЕ АКСОНЫ
Роль кадгеринов
|
Zebrafish cadherin-11 participates in retinal differentiation and retinotectal axon projection during visual system developmentSherry G. Clendenon, Swapnalee Sarmah, Bijal Shah, Qin Liu, James A. Marrs Developmental Dynamics
Volume 241, Issue 3, pages 442–454 |
Background: Cadherins orchestrate tissue morphogenesis by controlling cell adhesion, migration and differentiation. Various cadherin family members are expressed in the retina and other neural tissues during embryogenesis, regulating development of these tissues. Cadherin-11 (Cdh11) is expressed in mesenchymal, bone, epithelial, neural and other tissues, and this cadherin was shown to control cell migration and differentiation in neural crest, tumor and bone cells. Our previous studies characterized Cdh11 expression and function in zebrafish. Results: Here, we report effects of Cdh11 loss-of-function on visual system development using morpholino oligonucleotide knockdown methods. Cdh11 is expressed in the retina and lens during retinal differentiation. Cdh11 loss-of-function produced defects in retinal differentiation and lens development. Cdh11 loss-of-function also reduced retinotectal axon projection and organization, consistent with known Cdh11 function in cell migration. Conclusion: Cdh11 expression in the developing visual system and Cdh11 loss-of-function phenotype illustrates the critical role for differential cadherin activity in visual system differentiation and organization. Developmental Dynamics 241:442–454, 2012. © 2012 Wiley Periodicals, Inc.
|
Дифференциальная активность клеточной слипчивости необходима для развития эмбриона путем регуляции тканевого морфогенеза и дифференцировки (Halbleib and Nelson, 2006; Steinberg, 2007; Suzuki and Takeichi, 2008). Во время нейрогенеза нервная ткань отделяется от эктодермы, нейроны дифференцируются и выпячиваются нервные отростки, эти события зависят от механизмов дифференциальной адгезии. Сходным образом, во время развития сетчатки нервная ткань отделяется и образует тонкие слои с разными типами клеток (фоторецепторы, биполярные клетки, амакринные, ганглиолярные клетки и т.д.), которые дифференцируются по мере развития органа (Malicki, 2004; Wallace, 2011). Кроме того, клетки ретинальных ганглиев дают аксональные отростки, которые нацелены на специфические области головного мозга (Reese, 2011). Функциональное развитие зрительной системы зависит от соответственной координации этих процессов. Cadherin молекулы клеточной адгезии являются важными игроками в скоординированной регуляции сортировки, дифференцировки и соединения в функциональные рефлекторные дуги (circuits) нервной ткани (Suzuki and Takeichi, 2008).
Cadherin гены сгруппированы в крупное сверхсемейство, которое включает некоторые подгруппы, которые кодируют мембранные белки с эволюционно законсервированным внеклеточным доменом из повторяющихся аминокислотных последовательностей (Nollet et al., 2000). Молекулы кадгерина типа I и типа II являются мембранными белками с хорошо законсервированной организацией тандемных кадгериновых повторов во внеклеточном домене, трансмембранном домене и цитоплазматическом домене (Nollet et al., 2000). Повторы внеклеточного домена кадгерина соединяются один с другим на др. соприкасающейся клетке, образуя межклеточные молекулярные адгезивные комплексы, которые обычно гомотипичны (Halbleib and Nelson, 2006; Steinberg, 2007). Цитоплазматические домены кадгеринов типа I и типа II образуют ансамбли с катенинами, которые регулируют взаимодействие кадгеринов с мембраной-цитоскелетом (Nollet et al., 2000). Биологические исследования клеток показали, что активность кадгеринов регулирует миграцию, пролиферацию, жизнеспособность, дифференцировку и различные др. процессы клеток (Halbleib and Nelson, 2006; Steinberg, 2007; Suzuki and Takeichi, 2008).
Нейральная сетчатка дифференцируется из клеток предшественников внутри недифференцированного нейроэпителия, в конечном счете образуя слои, которые содержат типы клеток сетчатки, которые чередуются с синаптическими слоями (Malicki, 2004; Wallace, 2011). Клетки ретинальных ганглиев располагаются внутри наиболее внутреннего слоя, а фоторецепторы находятся внутри наиболее наружного слоя. Внутренний ядерный слой содержит биполярные, амакринные, горизонтальные и Мюллеровой глии клетки. У рыбок данио ганглиолярные клетки сетчатки являются первыми клетками, выходящими из клеточного цикла (28 hpf) и эти новые ганглиолярные клетки сетчатки быстро начинают испускать отростки (Schmitt and Dowling, 1996). Др. типы клеток сетчатки дифференцируются в серии последовательных ступеней, контролируемые с помощью не до конца установленного процесса онтогенетической индукции (Schmitt and Dowling, 1996; Malicki, 2004; Wallace, 2011). Возникают синаптические соединения, которые продуцируют функциональную интеграцию нейральной сетчатки (Sanes and Zipursky, 2010). Проекции ганглиолярных клеток сетчатки выходят из глаз пучком, наз. зрительным нервом, чья миграция и нахождение соотв. путей в регионы головного мозга, воспринимающих сигналы от сетчатки, контролируется с помощью разнообразных сигналов химического сродства (Ruthazer and Cline, 2004). По срединной линии аксоны ганглиолярных клеток пересекаются с аксонами от противоположного глаза и мигрируют в контралатеральный оптический тектум и аксоны ганглиолярных клеток ветвятся и образуют соединения с центральными нейронами внутри переплетений нервных волокон (neuropil) (Stuermer, 1988; Burrill and Easter, 1994).
Используя рыбок данио разные лаб. исследовали гены, которые влияют на развитие зрительной системы (Malicki et al., 2002; Avanesov and Malicki, 2004), включая и роль кадгериновых молекул клеточной адгезии (Liu et al., 1999a,b, 2002, 2006, 2007, 2008, 2009, 2010; Erdmann et al., 2003; Malicki et al., 2003; Masai et al., 2003; Babb et al., 2005; Seiler et al., 2005; Yamaguchi et al., 2010; Lewis et al., 2011). Дифференциальная экспрессия кадгериновых молекул клеточной адгезии во время развития сетчатки указывает на то, что кадгерины регулируют сортировку клеток, распознавание клеток и морфогенез. Функциональный анализ показал, что кадгерины контролируют гистогенез зрительной системы рыбок данио (Erdmann et al., 2003; Malicki et al., 2003; Masai et al., 2003; Babb et al., 2005; Raymond et al., 2006; Liu et al., 2008; Lewis et al., 2011). Напр., потеря функции Cdh2 (N-cadherin) не препятствует дифференцировке типов клеток сетчатки, но образование слоёв сетчатки тяжело нарушено у эмбрионов с потерей функции Cdh2, обнаруживается перемешивание клеточных типов в разных слоях сетчатки (Erdmann et al., 2003; Malicki et al., 2003; Masai et al., 2003). Напротив, потеря функции Cdh4 (R-cadherin) и Cdh6 ингибирует дифференцировку типов клеток сетчатки, но если клетки сетчатки дифференцируются, то клеток правильно распределяются внутри соотв. слоя (Babb et al., 2005; Liu et al., 2008).
Проекции аксонов ганглиолярных клеток сетчатки в зрительном тектуме возникают в течение второго дня развития (Stuermer, 1988). У рыбок данио эти ретинотектальные проекции обычно распространяются только в контралатеральные стороны головного мозга (Burrill and Easter, 1994). У Cdh2 эмбрионов с потерей функции обнаруживаются относительно нормальные количества аксонов ганглиолярных клеток, но обнаруживаются ошибки в нахождении пути ретинотектальными аксонами: многие аксоны распространяются в ипсилатеральную часть зрительного тектума у мутантных эмбрионов cdh2 (parachute мутанты) (Masai et al., 2003). Напротив, эмбрионы с потерей функции Cdh4 обнаруживают пониженные количества дифференцированных ганглиолярных клеток, но все ретинотектальные проекции распространяются в контралатеральные части зрительного тектума (Babb et al., 2005). У эмбрионов с тяжелой потерей функции Cdh4, некоторые ретинотектальные аксоны промахиваются мимо неропиля зрительного тектума, строго указывая, что сбалансированные, скоординированные механизмы клеточной адгезии контролируют развитие зрительной системы (Babb et al., 2005). Т.о.,разные члены семейства cadherin дают отличающиеся фенотипы, строго указывая, сбалансированные, скоординированные механизмы клеточной адгезии контролируют развитие зрительной системы.
В нашем предыдущем анализе фенотипов после потери функции Cdh11, фенотипические отклонения в результате потери функции Cdh11 были отнесены к разным категориям в виде серии по тяжести нарушений длины тела, изгибания хвоста, пигментации, заднего мозга, глаз, ушей и отолитов и эти категории по фенотипической тяжести коррелировали с экспрессией белка Cdh11 (Clendenon et al., 2009). В категории легких нарушений эмбрионы обладали почти нормальной длиной тела, хвост прямой, пигментация и дефекты заднего мозга редуцированы. В категории умеренных нарушений, эмбрионы имели короткую длину тела, слегка искривленный хвост, маленькие глазки, маленькие отолиты. В категории тяжелых нарушений эмбрионы обнаруживали очень короткое тело, хвост сильно искривлен, очень маленькие глазки, очень маленькие иногда отсутствующие отолиты.
Фенотип малых глаз был отмечен у у эмбрионов с потерей функции Cdh11 (cadherin-11) (Clendenon et al., 2009). В данном исследовании изучалась экспрессия Cdh11 в зрительной системе и последствия потери функции Cdh11 у рыбок данио. Инъекции morpholino олигонуклеотидов использовали для специфического нокдауна экспрессии Cdh11 (Clendenon et al., 2009). Мы установили, что Cdh11 необходим для развития собственно зрительной системы.
DISCUSSION
Дифференциальная клеточная адгезия необходима для развития органов, а кадгериновые адгезивные молекулы, как было установлено ранее, необходимы для развития зрительной системы (Malicki, 2004; Pujic and Malicki, 2004; Halbleib and Nelson, 2006; Steinberg, 2007). Существуют многочисленные кадгериновые молекулы клеточной адгезии, которые экспрессируются в развивающейся и взрослой сетчатке (Honjo et al., 2000). Паттерны экспрессии различных кадгериновых и протокадгериновых молекул клеточной адгезии были изучены на рыбках данио (Liu et al., 1999a,b, 2002, 2006, 2007, 2008, 2009, 2010; Erdmann et al., 2003; Malicki et al., 2003; Masai et al., 2003; Babb et al., 2005; Seiler et al., 2005; Yamaguchi et al., 2010; Lewis et al., 2011). Последствия от потери функцииCdh2, Cdh4 и Cdh6 были изучены у рыбок данио (Erdmann et al., 2003; Malicki et al., 2003; Masai et al., 2003; Babb et al., 2005; Liu et al., 2008).
В предыдущем исследовании было показано, что Cdh11 принимает участие в дифференцировке и миграции клеток (Simonneau and Thiery, 1998; Vallin et al., 1998; Borchers et al., 2001; Kawaguchi et al., 2001; Lee et al., 2007). Впервые охарактеризованный в остеобластах (Okazaki et al., 1994), Cdh11 оказался необходимым для соотв. развития костей (Kawaguchi et al., 2001). Cdh11 был также назван мезенхимным кадгерином, поскольку он экспрессируется в миграторных эмбриональных клетках перед дифференцировкой и в метастатических опухолевых клетках (Kimura et al., 1995; Simonneau and Thiery, 1998; Vallin et al., 1998; Borchers et al., 2001; Chu et al., 2008; Nakajima et al., 2008; Huang et al., 2010). Cdh11 экспрессируется также в клетках нервного гребня, а миграторное поведение клеток нервного гребня регулируется с помощью деградации Cdh11 металлопротеиназой (Simonneau and Thiery, 1998; Vallin et al., 1998; Borchers et al., 2001; McCusker et al., 2009). В нервной системе Cdh11 экспрессируется в многочисленных типах нервных клеток (Franklin and Sargent, 1996; Kimura et al., 1996; Faulkner-Jones et al., 1999). Cdh11 экспрессируется в синапсах и, как было установлено, регулирует долговременную потенциацию в гиппокампе (Manabe et al., 2000). Подобно Cdh2 (Letourneau et al., 1990; Jontes et al., 2004), Cdh11 экспрессируется в ростовых конусах во время миграции аксонов (Marthiens et al., 2005), и также подобно Cdh2 (Williams et al., 1994), миграторная активность Cdh11 регулируется с помощью передачи сигналов Fgf (Boscher and Mege, 2008). Итак, эти находки иллюстрируют, что Cdh11 выполняет разнообразные роли во время развития эмбрионов.
Разрушение гена cdh11 у мышей было проанализировано и были выявлены дефекты развития сомитов и скелета (Horikawa et al., 1999; Kawaguchi et al., 2001). Нервная функция Cdh11 была установлена в гиппокампе, показано, что Cdh11 строго экспрессируется в области нейропиля и регулирует долговременную потенциацию в CA1 регионе гиппокампа (Manabe et al., 2000). Интересны эксперименты с использованием Xenopus, продемонстрировавшие специфическую функцию Cdh11 в миграции нервного гребня (Borchers et al., 2001; McCusker et al., 2009). Используя рыбок данио, ранее мы показали, что Cdh11 обнаруживает внеклеточную активность, контролируя рост отолитов во внутреннем ухo (Clendenon et al., 2009). Анализ функции Cdh11 во время развития зрительной системы ранее не проводился.
Предыдущие исследования показали, что Cdh11 экспрессируется в слое ганглиолярных клеток и во внутреннем ядерном слое развивающейся сетчатки мышей (Honjo et al., 2000; Yamagata et al., 2006). Наши эксперименты с иммунофлюоресценцией с использованием Cdh11 специфических антител, чтобы изучить распределение в развивающейся сетчатке рыбок данио, оказались согласующимися с находками у мышей. Экспрессия cadherins, включая Cdh11, указывает на то, что дифференциальная адгезия контролирует морфогенез сетчатки. Однако, распределение Cdh11 отличается от такового для др. кадгеринов, обнаруживая точечное окрашивание. Распределение Cdh11 в цитоплазме и во внеклеточном пространстве может указывать на необычную активность этого кадгерина, подобно той, что выявлена во внутреннем ухе (Clendenon et al., 2009). Кроме того, Cdh11 экспрессируется на высоком уровне в эпидермисе глаз, включая роговицу и хрусталик, которые могут оказывать косвенное влияние на развитие сетчатки.
Нокдаун эксперименты с morpholino олигонуклеотидами были использованы для определения последствий потери функции Cdh11 у рыбок данио. Нокдаун экспрессии Cdh11 дает фенотип маленькие глаза. Нокдаун cdh11 не препятствует спецификации глаз, но потеря функции Cdh11 увеличивает частоту гибели клеток сетчатки. Нокдаун cdh11 также индуцирует увеличение клеточных делений, в виде компенсаторной реакции на гибель клеток. Т.о., повышенная клеточная гибель является частью механизма фенотипа маленьких глаз, наблюдаемого у эмбрионов с нокдауном cdh11. Увеличение клеточной гибели отмечается и в др. исследованиях с потерей функции кадгеринов. Напр., Cdh4 нокдаун у рыбок данио дает фенотип маленьких глаз, который обусловлен усилением апоптоза (Babb et al., 2005). Слипчивость с помощью кадгеринов предоставляет сигнал жизнеспособности во многих клеточных контекстах, это является критическим для морфогенеза, включая таковой и сетчатки. Хрусталик и сетчатка обнаруживают реципрокные тканевые взаимодействия во время развития (Graw, 1996), но необходимы дополнительные эксперименты, чтобы определить, может ли потеря функции Cdh11 в хрусталике влиять на дифференцировку сетчатки и наоборот.
Снижение дифференцировки также вносит вклад в фенотип после потери функции Cdh11. Блокирование функции Cdh11 предупреждает соотв. дифференцировку в слоях сетчатки. Процесс дифференцировки изменяет разные клеточные качества; напр., в нервных клетках дифференцировка вызывает образование различных специализированных доменов мембран и структур, включая аксоны. дендриты и у фоторецепторов наружный сегмент. Снижение дифференцировки наблюдается у эмбрионов с нокдауном cdh11 и также может вносить существенный вклад в фенотип маленьких глаз. Снижение дифференцировки ассоциирует с др. фенотипами потери функции кадгеринов, включая Cdh4 и Cdh6 у рыбок данио (Babb et al., 2005; Liu et al., 2008). Напротив, потеря функции Cdh2 у рыбок данио не препятствуют дифференцировке типов клеток сетчатки, но наблюдаются дефекты полярности клеток, приводящие к перемешиванию типов клеток из разных слоев сетчатки (Erdmann et al., 2003; Malicki et al., 2003; Masai et al., 2003). У эмбрионов с нокдауном cdh11 наблюдается некоторая дезорганизация слоёв сетчатки, при этом клетки сетчатки образуют аномальные кластеры и розетки. Однако, дифференцированные клетки были найдены в их соотв. слоях сетчатки у эмбрионов с нокдауном cdh11 в нашем анализе.
Активность кадгеринов может влиять на баланс популяций предшественников и дифференцированных клеток во время дифференцировки сетчатки и хрусталика. Эффекты кадгеринов на нишы стволовых клеток и механизмы дифференцировки изучены недостаточно (Song and Xie, 2002). Дальнейшие исследования д. идентифицировать первичные эффекты различных кадгеринов, экспрессирующихся в сетчатке. Недавние находки, которые характеризуют популяции предшественников у рыбок данио, открывают множество возможностей для будущих исследований (Bernardos et al., 2007; Thummel et al., 2008, 2010; Cerveny et al., 2010).
Cdh11, как было установлено ранее, регулирует подвижность клеток, включая роль в миграции клеток нервного гребня и роста нейритов спинного мозга (Simonneau and Thiery, 1998; Vallin et al., 1998; Borchers et al., 2001; Marthiens et al., 2005; Boscher and Mege, 2008; Chu et al., 2008; Nakajima et al., 2008; Huang et al., 2010). Клетки ретинальных ганглиев проецируют аксоны в зрительные центры головного мозга посредством стереотипичных траекторий (Burrill and Easter, 1994). Обычно, аксоны клеток ретинальных ганглиев рыбок данио собираются в пучки в сетчатке и покидают глаз, посылая проекции в контралатерально расположенные зрительные мишени головного мозга. У эмбрионов с нокдауном cdh11 ганглиолярные клетки уменьшены в количестве, но те ганглиолярные клетки, которые дифференцированы, посылают аксоны в контралатеральные зрительные центры. Внутри зрительного тектума аксоны ганглиолярных клеток обычно перестают быть в пучках и ветвятся внутри нейропиля, где происходит образование синапсов. Потеря функции Cdh11 не препятствует разобщению пучков и ветвлению аксонов. Интересно, что ретинотектальные проекции у эмбрионов с нокдауном cdh11 обнаруживают эктопические проекции нейритов на срединной линии и аксональные отростки, которые преодолевают нейропиль, вступают в клеточный слой тектума. У эмбрионов с нокдауном Cdh4, нейриты также обнаруживались проходящими через нейропиль и вступающими в клеточный слой тектума (Babb et al., 2005). У эмбрионов с потерей функции Cdh2, большие количества аксонов проецируются ипсилатерально (Masai et al., 2003), чего не наблюдается у контрольных эмбрионов. Эмбрионы с нокдауном cdh11 не посылают проекций в ипсилатеральные стороны тектума, лишь продуцируют маленькие отростки, обнаруживаемые в хиазме. Итак, эти находки демонстрируют, что разные подтипы молекул кадгеринов контролируют отдельные процессы во время ретинотектальных проекций аксонов ганглиолярных клеток, включая нахождение пути, образование пучков и распознавание мишеней.
In summary, consequences of Cdh11 loss-of-function for visual system development were characterized. Previous studies showed that Cdh11 loss-of-function affects gastrulation, somitogenesis, neurogenesis, and skeleton and inner ear development (Horikawa et al., 1999; Kawaguchi et al., 2001, Borchers et al., 2001; McCusker et al., 2009, Clendenon et al., 2009). A small eye phenotype was also noted in zebrafish cdh11 knockdown embryos. Here, we show that increased cell death in the retina and lens and reduced retinal differentiation contribute to the Cdh11 loss-of-function small eye phenotype, and analysis of retinotectal projections indicate that axon guidance in ganglion cells was defective, participating with other cadherin adhesion molecules to orchestrate retinotectal projection to central nervous system visual targets (Erdmann et al., 2003; Malicki et al., 2003; Masai et al., 2003; Babb et al., 2005; Raymond et al., 2006; Liu et al., 2008; Lewis et al., 2011). Additional studies are needed to characterize how Cdh11 activity interacts with other cadherin adhesion systems and with other regulatory molecules that control visual system development.
|