Посещений:
БОЛЕЗНИ НАКОПЛЕНИЯ ГЛИКОГЕНА ТИПА I И III
Генотерапия
Challenges of Gene Therapy for the Treatment of Glycogen Storage Diseases Type I и Type III Louisa Jauze,Laure Monteillet,Gilles Mithieux et al. Human Gene TherapyVol. 30, No. 10
|
|
Glycogen Storage Diseases are Rare Genetic Diseases Characterized By a Disturbance of Glycogen Metabolism
Гликоген является чрезвычайно разветвленным полисахаридом, который является формой хранения глюкозы у млекопитающих. Хотя большинство тканей сохраняют гликоген, он особенно богат в печени и скелетных мышцах. В печени гликоген служит в качестве источника глюкозы, чтобы поддерживать нормальные уровни глюкозы в крови. Накопление и деградация гликогена зависят от уровня глюкозы в крови. Во время состояния поглощения, когда ЖКТ полон, глюкоза экстрагируется из пищи и достигает кровообращения и хранится в печени в виде гликогена. В postabsorptive состоянии, когда уровни глюкозы в крови падают, гликоген превращается в глюкозу (glycogenolysis), чтобы поддерживать нормальные уровни гликемии. Этот процесс нуждается во вмешательстве двух разных ферментов, glycogen phosphorylase, которая деградирует линейный тракт гликогена, и glycogen debranching enzyme (GDE), который превращает разветвленный гликоген в линейную форму. Деградация гликогена высвобождает glucose-1 phosphate, который после изомеризации в glucose-6 phosphate трансформируется в глюкозу с помощью glucose-6 phosphatase (G6Pase). Когда печеночные хранилища гликогена истощаются, то возникает глюконеогенез в печени, почках и кишечнике для de novo синтеза глюкозы из noncarbohydrates субстратов, напр., аминокислот, пируватов и глицерола.1 В мышцах G6Pase не экспрессируется и glucose-6 phosphate возникает из гликогена и используется для продукции АТФ посредством гликолитического пути в качестве источника в качестве источника энергии для сокращений мышц.
Glycogen storage diseases (GSDs) - это группа редких наследственных метаболических нарушений (с частотой от 1 на 20000 до 1 на 100000 новорожденных), характеризующихся аномальным хранением или деградацией гликогена. 2,3 GSDs проявляются аномальными количествами или структурой гликогена в печени, мышцах или в обоих. Кстати известно 15 GSDs, вызываемых генетическим дефицитом разных белков, участвующих в синтезе или деградации гликогена, в гликолизе и высвобождении глюкозы в кровоток 2,3 (Fig. 1). Эпизоды гипогликемии являются первым проявлением печеночных GSDs (GSD0, GSDI, GSDIII, GSDIV, GSDVI и GSDIX), особенно во время кратковременного голодания, поскольку печень является основной тканоью, продуцирующей глюкозу в postabsorptive период. 4 Напротив, непереносимость упражнений с болями в мышцах и с rhabdomyolysis или мышечной слабостью и кардиомиопатией являются признаками GSDs, затрагивающих мышцы (GSDII по GSDV и GSDVII по GSDXV). 2,5
Figure 1. Glycogen metabolism и hepatic glycogen storage diseases. Hepatic glycogen storage disorders are indicated in roman numbers next to the defective genes. UPD-glucose, uridine diphosphate glucose.
Моногенный источник печеночных GSDs и четкое вовлечение печени. делает эти болезни идеальной мишенью для стратегий по замещению гена. Исследования генотерапии на животных моделях стало проверкой концепции по лечению GSDI и GSDIII. Накапливающиеся обширные пре-клинические исследования GSDIa позднее привели к клиническому испытанию (ClinicalTrial.gov Identifier: NCT03517085). Несмотря на это разработка лечебного воздействия при GSDI и GSDIII, нацеленного на проявления болезней в их целостности, всё ещё остается медицинской потребностью. GSDI и GSDIII представляют затруднения для генотерапии, обусловленные модифицированным метаболизмом гепатоцитов и лежащей в основе дегенерации печени вместе с вовлечением тканей едва затрагиваемых стратегиями замещения генов. Поэтому основное внимание уделено разработке генотерапии для печеночных GSDI и GSDIII, которые составляют ~50% от GSDs.
GSDI и GSDIII
GSDI, также называется болезнью von Gierke, характеризуется отсутствием продукции эндогенной глюкозы из-за дефицита активности G6Pase. Точнее, GSDIa и GSDIb вызываются мутациями в генах, кодирующих каталитическую субъединицу G6Pase комплекса (G6PC1) или glucose-6 phosphate transporter (SLC37A4 или G6PT), соотв.6-9 Мутации потери функции в этих двух субъединицах приводят к тяжелой гипогликемии после кратковременного периода голодания, которое может оказаться фатальным, если не вмешаться. Пациенты с GSDI обнаруживают также гепатомегалию и нефромегалию из-за аномального хранения гликогена в печени и почках. В самом деле, накопление glucose-6 phosphate, возникающее в результате снижения гидролиза в глюкозу, приводит к полному перепрограммированию печеночного и почечного метаболизма, характеризующемуся повышенным оборотом глюкозы и активацией de novo липогенеза и пути pentose phosphate.10-12 Как следствие, GSDI пациенты обнаруживают раздутые гепатоциты и клетки почечного эпителия из-за накопления высоких уровней гликогена и липидов, что приводит к ожирению печени, повреждениям почек и вторичным биохимическим аномалиям, включая hyperlactatemia, hyperuricemia и hyperlipidemia.8,9 Гепатоцеллюлярные аденомы (HCAs) возникают у 70-80% пациентов старше 25 лет с высокой вероятностью трансформации в гепатоцеллюлярные карциномы (HCCs), которые могут потребовать трансплантации печени.3,9 В самом деле, мы обнаружили сходство в метаболизме GSDI гепатоцитов и опухолевых клеток, оба характеризуются повышенной клеточной пролиферацией и потерей некоторых опухолевых супрессоров.10 Большинство GSDI пациентов старше 25 лет имеет почечную болезнь.9 Исследования на мышиных моделях показали, что накопление липидов ответственно за почечные нарушения, приводящие к хронической почечной болезни (CKD),11,13,14, которая может потребовать диализа или трансплантаций почек пациенту.8,9 GSDI также обнаруживают кишечные симптомы, которые оказываются более серьезными при GSDIb.9 При GSDIb, в отличие от GSDIa, у пациентов присутствуют тяжелые инфекционные осложнения, обусловленные neutropenia и функциональными дефектами нейтрофилов и моноцитов.9 При GSDI, нормогликемия поддерживается частыми приемами пищи, обогащенной сырым кукурузным крахмалом, даже ночь или постоянным питанием через трубочку.9,15 Чтобы ограничить накопление гликогена и жира д. быть исключены лактоза, фруктоза и продукты, содержащие свободные сахара. Т.о., частое питание в дневное время, внутрижелудочные постоянные вливания и строгий пищевой режим позволяют контролировать гипогликемию и уменьшать метаболические нарушения. Хотя строгий метаболический контроль может задержать или в некоторых случаях привести к регрессии долговременных осложнений при GSDI, печеночные и/или почечные трансплантации являются единственным лечением при этой болезни.9,16-20
GSDIII или болезнь Cori вызывается мутациями в AGL, что приводит к снижению активности GDE, который деградирует разветвленный гликоген.21 Дефицит GDE приводит к накоплению аномального гликогена (наз. limit dextrin) практически во всех тканях. GSDIII имеет разные признаки, затрагивающие в целом как печень, так и мышцы (тип IIIa, представляющий 85% случаев) или только печень (ип IIIb; ~15% случаев). Болезнь проявляется в детстве гепатомегалией, гипогликемией и гиперлипидемией. Пищевой режим базируется на частых приемах пищи, обогащенной сырым кукурузным крахмалом, как и в случае GSDI, чтобы предупредить гипогликемию и гиперкетонемию.21,22 Отличием от GSDI пациентов является то, что активация глюконеогенеза запускается диетой, обогащенной белками и жирами, которая позволяет лучше контролировать уровни глюкозы в крови у GSDIII пациентов.21-26 Несмотря на это во время детства контроль гликемии у GSDIII пациентов совершенно изменчивый и они переживают эпизоды угрожающей жизни тяжелой гипогликемии. У большинства GSDIII пациентов гепатомегалия и контроль гликемии улучшается с возрастом. Однако, уменьшение размера печени может быть обманчивым из-за прогрессирующего печеночного цирроза и печеночной недостаточности.21,27,28 Недавние результаты показали, что пролиферация и дифференцировка звездчатых клеток приводит к развитию фиброза, который играет центральную роль в прогрессировании печеночной болезни.29 В редких случаях описываются HCA и HCC.27,28 Кроме того, плазматические transaminases обычно повышены у GSDIII пациентов, подтверждая тяжелые печеночные повреждения.21 На мышечном уровне подъем creatine kinase, мышечные боли после упражнений и дистальная и проксимальная миопатии описываются у пациентов с GSDIII.21,30-32 Непереносимость упражнений, по-видимому, только частично связана с низким уровнем глюкозы в крови.33 Тщательная характеристика мышечных функций показывает прогрессирующую дегенерацию, начинающуюся в третей декаде.30,31 В целом гипотония и мышечная слабость приводят к непереносимости упражнений и в некоторых случаях к потере самостоятельного хождения. Вовлечение сердца связано с гипертрофией левого желудочка или др. формами гипертрофии у 58% молодых пациентов (средний возраст: 20.6 лет в пределах 1-64.1).21 В некоторой группе, 15% пациентов имеют кардиомиопатию, характеризующуюся тяжелой непереносимостью к упражнениям и/или использованию фармакологического лечения симптомов сердечной недостаточности. Важно, что диета богатая жиром, белками и бедная углеводами может вызывать улучшения кардиальных проявлений.23
Итак, GSDI и GSDIII характеризуются накоплением гликогена в печени, что прямо или косвенно вызывает стресс действительно во всех гепатоцитах, приводя к аномалиям паренхимы печени и печеночным осложнениям. Интересно, что усиление пролиферации гепатоцитов наблюдается при GSDIa и GSDIII задолго до образования печеночных опухолей.10,29 Кроме того, метаболизм гепатоцитов, охарактеризованный у GSDIa мышей был очень сходен с таковым в опухолевых клетках,10,12 указывая на высокий потенциал трансформации GSDI гепатоцитов. Принимая во внимание риск возникновения опухолей у GSDI и GSDIII пациентов, важно определить остаточный уровень активности, необходимый , чтобы избежать развития опухолей длительное время.
Др. важным свойством, общим двум болезням, является проявления во многих органах. Помимо гипогликемии и печеночной патологии, встречаются почечные, миелоидные или мышечные осложнения у GSDI и GSDIII пациентов и нуждаются в лечении. При GSDI, краткосрочные наблюдения за трансплантированными пациентами и одновременная трансплантация печени и почек делают профилактику заболеваний почек путем трансплантации печени все еще открытым вопросом.34,35 У животных моделей GSDI, нацеленная на печень терапия не предупреждает дегенерации почек и CKD в течение длительного времени.36,37 Кроме того, целенаправленная делеция G6Pase в почках оказывается достаточной, чтобы индуцировать характерную для GSDI нефропатию у мышей.13 Сходным образом, у GSDIII пациентов трансплантации печени не устраняют кардиальные и мышечные функциональные нарушения,38,39 и нацеленная на печень, и нацеленная на мышцы генотерапия необходимы для устранения фенотипических отклонений у модельных мышей с GSDIII.40 Т.о., ключевой проблемой для успешной генотерапии при GSDI и GSDIII является разработка инструментов генотерапии, эффективной для почек и мышц помимо печени, что делалао бы эффективной генотерапию, нацеленную на печень. 44 Более того, печень является предпочтительной мишенью для AAV векторов, благодаря её уникальным анатомическим свойствам с фенестрированным эндотелием, что приводит к эффективному накоплению AAV векторов внутри печени после системного применения. Кроме того, AAV геномы относительно стабильны в покоящихся гепатоцитах, обычно находясь в эписомной форме.45,46
Начиная с идентификации молекулярных основ GSDs, были тестированы разные подходы к восстановлению экспрессии мутантных белков и устранению болезненного фенотипа у животных моделей печеночных GSDs. Векторы, использованные для доставки откорректированной копии трансгена, включали аденовирусы, 47-50 лентивирусы, 51,52 и голую ДНК в комбинации с ультразвуковой доставкой. 53 Начиная с 2006, AAV становятся векторами выбора для замещения генов при печеночных GSDs. Недавно были использованы мРНК липидные наночастицы для целенаправленного воздействия на редкие генетические метаболические болезни 54 и GSD. 55 Преимущества и ограничения этих терапевтических стратегий для доставки ДНК или РНК в клетки обсуждаются. 56,57
AAV gene therapy for GSDI
Более 20 лет тому назад доступность мышиных и кроличьих моделей GSDIa и GSDIb стимулировали разработку стратегий по гено-замещению для этих болезней. К сожалению, эти животных модели страдают от тяжелой гипогликемии и обнаруживают очень низкую продолжительность жизни, что делает их непригодными для изучения эффектов генной терапии на GSDI долгосрочные осложнения. В целом у G6pc-/- мышей или собак, чтобы избежать преждевременной смерти, перед инъекцией AAV проводилась глюкозотерапия, то есть инъекции глюкозы, дача обогащенной глюкозой воды или пищевых добавок. Недавно получены ткане-специфические нокаутные модельные мыши с увеличенной продолжительностью жизни.58 Печень-специфические G6pc-/- мыши воспроизводят печеночные болезни человека, включая непереносимость голодания, метаболические нарушения и возникновение опухолей,59 тогда как почечно-специфичные G6pc-/- мыши обладают CKD, как это описано для GSDIa пациентов.11,13
Др. важным преимуществом GSDI относительно AAV генотерапии является то, что G6PC или G6PT трансгены являются относительно короткими и это предоставляет относительную свободу для выбора элементов, составляющих трансгены экспрессирующие кассету ( Table 1).
Table 1. Adeno-associated viral vector-based gene therapies in hepatic glycogen storage diseases type I и type III
Наконец, восстановление низкого уровня активности печеночной G6Pase достаточно , чтобы контролировать гликемию. В самом деле, первые данные, полученные при AAV генотерапии у собачьих и мышиных моделей GSDIa, подтвердили, что низкие уровни экспрессии G6PC трансгена, т.е. составляющие 3-5% от активности дикого типа (WT), были достаточны для предупреждения гипогликемии.60-62 Сходным образом, при GSDIb, генотерапия с помощью AAV векторов приводит к улучшению жизнеспособности и долговременной коррекции гипогликемии у G6pt-/- мышей, в дозах сравнимых с теми, что использованы при GSDIa.63,64 Как и ожидалось, благодаря очень низкой величине интеграции AAV векторов, генотерапия вызывала временное исправление миелоидных аномалий у G6pt-/- мышей.63
Однако, эти пионерские исследования подчеркнули и некоторые ограничения AAV генотерапии при GSDI. Во-первых, воздействие на 2-недельных мышей приводит к потере генома вектора возможно из-за дегенерации печени и почек, лежащих в основе патологии болезни, и/или роста печени.37 Несмотря на разбавление вектора коррекция печеночных нарушений была стабильной до 6 мес. у мышей и 1 года у собак после использования AAV8 вектора, экспрессирующего G6PC трансген.65 Долговременные исследования, проведенные на собаках сообщают от прогрессирующей потере трансгена, так что необходимо более трех повторных применений AAV векторов, псевдотипированных на разных серотипах, чтобы избежать IgG-обусловленной нейтрализации и достигнуть устойчивой эффективности (Table 1).36,66-68 Необходимость одновременного воздействия на печень и почки составляет второй технический барьер для коррекции болезни при системном уровне с некоторыми AAV серотипами, которые оказались очень не эффективными при целенаправленном воздействии на почки. 37,65 Несмотря на эти ограничения, коррекция болезней почек и печени частично достигается с помощью однонитчатых AAV1 векторов.69 Отличающиеся от WT AAV, который имеет однонитчатый (ssAAV) геном, рекомбинантные AAV векторы могут быть одно- и двунитчатыми геномами. Использование двунитчатых AAV (dsAAV) векторов может улучшить эффективность трансдукции и геномную стабильность AAV вектора.70,71 Соотв., при GSDIa, dsAAV9 векторы делают возможной эффективную экспрессию G6PC в печени и почках и устраняют накопления гликогена, гликемию и восстанавливают функцию почек.72 Однако, была получена низкая эффективность трансдукции и потеря экспрессии трансгена в почках после длительного времени (~1 год после инъекции вектора), подтверждая, что дегенерация ткани, ассоциированная с болезненным состоянием, не полностью корректируется с помощью генотерапии.72 Др. возможная причина низкого сохранения трансгена G6PC может быть обусловлена формированием иммунной реакцией на анти-трансген, приводящей к очистке клеток, экспрессирующих трансген. Ранние находки показали, что использование конституитивного промотора (cytomegalovirus early enhancer/chicken beta actin promoter [CAG]) , чтобы экспрессировать G6PC было ассоциировано с более высокими CD8 позитивными инфильтратами в печени и низким сохранением трансгена.73 Однако, подобная трансген-экспрессирующая кассета была использована, чтобы трансдуцировать гепатоциты при GSDIa у собак без каких либо доказательств иммунной реакции, даже после повторного применения.68 Это указывает на то, что анти-трансгенная иммунная реакция может играть маргинальную роль в низкой персистенции трансгена, наблюдаемой у разных модельных животных.
Второе ограничение касается предупреждения долговременных печеночных и почечных осложнений, превалирующих в популяции GSDI,9 при AAV генотерапии. Пре-клинические исследования, проведенные на G6pc-/- мышах показали, что долговременная экспрессия трансгена G6PC, находящегося под транскрипционным контролем промотора G6PC человека (hGPE) , предупреждает образование печеночных опухолей (Table 1).61,62,74,75 Поученные результаты показали, что низкий процент активности G6Pase (более 2% от нормальной активности G6Pase) может быть достаточен, чтобы избегнуть формирования HCA у GSDIa мышей.61 У GSDIb модельных мышей самый высокий процент (6-8%) активности WT G6PT необходим, чтобы предупредить образование HCA у 60-78-недельных животных.63 Предупреждение возникновения опухолей с помощью AAV генотерапии у GSDIa собак менее четкое и противоречивое. В самом деле, в одном исследовании, несмотря на высокую активность G6Pase activity (21% - 52% от нормальной печеночной активности G6Pase), 4 из 5 обработанных собак обнаруживали образование HCA и HCC.36 Более того, у 3-х из 5 обработанных собак three of возникала CKD из-за очень низкой почечной трансдукции.36 Во втором исследовании ни у одной из собак не возникали долговременные осложнения.67 эти отличия приписываются строгому контролю за приемом пищи, что позволило лучше контролировать печеночную дегенерацию, это может объяснить и улучшение эффективности генотерапии76,77 и подтверждает использование комбинированной терапии при переносе гонов78 Однако, необходимо отметить, что во втором исследовании подвергшиеся лечению GSDIa собаки обнаруживали зависимое от времени снижение в крови глюкозы и гибели в среднем возрасте 5.9 лет, несмотря на строгий метаболический контроль и последовательное применение двух AAV векторов.67
Эксперименты, проводимые более 20 лет завершились фазой 1/2 клинического испытания с открытой меткой (NCT03517085; Ultragenyx Pharmaceutical, Inc.). Полученные предварительные результаты от трех пациентов в группе снизкой дозой (2.0 х 10 12 vg/kg) продемонстрировали эффективность в среднем с 80% улучшением во время гипогликемического события вместе с 38% снижением ежедневного потребления кукурузного крахмала. 79 Использование AAV8 векторов, экспрессирующих человеческий G6PC в низкой дозе, было ассоциировано с подъемом alanine aminotransferase (ALT) у двух из трех пациентов. 79 Базируясь на полученных результатах клинического испытания с использованием AAV8 при гемофилии B, подъем ALT, наблюдаемый при испытании GSDIa, скорее всего, ассоциирован с иммунной реакцией на капсиду AAV вектора и может контролироваться кратким курсом кортикостероидов. 80 Однако, кинетика образования иммунной реакции у пациента 1, которому потребовалось два воздействия кортикостероидами на 8 и 20 неделе, может указывать на др. механизм по сравнению с испытанием при гемофилии B 80 Принимая во внимание демонстрацию эффективности и приемлемый профиль безопасности, Data Monitoring Committee осторожное позитивное решение о продолжении испытания с привлечением ещё двух пациентов с воздействием дозы 6.0 х 10 12 vg/kg.
AAV gene therapy for GSDIII
При GSDIII разработка подхода к AAV-базирующейся генотерапии была задержана из-за (1) сложности болезни, которая нуждается в одновременном воздействии на печень и мышцы, (2) отсутствия моделей на мелких животных и (3) размера трансгена, который очень близок к пределу упаковки в AAV геноме (~5 kb).
Собачья модель GSDIII описана в 2012. Эта модель обнаруживает обширное накоплене гликогена в печени и мышцах, вместе с печеночным цирозом и мышечным фиброзом со временем.81,82 Начиная с 2014, были описаны 4 мышиные модели GSDIII и все они воспроизводили характеристики GSDIII болезни человека с накопление гликогена в печени и мышцах, гипогликемией, нарушениями мышечной силы и непереносимостью упражнений.29,40,83,84 Доступность этих моделей сделала возможной разработку генотерапии, базирующейся на AAV векторе, для GSDIII. Использование рекомбинантной человеческой acid alpha-glucosidase (GAA) было предложено для очистки цитозольного гликогена, накапливающегося в GSDIII первичных миобластах.85 Сходным образом, лечение GSDIII мышей с помощью оптимизированного вектора, экспрессирующего секретируемый печенью GAA86 позволило снизить накопления гликогена в печени.40 Неожиданно, несмотря на высокие уровни фермента GAA в мышцах, не наблюдалось снижения накопления гликогена,40 , это указывает на иные механизмы, лежащие в основе деградации гликогена в печени и мышцах.
Одним из самых крупных препятствий в разработке подхода по AAV генотерапии для GSDIII является размер трансгена, который крупнее, чем способность энкапсуляции AAV вектора. Стратегия двух векторов была разработана, чтобы экспрессировать GDE в мышах и печени. Согласно этой стратегии последовательность GDE трансгена разделяется по двум разным векторам. Рекомбинация, зависит от перекрывающихся последовательностей GDE трансгена, присутствующих в обоих векторах. Использование промотора constitutive cytomegalovirus делает возможной эффективную реконструкцию полного размера последовательности GDE и последующую экспрессию трансгена в мышцах. Это было ассоциировано со снижением накопления гликогена в разных мышцах и с восстановлением мышечной силы. Интересно, что когда был использован печень-специфический промотор, то гликемия устранялась лишь частично и наблюдалась высокая вариабельность в экспрессии трансгена GDE. Пролиферация и дегенерация гепатоцитов, обусловленная развитием фиброза при GSDIII 29, может объяснить частичное устранение гликемии, несмотря на высокие дозы AAV векторов, используемых для целенаправленного воздействия на печень. 29,40
Alternative Gene Therapy Approaches Addressing the Limitations of AAV Gene Therapy
Генотерапия печени с помощью AAV векторов у новорожденных животных приводит к геномному разбавлению вектора и потере трансгена в результате роста печени, поскольку AAV вектор в геномах остается в огромном большинстве в неинтегрированной эписомной форме.45,46 У взрослых собак с гемофилией B, собачий коагуляционный Factor IX стабильно экспрессируется в течение более 10 лет.87 В клиническом испытании по гемофилии B, Nathwani et al. продемонстрировали стабильную экспрессию человеческого коагуляционного Фактора IX а течении 6 лет, указывая на отсутствие потери экспрессии трансгена в гепатоцитах.88 Важным преимуществом в случае гемофилии B является то, что лежащие в основе мутации лишь слегка нарушают функцию печени и гепатоцитов.
При GSDI и GSDIII, нарушения ферментативной функции приводят к модификации метаболизма гепатоцитов, что в конечном итоге приводит к усилению пролиферации, апоптоза и/или трансформации и гибели клеток.10,29 Усиление пролиферации и изнурение гепатоцитов, скорее всего, результат разбавления в геноме AAV вектора и потери экспрессии трансгена. В самом деле, повторное использование AAV векторов было необходимо, чтобы достичь стабильной коррекции гипогликемии у собак сGSDIa (Table 1) и коррекция гликемии снижалась со временем, если вектор применялся в ранней жизни (до 6 мес. возраста).67 Интегративные подходы, базирующиеся на лентивирусах51,52 или zinc finger (ZFN)-обусловленной целенаправленной интеграции,89,90 были разработаны на GSDIa мышах. Интересно, что интеграция G6PC трансгена с помощью лентивируса приводит к повышению трансдукции гепатоцитов между состояние новорожденности и 9 мес. после инъекции, приводя к ~20% экспрессии гепатоцитами G6PC и к предупреждению образования опухолей у печень-специфичных tG6pc-/- мышей.51 Однако, потенциальная генотоксичность интегративных подходов in vivo всё ещё не преодолена и особенно значима при печеночных GSDs, которые связаны с дегенерацией гепатоцитов и формированием HCA и HCC. Недавно получены данные по in vivo редактированию генома с помощью ZFN или CRISPR/Cas9, нацеленных на ROSA26 safe harbor локус, демонстрирующий специфическую интеграцию G6PC трансгена, что сопровождалось полным устранением гипоглкемии у G6pc-/- мышей.89-91
Др. потенциальный подход, обходящий как AAV персистенцию, так и потенциальную генотоксичность интегративных подходов, является использование синтетических мРНК, доставляемых с помощью klbgbloys[ наночастиц.92 Исследования по проверке концепции, осуществленные на печень-специфичных G6pc-/- мышах показали заметное улучшение при гликемии и гепатомегалии после одного применения комплекса мРНК-наночастицы, с учетом эффективной экспрессии G6Pase.55,93
Наконец, было предположено, что комбинационная терапия может улучшать функцию печени и снижать апоптоз, приводя к лучшей эффективности генотерапию В принципе, устранение дегенерации гепатоцитов может улучшать персистенцию трансгена и в конечном итоге приводить к долговременной коррекции печеночных проявлений GSDI и GSDIII после одиночной дозы AAV вектора. Напр., стратегии уменьшения субстрата были предприняты для устранения метаболических фенотипов при GSDIa и GSDIII. Малые интерферирующие РНК (siRNA), специфичные для печеночной изоформы glycogen synthase (Gys2) были разработаны для снижения синтеза гликогена и накопления его в печени. Долговременные воздействия с помощью Gys2-специфической siRNA предупреждают накопления гликогена в печени и устраняют гепатомегалию у мышиной модели GSDIII. 29 Сходным образом, у печень-специфических G6pc-/- мышей наблюдались снижение накопления гликогена и нормализация морфологии печени. 29 Т.о., хотя siRNA-обусловленное подавление Gys2 не устраняет гликемии, этот подход может рассматриваться в комбинации с генотерапией. Bezafibrate, pan-peroxisome proliferator-activated receptor agonist, как полагают, в комбинации с ZFN-обеспечиваемой целенаправленной интеграцией улучшает эффективность воздействия. 89 Воздействие Bezafibrate в комбинации с AAV gene therapy генотерапией улучшает жизнеспособность, снижает гликемию и гепатомегалию у G6pc-/- мышей. Благоприятный эффект наблюдается после воздействия bezafibrate, возможно благодаря индукции аутофгии, 94, ассоциированной с увеличением количества копий генома вектора и интеграции в гепатоцитах. 89 Это может быть связано с глобальным улучшением метаболизма в органах, подвергшихся воздействию, поскольку fenofibrate, аналог bezafibrate, как недавно сообщалось предупреждает разрушающую эволюцию болезни в печени и почках у печень- и почки-дефицитных G6pc-/- мышей, соотв.
14
Conclusions
In the past years, gene therapy reached maturity, moving from proof of concept to preclinical studies и clinical trials. New therapeutic approaches are being developed for a growing number of indications. However, current limitations of AAV-mediated gene transfer, in addition to those related to the immune response to the AAV product, include (1) the reduced persistence of vector genomes, in particular, in diseases with an underlying liver degeneration, (2) the potential genotoxicity of integrated genomes, и (3) the need of high vector doses to target nonpermissive tissues (Fig. 2). The hepatocyte degeneration observed in GSDI и GSDIII makes them an ideal test bench to develop novel approaches to overcome the actual gene therapy limitations in liver gene transfer. In addition to that, the need to treat a second tissue other than liver и the transgene size in GSDIII represents technical challenges for the available gene therapy tools. Hybrid promoters with dual tissue specificity,95 new capsids with enhanced targeting of both liver и muscle or kidney, и new strategies to increase dual vectors recombination96 may represent a potential solution.
Figure 2. AAV gene therapy challenges in hepatic glycogen storage diseases. Increased liver size (i.e., hepatomegaly) is a hallmark of hepatic GSDs. The liver function impairment may evolve in steatosis or fibrosis/cirrhosis и ultimately in the formation of HCA or HCC. (1) Increased hepatocytes proliferation may result in vector genome dilution и efficacy loss after AAV gene therapy. (2) Predisposition to tumor development may represent a risk for AAV gene transfer in GSDs. (3) The involvement of tissues other than liver in GSDs represents a further challenge for the development of gene therapy approaches. AAV, adeno-associated virus; GSDs, glycogen storage diseases; HCA, hepatocellular adenoma; HCC, hepatocellular carcinoma.
An emerging concept particularly adapted to the treatment of metabolic diseases is the combination of gene therapy with other therapeutic strategies. The 20-year-long experiences in gene therapy for GSDIa clearly indicate that the degeneration of hepatocytes affects the long-term efficacy of gene therapy. Pharmacological intervention or dietary regimen aimed at the amelioration of the liver impairment before the administration of gene therapy demonstrated improved efficacy in GSDI. The combination of specific dietary regimen with gene therapy has the potential to improve the outcome of the treatment by improving vector persistence и by delaying the long-term complications onset.
In conclusion, the experience accumulated with both small и large animal models of GSDI и GSDIII hints at new therapeutic strategies for metabolic diseases. Those models represent a unique opportunity to identify molecular targets to improve the efficacy of gene transfer in the liver. Although we cannot exclude the existence of disease-specific pathways, it is likely that at least some parts of the underlying mechanisms are shared among the different diseases with hepatocyte degeneration. Therefore, the improvement of gene therapy for GSDI и GSDIII represents a unique opportunity to devise novel approaches и ultimately provide safe и efficacious treatments for genetic metabolic diseases.
|