Др. заболевания могут также вызываться дефектами
-гликозилирования с фенотипами, которые затрагивают специфические типы клеток. Напр., аутосоно рецессивная
type II congenital dyserythropoietic анемия нарушает эритропоэз. Дефект процессинга
-гликана может лежать в основе нарушения, но генетического подтверждени я этого ещё не получено
.
Galactosaemia представляет собой пример, в котором генетический дефект, который не затрагивает непосредственно биосинтеза гликанов, может вызывать болезнь благодаря вторичным влияниям на
-гликозилирование. Это заболевание вызывается неспособностью метаболизировать galactose, которая приводит в результате к снижению уровней UDP-galactose или накоплению потенциально токсических метаболитов
. Большинство случаев обусловлено недостаточностью galactose-1-phosphate uridyltransferase (GALT), с мутациями в UDP-galactose-4 epimerase (GALE) и galactokinase 1 (GALK1), лежащими в основе др. случаев. Однако, некоторые из патологий, которые наблюдаются при galactosaemia, могут быть вызваны дефектным гликозилированием белков. Фибробласты от пациентов с GALT, которые оказываются подвержены действию galactose, накапливают существенные количества внутриклеточного galactose-1-phosphate
, которые могут менять концентрацию nucleotide sugars. Недавние исследования идентифицировали некоторых пациентов с GALT, которые не контролировались с помощью приема galactose с пищей и имели незанятые сайты гликозилирования на сывороточном transferrin и измененные структуры
. Эти признаки устраняются, когда galactose удаляется из диеты. Несмотря на это даже пациенты с GALT, которые бережно контролируются галактозой в пище, все-таки обнаруживают умственную отсталость, apraxic речь и неспособность яичников у женщин. Неполное sialylation фолликул-стимулирующего гормона указывает на то, что гликопротеины могут быть задействованы
, но пока неясно, могут ли др. эффекты вызываться накоплением токсических метаболитов, таких как galactitol или за счет несоответствующего гликозилирования
. Мыши с недостаточностью GALT не воспроизводят человеческий фенотип, когда получают массивные количества галактозы, указывая тем самым, что последующий метаболизм galactose-1-phosphate может быть ограничен у людей, но не у мышей
Не все доступные сайты
N-гликозилирования на белках, которые проходят через ER и Golgi, оккупируются
73,74 , а некоторые оккупируются по-разному в разных тканях
75. Несмотря на это локализация
N-glycan сайтов законсервирована в большинстве белков. Точковые мутации, которые создают новые сайты гликозилирования могут вызывать неправильную укладку белков и быструю деградацию
76. Альтернативно, выживаемость таких белков может оказывать даже более тяжелые эффекты, если присутствие гликана нарушает образование сигнального комплекса или мультимерных белков. Напр., одна мутация, которая может вызывать синдром Marfan, создает
N-сцепленный сайт в fibrillin 1 (FBN1), это меняет процессинг и собственно сборку из мономеров этого белка
77,78. Недавно некоторые пациенты, с повышенной чувствительностью к mycobacterial инфекциям, как оказалось несут патологические точковые мутации, которые создают новый сайт гликозилирования в рецепторе interferon receptor IFNгR2 (REF. 79). Эта мутация не нарушает укладку белка или его локализацию на поверхности, но его функция драматически снижается. Ингибиторы
N-гликозилирования или ферментативное удаление дополнительного гликана восстанавливает активность
IFN.R2, показывая тем самым, что добавление
N-гликана к этому сайту нарушает функцию рецептора. В том же исследовании идентифицированы function-compromising мутации, которые генерируют новые сайты гликозилирования в др. связанных с иммунитетом белках
79. Более того, авт. рассмотрели 577 missense мутаций, которые затрагивают белки, которые следуют по пути ER-Golgi, и показали, что 13% из них создают несоответствующие места гликозилирования. Такое неожиданно высокое число может указывать на то, что избыточное гликозилирование белка действительно оказывает значительный эффект на функцию, чем потеря гликозилирования. Не удивительно, что случайная вставка радя гликанов в белки, такие как IFN.R2, оказывают негативные эффекты; даже правильно помещенные гликаны с неправильной структурой могут влиять на способность формирования сигнальных комплексов
80. Изменчивость в занятии сайтов гликозилирования может быть физиологическим способом контроля формирования таких комплексов.
Disorders of O-linked glycosylation
Вызывающие болезни дефекты биосинтеза O-гликанов возникают преимущественно в O-mannose и O-xylose путях и большинство пациентов затрагиваются этими нарушениями скорее, чем дефектами N-гликанов. Их клинические проявления такж обычно отличны от тех, что обнаруживаются при нарушениях N-гликозилирования: на O-mannose-базирующиеся нарушения все вызывают мышечную дистрофию, редки находки дефектов N-гликанов, в то время как базирующиеся на O-xylose дефекты обычно вызывают аномалии костей, хрящей и др. ECM производных.
Defects in O-mannose glycans: congenital muscular
dystrophies. Нарушения, которые возникают в результате дефектов в базирующихся на O-mannose гликанах, первоначально были известны под др. именем, а их связь с гликозилированием выявлена недавно. Мутации в кухне (machinery) гликозилирования, которые добавляют базирующиеся на O-mannose гликаны к α-dystroglycan, как недавно было показано, вызывает, по крайней мере, 5 типов congenital muscular dystrophy (CMD) (TABLES 2,3) и др. связанные с гликозилированием дефекты скорее всего будут идентифицированы для CMDs с ещё неизвестной этиологией4,81-84. Клинически исследованные категории этих нарушений теперь пересмотрены на базе знаний об дефектных генах, которые ранее рассматривались как характерные для др. нарушений83. Идентификация генов, вызывающих болезни, также ставит новые вопросы о том. как их белковые продукты влияют на гликозилирование, т.к. некоторые не обладают доказанной каталитической активностью, но способны корректировать множественные дефекты гликозилирования в клетках и мышиных моделях CMD.
α-Dystroglycan является одной из двух субъединиц dystrophin glycoprotein complex (DGC), который соединяет ECM с цитоскелетом во многих тканях. Обе субъединицы - α-dystroglycan и β-dystroglycan - являются производными одного гена, DAG1. В мышцах цитоскелетный актин связан с β-dystroglycan, который пронизывает клеточную мембрану. Внеклеточный домен β-dystroglycan соединяется с α-dystroglycan, который в свою очередь связывает laminin 2 в ECM посредством своего glycan-содержащего внеклеточного домена81. Степень и типы гликозилирования α-dystroglycan варьируют между разными тканями, но присутствие sialic acid чаще всего приводит к добавлению гликана, необходимого для связывания laminin-2. Используя моноклональные антитела против гликанов можно было бы идентифицировать связанные с гликозилированием дефекты, которые затрагивают α-dystroglycan, также как использование transferrin для выявления дефектов N-гликозилирования (BOX 1). Хотя не было найдено патологических мутаций в самом α-dystroglycan, название α-dystroglycanopathy было предложено для описания этих нарушений гликозилирования, т.к. это единственный белок, который безусловно несет гликаны, которые затрагиваются при CMDs82.
Walker-Warburg syndrome (WWS) является наиболее тяжелым из CMDs, который вызывается дефектным гликозилированием α-dystroglycan, с коротким периодом жизни (в среднем менее 1 года), множественными аномалиями головного мозга и тяжелой мышечной дистрофией. Примерно в 20% случаев имеются мутации в POMT1, который кодирует glycosyltransferase, необходимую для добавления O-mannose к α-dystroglycan. Как и в случае DAG1-нулевых мышей, POMT-нулевые животные погибают на ст. E7.5-9.5 и обе модели неспособны синтезировать Reichert's мембрану, что подтверждает функциональную связь между двумя генами85.
Комплекс POMT1-POMT2 в ER необходим для активности transferase86, a мутации в POMT2 также обнаруживаются у WWS пациентов87. Немногие клинически диагностированные пациенты с WWS имеют дефекты в генах, которые кодируют Fukutin and Fukutin-related protein (FKRP)83,84, который также, как полагают, функционирует на пути гликозилирования. Мутации в fukutin и FKRP вызывают также др. более легкие формы CMD (see below), это подчеркивает фенотипическую зависимость как от специфических генов, так и от мутации. Исследования базирующегося на сцеплении картирования WWS в родственных семьях показало, что, по крайней мере, два др. гена также несут вызывающие WWS мутации83.
Ген POMGNT1 кодирует transferase, которая катализирует ступень на пути после инициального добавления O-mannose88, a мутации этого гена вызывают muscle-eye-brain болезнь (MEB), которая характеризуется симптомами, которые сходны с теми, что при WWS. Это заболевание обнаруживает варьирующую экспрессивность: наиболее тяжело затронутые пациенты погибают в течение первых лет жизни, но в направлении спектра умеренного проявления возможно доживание до взрослого периода. Наиболее тяжело затронутые WWS-подобные пациенты имеют мутации в 5' конце гена, но ни один из мутантных белков не обладает ферментативной активностью, указывая тем самым, что др. факторы предопределяют тяжесть заболевания89. Это может быть очень высокая экспрессия like-glycosyltransferase (LARGE), которая может подавлять некоторые DGC мутации. POMGnT1-нулевые мыши жизнеспособны, но имеют множественные дефекты в мышцах, глазах и гловном мозге90.
Для некоторых CMDs, был идентифицирован мутантный ген, но функция белка, который им кодируется неизвестна. Напр., Fukuyama muscular dystrophy
(FCMD) вызывается 3-kb 3' инсерцией ретротранспозона в fukutin, которая частично редуцирует стабильность мРНК, что делает её относительно слабой мутацией. Продукты fukutin экспрессируются в мышцах и др. тканях и ко-локализуются с α-dystroglycan в разных регионах взрослого головного мозга мышей. Белок обладает предполагаемой glycosyltransferase signature (Asp-X-Asp, где X
любая аминокислота) и локализуется в cis-Golgi, но не выявлено transferase активности. Сходным образом врожденная muscular dystrophy type Ic (MDCIC) является довольно легким нарушением и вызывается мутациями в FKRP91. Again, белок, в основном локализующийся в Golgi и обладающий Asp-X-Asp glycosyltransferase signature, не обладает доказанной transferase активностью.
Исследования одного из типов CMD, MDCID, предоставили информацию о потенциально важных признаках путей гликозилирования84. Пациенты с этим нарушением несут мутацию в LARGE, которая первоначально была описана у myodystrophic мышей (myd, теперь Largemyd). Белок содержит две glycosytransferase signatures в разных доменах, это указывает на возможность бифункциональности энзима. Не было продемонстрировано ферментативной активности, но мутации этих доменов супрессировали способность эктопической экспрессия LARGE, чтобы восстановить дефекты гликозилирования92. LARGE располагается в Golgi и, по-видимому, распознает N-терминальную область α-dystroglycan, который затем протеолизуется, высвобождая гликозилированный домен mucin. Избыточная экспрессия LARGE приводи к гипергликозилированию α-dystroglycan, это указывает на то, что это является скорость ограничивающей ступенью92.
Избыточная экспрессия LARGE фенотипически восстанавливает Largemyd мышей и предупреждает развитие мышечной дистрофии без увеличения экспрессии др. белков dystroglycan-комплекса93. Наиболее удивительно то, что LARGE может также восстанавливать дефектное гликозилирование миобластов от пациентов с FCMD и WWS и фибробластов от пациентов с MEB. Это не связано с увеличением активности энзимов, которые дефектны при этих нарушениях; гликозилирование восстанавливается за счет неизвестного компенсаторного механизма. Эти результаты важны, т.к.они указывают на то, что эктопическая экспрессия LARGE может служить потенциальной терапией для CMD.
LARGE является не единственным способом действия. Избыточная экспрессия специфической цитоксической Т-клеточной βGalNAc transferase94 также может создавать новый гликан на α-dystroglycan и предупреждать начало патологии у mdx мышей,
которые дефицитны по dystrophin, белку, который дефектен при мышечной дистрофии Дюшена. Итак, образование эффективного внеклеточного комплекса может преодолевать и замещать потерю внутриклеточных связей с актином. Механизм, по-видимому, участвует в повышении связывания с utrophin, гомологом dystrophin, который обычно не присутствует на мышечных мембранах в достаточных количествах без 'booster' гена, который создает 'artificial
sweetener' которое и преодолевает эту недостаточность95,96.
Defects in O-xylose glycosaminoglycans. Мутации, которые затрагивают различные стадии синтеза GAG, вызывают несколько болезненных фенотипов у людей (TABLES 2,3). Напр., дефекты ECM, которые вызывают аномалии костей и хрящей в progeriod варианте синдрома Ehlers-Danlos, являются результатом мутаций в B4GALT7, который кодирует энзим, ответственный за добавление первого остатка galactose к xylose97. Хорошо изученные генетические дефекты этого типа затрагивают образование heparan sulphate и вызывают hereditary multiple exostosis (HME), что является аутосомно доминантным заболеванием с показателем около 1:50,000 (REF. 98). HME характеризуется костными выростами (экзостозами), обычно в ростовых пластинках длинных костей, и у 1-2% пациентов развивается остеосаркома99. Изучение этого заболевания предоставило информацию о роли GAGs на передачу сигналов и развитие.
HME вызывается missense или frameshift мутациями в 3-х генах, exostoses 1 (EXT1), EXT2 и EXT3, каждый из которых вовлечен в синтез heparan sulphate98. Большинство HME мутаций возникает в EXT1 (60-70%) и EXT2 (30-40%). Эти белки, как полагают, существуют в виде комплекса в Golgi и оба необходимы для полимеризации alternating остатков GlcNAc.1,4 and GlcA.1,3, которые определяют heparan sulphate98. Частичная потеря одного из аллелей любого из генов, по-видимому, достаточна для возникновения MHE, это указывает на то, что гаплонедостаточность снижает количество heparan sulphate и что активность Ext является скорость лимитирующей для биосинтеза heparan sulphate.
Механизм патологии HME может заключаться в нарушении нормального распределения heparan-sulphate-связывающих ростовых факторов, которые включают FGF и морфогены, такие как Hedgehog, Wingless и Decapentaplegic13. В согласии с этой теорией и то, что отсутствие heparan sulphate нарушает пути hedgehog, wingless и
decapentaplegic у Drosophila. Мыши, которые являются нулевыми или по Ext1 или Ext2 эмбрионально летальны и неспособны к гаструляции100; однако, Ext2-гетерозиготные животные жизнеспособны и около трети имеют одиночные видимые экзостозы на ребрах101. Экзостозы не возникают на длинных костях этих животных в противоположность HME, но едва различимые аномалии роста хондроцитов обнаруживаются в ростовых пластинках этих костей. Эти дефекты не обусловлены неправильной передачей сигналов Hedgehog, т.к. распределение этого белка не затрагивается. Ext1 гетерозиготы также имеют экзостозы, хотя пенетрантность зависит от линии мышей. Кроме того, они обнаруживают пониженную передачу сигналов FGF18 через FGF receptor 3
(FGFR3), a комбинация мутации Ext1 с Fgfr3+/- фоном увеличивает пенетрантность и тяжесть (J. Esko, personal communication), это указывает на то, что этот путь затрагивается нарушениями синтеза heparan sulphate.
Др. CDGs ещё неизвестного генетического происхождения, которые затрагивают трафик кухни гликозилирования, также могут влиять на синтез GAG-цепей и менять развитие скелета, нарушая передачу сигналов FGF. Многие свойства GAGs зависят от sulphation и некоторые аутосомно рецессивные chondrodysplasias вызывают аномальное развитие скелета (TABLES 2,3), благодаря дефектам транспорта sulphate-anion в клетки102 или его активации в 3'-phosphoadenosine-5'-phosphosulphate, универсальный донор sulphate103.
Defects in O-GalNAc glycans. Семейный tumoral calcinosis является тяжелым аутосомно рецессивным метаболическим нарушением, которое связано с phosphataemia и массивными отложениями кальция в коже и подкожных тканях. Анализ сцепления, идентифицированный с помощью биаллельных мутаций в GALNT3, в одном из более 20 известных гомологов, которые кодируют GalNAc transferases, инициирующие O-гликозилирование104. Мутации в O-гликозилированном FGF23 также вызывают phosphataemia105, это указывает на связь между функциями GALNT3 и FGF23106, хотя это ещё предстоит подтвердить.
Редкое аутоиммунное заболевание, Tn syndrome, вызывается соматическими мутациями в X-сцепленном гене COSMC
106. Этот ген кодирует высоко специфичный хаперон, который необходим для собственно упаковки и нормальной активности T-synthase, galactosyltransferase, которая превращает GalNAcα-Ser/Thr, известный как Tn антиген в Galβ1,3GalNAcα-Ser/Thr, известный как T антиген. При Tn синдроме субпопуляции всех типов кровяных клеток несут Tn антиген благодаря соматической мутации в стволовой клетке. Анти-Tn антитела присутствуют у большинства людей, a при Tn синдроме распознавание Tn антигена приводит к аутоиммунной реакции, которая ведет к анемии, лейкопении и тромбоцитопении. Мутации в COSMC являются прекрасными кандидатами на роль дефектов, лежащих в основе др. сходных с Tn нарушений, таких как IgA nephropathy и почечная недостаточность
106.
Defects in glycolipid synthesis
Лишь немногие нарушения специфически затрагивают синтез GSLs и GPI якорей, но те, что были идентифицированы предоставляют информацию о том. как дефекты этого типа приводят к болезням. Мутации, которые лежат в основе CDG-Ie и CDG-If, также могут нарушать и синтез GPI-якоря в дополнение к своим эффектам на синитез N-гликанов.
Defects in GSL synthesis. Мутации в ST3GAL5 (известном также как SIAT9) были идентифицированы в случае аутосомно рецессивного Amish infantile epilepsy синдрома107. Этот ген кодирует sialyltransferase, которая необходима для синтеза ganglioside GM3 (sialic
acid-2,3-galactose-в1,4-glucose-ceramide, который является также предшественником для некоторых более сложных gangliosides) из lactosyl
ceramide (galactose-β1,4-glucose-ceramide). Причинная SIAT9 nonsense мутация укорачивает энзим и устраняет его активность, приводя к накоплению множественных non-sialylated гликолипидов. В противоположность человеческим формам болезни, мыши, лишенные GM3 не обладают судорогами или укороченным периодом жизни108. Однако, линии, которые являются нулевыми по Siat9 и гену, который кодирует αGalNAc transferase, необходимую для создания др. сложных gangliosides, имеют судороги108,109, это указывает на то, что отсутствие этих более сложных ганглиозидов может лежать в основе проблемы.
Defects in GPI-anchor biosynthesis. Не было идентифицировано наследственных дефектов биосинтеза GPI-якоря. Однако, известно более 100 оцененных соматических мутаций, появившихся в Х-сцепленном гене
PIGA, который кодирует GlcNAc transferase, инициирующую этот путь.
Нарушение синтеза GPI-якоря вызывает paroxysmal nocturnal haemoglobinuria
(PNH)
110. При этом заболевании потомство аномальных мультипотентных гематопоэтических стволовых клеток, которые лишены GPI-закрепляющих белков, становится резистентным к апоптозу и становится доминирующей популяцией
111. Такая аномальная выживаемость, по-видимому, связана с потерей индуцируемых стрессами UL16-связывающих белков (ULBP1 и ULBP2), которые активируют NK и T клетки. PNH, вместе с нарушениями, которые вызываются дефектами COSMC, обнаруживают потенциальные последствия Х-сцепленных соматических мутаций на путях гликозилирования. Хотя такие нарушения еще не идентифицированы, но вполне могут существовать те, что обусловлены мутациями в др. Х-сцепленных генах, связанных с гликозилированием, куда входят ген UDP-galactose transporter (
SLC35A2),
ALG13 (который кодирует субъединицу, необходимую для добавления второго GlcNAc к LLO предшественнику) и
OGT (который кодирует
O-GlcNAc transferase).
Conclusions and future perspectives
Many patients with multi-systemic disorders, especially
those with developmental delays, often do not receive a
definitive diagnosis. Insights into glycosylation disorders
have offered a new and mostly unexplored possibility in
this respect. In the past 10 years, progress in this area has
been referred to as ‘booming’99 with the identification of
32 diseases that are caused by defective glycosylationrelated
genes. Many predictable glycosylation defects
have been found in N-glycosylation, and neighbouring
steps within this pathways are likely to be catalogued; so
far we know of diseases in only 19 of the more than 60
genes that are involved in the N-glycan pathway. On the
basis of the types of known genetic defect, other COG
and trafficking-related disorders are likely to be found, as
are defects in many of the GAG and O-GalNAc pathway
biosynthetic steps. For all of these, the phenotypes will
probably be extremely diverse. Inherited defects in more
genes, the products of which are involved in GPI-anchor biosynthesis, are also likely to be identified. In these
cases, more specific phenotypes are likely to be seen:
effects on blood homeostasis are a probable outcome.
These phenotypes might also overlap with those that are
seen in patients with CDG-Ie, in whom the underlying
genetic defects lead to impairment of the dolichol-Pmannose
synthesis that is needed for the biosynthesis
of both GPI anchors and N-glycans, which sometimes
occur on the same protein.
Clinical awareness of and testing for glycosylation
disorders must continue to increase. For the CDGs,
identifying the defective gene in each patient is a
slow process using current methods. Tailored gene
chips that represent all known and potential defects
are possible, but the cost of this approach might be
too high. Alternatively, a cDNA-complementation
approach might be effective. Lectin-binding differences
between normal and CDG cells are not dramatic
in most cases (with the exception of CDG-IIc39), which
makes it impractical to exploit such binding to recognize
cDNA-complemented cells. Furthermore, defects
in COG-like Golgi trafficking proteins and COSMClike
chaperones are likely to cause multi-systemic
disorders, so simply finding an altered glycan structure
will not indicate the defect62. However, coupling
complementation to a highly glycosylation-dependent
readout, such as viral gene expression, could be used
to identify probable defects.
Another challenge is identifying the specific misglycosylated
proteins that are responsible for various
pathologies, and which could lead to new insights
for therapy. The discovery of new markers, including
those for complex O-linked glycans, might provide
new possibilities. The Human Disease Glycomics/
Proteome Initiative112 and the Consortium for
Functional Glycomics1,113 will probably lead the way in
marker identification.
Novel perspectives on glycosylation itself are likely to
emerge in the near future, and will add to our understanding
of the genetic pathways that are affected in
glycosylation disorders. For example, explaining how
LARGE expression over-rides multiple defects in the
dystrophin complex will require extending traditional
perspectives of glycosyltransferase organization and interactions
with specific glycoprotein substrates114,115. Linkage
analysis and positional cloning will continue to identify
glycosylation-related genes and the biochemical analysis
of glycosylation will provide mechanistic explanations.
Importantly, glycosylation will probably be shown to
be a crucial feature in complex diseases, as it is likely to
promote the assembly of various signalling complexes
and regulate the turnover of receptors, as has already been
suggested for autoimmunity and type II diabetes80,116,117.
Furthermore, glycosylation efficiency could be affected by
SNPs118. For instance, one known SNP that occurs in an
N-glycan biosynthetic enzyme might alter its subcellular
localization (ID 4292135 in the SNPeffect database). Over
150 other non-synonymous SNPs are known to occur in
genes that are involved in multiple glycan biosynthetic
pathways, but their effect is unknown. Glycosylation
is also likely to be featured at the gene–environment
interface in the development of complex diseases. For
example, in the case of protein-losing enteropathy, which
occurs during viral or bacterial infections, a propensity
to lower levels of the heparan sulphate proteoglycans,
such as syndecan 1, has a contributing role119–121.
Finally, what is the prospect for therapy for glycosylation
disorders? Most are not currently treatable122,
but there are simple and effective therapies for a few
patients (BOX 2). In these cases, identifying the underlying
genetic defects has been crucial in determining
who would benefit from them. Understanding the biology
of glycosylation disorders will hopefully provide a
foundation for future therapies.
Сайт создан в системе
uCoz