Посещений:
АНОФТАЛМИЯ И МИКРОФТАЛМИЯ

Вариации числа копий нуклеотидных последовательностей

Whole-genome copy number variation analysis in anophthalmia and microphthalmia
KF Schilter, LM Reis, A Schneider, TM Bardakjian, O Abdul-Rahman, BA Kozel, HH Zimmerman, U Broeckel, EV Semina
Clinical Genetics Volume 84, Issue 5, pages 473–481, November 2013

Anophthalmia/microphthalmia (A/M) represent severe developmental ocular malformations. Currently, mutations in known genes explain less than 40% of A/M cases. We performed whole-genome copy number variation analysis in 60 patients affected with isolated or syndromic A/M. Pathogenic deletions of 3q26 (SOX2) were identified in four independent patients with syndromic microphthalmia. Other variants of interest included regions with a known role in human disease (likely pathogenic) as well as novel rearrangements (uncertain significance). A 2.2-Mb duplication of 3q29 in a patient with non-syndromic anophthalmia and an 877-kb duplication of 11p13 (PAX6) and a 1.4-Mb deletion of 17q11.2 (NF1) in two independent probands with syndromic microphthalmia and other ocular defects were identified; while ocular anomalies have been previously associated with 3q29 duplications, PAX6 duplications, and NF1 mutations in some cases, the ocular phenotypes observed here are more severe than previously reported. Three novel regions of possible interest included a 2q14.2 duplication which cosegregated with microphthalmia/microcornea and congenital cataracts in one family, and 2q21 and 15q26 duplications in two additional cases; each of these regions contains genes that are active during vertebrate ocular development. Overall, this study identified causative copy number mutations and regions with a possible role in ocular disease in 17% of A/M cases.


Рисунки и табл. в оригинале статьи


Anophthalmia/microphthalmia (A/M) характеризуется маленькими (microphthalmia) или отсутствием (anophthalmia) глазных яблок; они встречаются у 1 из 10 педиатрических пациентов с нарушением зрения с общей частотой 1–3/10000 родов [1-3]. A/M ассоциирует с дополнительными не глазными аномалиями приблизительно в трети случаев; как изолированные, так и синдромные случаи могут вызываться генетическими факторами, включая хромосомные аномалии и разрушения одиночных генов [4, 5]. Мутации в SOX2, OTX2 и FOXE3 транскрипционных факторах играют основную роль в фенотипах A/M с некоторым вкладом CHX10, RAX, PITX3, PAX6, GDF6, STRA6, FRAS1, CHD7, BMP4 и др. факторов [4, 5]. Мутации в известных генах объясняют менее 40% этого заболевания [5]; , следовательно, д. существовать дополнительные причинные факторы.
Анализ хромосомных аномалий, таких как транслокации или делеции/дупликации хромосомного материала широко используются для открытия геномных регионов, ассоциированных с нарушениями у человека, и для последующей идентификации причинных генов. Это подход позволил идентифицировать многие гены глазных болезней, включая PITX2 для синдрома Axenfeld–Rieger [6], SOX2 для синдромальной анофталмии [7], B3GALTL для Peters Plus синдрома [8] и CHD7 для CHARGE синдрома [9]. Анализ copy number variation (CNV) или array comparative genomic hybridization (array-CGH) делают возможным скрининг высокого разрешения для структурных альтераций в геноме человека [10]. CNVs являются делециями или дупликациями разных размеров, которые могут наследоваться или появляются как доминантные de novo мутации. Мутации, вызывающие рецессивные заболевания могут наблюдаться клинически, если делетированный аллель возникает в комбинации с аллелем, несущим мутацию [8, 11].
Чтобы лучше понять механизмы этих подтачивающих здоровье фенотипов у человека, используется идентификация новых генетических факторов, участвующих в глазных синдромах человека. Мы использовали array-CGH анализ 60 пациентов, страдающих от A/M, у которых идентифицированы патогенные CNVs, а также некоторые регионы/гены кандидаты, которые исследованы подробнее.

Discussion


Наши результаты согласуются с предыдущими исследованиями CNV глазных онтогенетических аномалий (включая A/M, колобомы, врожденные катаракты и дисгенез переднего сегмента) которые выявили причинные CNVs в 3-15% [22-24]. Два из этих исследований также описали новые регионы кандидаты; отсутствует перекрывание между регионами кандидатами, представленными в этих исследованиях и теми, что идентифицированы здесь [22, 23].
Разрушение SOX2 это наиболее распространенная причина A/M, объясняющая 10-20% случаев [14], так что высокая частота SOX2 делеций (4/60; 7%) в нашем исследовании не удивительна. Фенотипы, описанные здесь типичны для SOX2 anophthalmia syndrome (MIM:206900) [14]; тогда как гипопластические матка/оварии обычно не отмечаются, этот фенотип описан ранее [25] и может быть распознан. Как и в предыдущих исследованиях отсутствует корреляция между тяжестью болезни и размером делеции, подтверждая, что др. гены в этом регионе не вносят вклад в этот фенотип. Обзор др. генов, включенных в делецию у пациентов 1 и 2 подтверждает это заключение. Только два гена были ассоциированы с болезнью человека в гетерозиготной форме, ни один из которых не обусловлен гаплонедостаточностью: гетерозиготные мутации с избыточной функцией в зародышевой линии в гене PIK3CA ассоциированы с Cowden синдромом и соматические мозаичные миссенс мутации в этом гене наблюдаются при др. болезненных состояниях [26], тогда как гетерозиготные доминантно-негативные мутации в GNB4 вызывают Charcot-Marie-Tooth [27]. Три гена ассоциированы с фенотипами рецессивной метаболической или ciliary дискинезии (CCDC39, DNAJC19 и MCCC1) [28-30]; остальные гены не были описаны для фенотипических отклонений у человека (http://omim.org/).
Глазные дефекты, включая микрофталмию и дефекты переднего сегмента, изредка описываются у пациентов с 3q29 микродупликациями (MIM:611936), но большинство пациентов обнаруживает умственную отсталость и задержку развития и различные др. аномалии [20, 21]. Дупликация, обнаруженная у пациента 5 перекрывает критический регион, определенный Goobie et al. [20], захватывающий от TFRC до BDH1; тогда как полная дупликация не обнаруживается в контроле, центромерная (TFRC) и теломерная (BDH1) части этого региона, по-видимому, полиморфны (DGV). Пациент 5, описанный здесь является первым случаем с изолированными глазными аномалиями и предоставляет дальнейшие доказательства важности этого региона для развития глаза. DLG1 был предположен в качестве гена кандидата для наблюдаемых глазных аномалий [20]; DLG1 экспрессируется в развивающемся хрусталике и пигментном эпителии сетчатки [31]. Мутантные мыши с дефицитом Dlg1, как было установлено, обнаруживают усиленную пролиферацию в хрусталике, одновременно с дефицитом роста, черепно-лицевыми аномалиями, дефектами почек и неонатальной летальностью [31, 32].
Мутации числа копий, идентифицированные у пациентов 6 и 7 вовлекают PAX6 и NF1, соотв., скорее всего, вносят вклад в фенотипы этих пациентов. Дупликация PAX6 (обнаруживаемая у пациента 6) была ранее описана в ассоциации с глазными аномалиями, но ни врожденных катаракт, ни глаукомы не наблюдалось в этой семье. Большинство предыдущих сообщений связано с более крупными дупликациями, идентифицированными цитогенетически, включая диски 11p12 и/или 11p14 в дополнение к 11p13. Глазные проявления у этих пациентов чрезвычайно вариабельны со strabismus и nystagmus описываютя как наиболее распространенными; иногда также сопровождаются микрофталмией, гипоплазией радужки, эксцентричными зрачками и дефектами сетчатки [33]. Сравнительно недавно описан пациент с дупликацией в 166-kb в гене PAX6 и первом экзоне ELP4; она страдает от судорог, задержки развития, микроцефалии, ADHD и признаков аутизма, и имеет минимальные глазные признаки, состоящие в легкой гипопигментации дна, accommodative esotropia с высокой hyperopia, astigmatism, amblyopia и птозом [34]. Достоверная избыточная экспрессия PAX6 в мышиных моделях (5-7 и 10-45 копий) приводит к глазным дефектам в пределах от дефектов радужки и дефектов роговицы до тяжёлой микрофталмии [35].
Делеция NF1 вызывает NF1 (MIM 162200), которая наблюдается у пациента 7 в дополнение к глазному фенотипу (односторонней микрофталмии, колобомы радужки и роговичной leukoma). Мать и сестра пациента также страдают от NF1Ю но не имеют глазных аномалий. Делеция NF1 наблюдается ~5% пациентов с NF1; делеция в 1.4-Mb, наблюдаемая здесь полностью согласуется с наиболее часто наблюдаемой делецией (type-1). Пациенты с этой делецией хорошо охарактеризованы при этом нет сообщений о структурных глазных дефектах [36]. В то же самое время, поскольку структурные глазные дефекты не типичны для NF1 [37], один пациент с NF1 имел аномалии переднего сегмента (bilateral posterior embryotoxon и left Peters anomaly) и стеноз мозговой артерии; авт. полагают, что глазные дефекты могут быть вызваны сосудистыми нарушениями во время эмбрионального развития [38]. Кроме того, gonioscopic оценка NF1 пациентов с помощью ультразвуковой биомикроскопии подтвердила почти в половине (8/18 глаз) аномальный (occludable) угол передней камеры [39]. Наконец, гомозиготная делеция Nf1 у мышей вызывает дисгенез хрусталиков; глазные фенотипы, включая нормальные глаза (19%), анафталмию или микрофталмию (28%), и отсутствие хрусталиков с интактной сетчаткой (53%); изучение эмбрионального развития подтвердило, что Nf1 необходим для образования хрусталикового пузырька [40]. Ни один из др. генов в этом регионе не играет роли в развитии глаз (http://omim.org/). Следовательно, возможно, что делеция гена NF1 не достаточна, чтобы продуцировать глазной фенотип, пока не будет скомбинирована с др. глазными аллелями риска, наследуемыми от отца пациента в данном случае. Альтернативно, глазной фенотип у пациента может быть обусловлен отдельной генетической (или внешнесредовой ) причиной, не связанной с делецией NF1.
Дупликация 2q14.2, наблюдаемая у пациента 8 и двух затронутых членов семьи на сегодня не ассоциирована с установленным фенотипом, но обнаруживает доказательства на то что являются причиной наблюдаемого в семье фенотипического отклонения. Регион перекрывается с локусом Nanophthalmos 3 (MIM:611897), 2q11-q14, картирован в семье с простой микрофталмией, маленькой роговицей и высокой hyperopia [41]; не было идентифицировано вариаций в генеральной популяции по этому региону. Несколько генов внутри региона представляют потенциальный интерес: TMEM37 обогащен в хрусталике [42], ptpn4a у рыбок данио обнаруживает экспрессию в сетчатке во время развития [43] и dbi у рыбок данио обнаруживает экспрессию в эмбриональных глазах [44]. Необходимо дальнейшее исследование, чтобы определить вклад дупликации 2q14.2 в глазном фенотипе, наблюдаемом в семье. Финальные два варианта с неопределенным значением, 2q21.2 и 15q26.3 дупликации, иногда обнаруживаются в контрольных популяциях (менее 1%) и поэтому могут представлять редкие варианты или потенциальные факторы чувствительности. Оба региона содержат гены, обогащенные в хрусталиках: SMPD4 в 2q21.1 дупликации и PCSK6 в 15q26.3 дупликации [42].
Поскольку интерпретации клинического значения мутаций числа копий, которые затрагивают регионы/гены известных глазных фенотипов, обычно прямолинейны, клиническое значение новых структурных геномных изменений или даже вариантов у ранее описанных пациентов с несколько отличающимися глазными проявлениями, часто неопределенно без дальнейших исследований. Анализ дополнительных членов семей может предоставить дополнительную информацию относительно патогенных CNVs, обладающих варьирующей экспрессивностью или неполной пенетрантностью [20, 45, 46].