LIVER
ПЕЧЕНЬ


Печень взрослого человека состоит из 4-х долей, окруженных фиброзной соединительной тканью, называемой капсулов Glisson's. Гепатоциты выполняющие основную функцию печени составляют примерно 80% от всех клеток печени. Эти паренхимные клетки аранжированы в виде пластинок, разделенных синусоидными капилярами (sinusoids). Синусоиды выстланы эндотелиальными клетками и синусоидными макрофагами (Купфферовыми клетками), которые отделены от гепатоцитов пространством Диссе (Space of Disse). Фибробластные клетки, называемые клеткаи Ито (Ito)(lipocytes/stellate клетки) могут также обнаруживаться в Простарнствах Диссе, которые ответственны за хранение витамина А. Тесная аппозиция между синусоиданми и базальными поверхностями гепатоцитов облегчает обмен веществами между кровью и печеночными клетками. Кровь поступает в печень из печеночной портальной (воротной) вены и печеночной артерии и покидает ее через печеночную вену. В результате печень может кондиционировать кровь из кишечника и поджелудочной железы. Желчь собирается с помощью печеночных canaliculi, которые идут между гептоцитами. Каналикулы образуются апикальными поверхностями гепатоцитов в результате образоания соединительных комплексов, которые соединяют плазматические мембраны соприкасающихся гепатоцитов. Гепатоциты поляризованы, что важно для их функции. Желчные каналикулы сливаются и образуют желчные протоки, которые выстланы желчными эпителиальными клетками, которые отводят желчь в желчный пузырь.

Kenneth S. Zaret
REGULATORY PHASES OF EARLY LIVER DEVELOPMENT: PARADIGMS OF ORGANOGENESIS
Nature Reviews Genetics 3, 499 -512 (2002)


Выявлены определенные регуляторные ступени, необходимые для развития энтодермы в зачаток печеночной ткани, и затем в орган. Обсуждается приобретение компетентности экспрессии печень-специфических генов энтодермой, контроль раннего печеночного роста, координация печеночного и сосудистого развития и клеточная дифференцировка, необходимые для формирования функциональной печени.
Foxa транскрипционные факторы помогают приобрести компетентность в отношении активации печеночных генов в ходе развития путем связывания регуляторных последовательностей в предшественниках энтодермы и засчет открытия локальных доменов хроматина.
Fibroblast growth factors и bone morphogenetic proteins, которые секретируются различными типами мезодермальных клеток, индуцируют печеночную генетическую программу в энтодерме, в то же время они ингибируют панкреатическую программу.
Транскрипционные факторы Hex и Prox1 критические для формирующихся гепатобластов, они обеспечивают переход от энтодермального эпителия к неполяризованным, мигрирующим клеткам, которые пролиферируют более быстро и тем самым создают зачаток печени.
Экспансия зачатка печени в гематопоэтический орган во время плодного развития, нуждается в различных наборах ростовых сигналов, включая те, что происходят из мезенхимы поперечной перегородки (septum transversum) и из примитивных эндотелиальных клеток, которые окружают зачаток печени до формирования кровеносных сосудов.
Идентифицированы определенные транскрипционные каскады, которые способствуют дифференцировке гепатоцитов и клеток желчных протоков из ранних гепатобластов.
Транскрипционные факторы Hnf4 (hepatocyte nuclear factor-4) и C/EBPα (CCAAT/enhancer binding protein-α) способствуют терминалльной дифференцировке гепатоцитов по мере того как орган перестает быть местом гематопоэза и начинает контролировать уровень метаболитов и белков в крови во время перинатального периода.


Полный перевод данной статьи здесь


(Рис. 1.)
 |  Establishing the competence to express hepatic genes in development.


(Рис. 2.)
 |  Signals and tissue interactions that pattern the hepatic domain.


(Рис. 3.)
 |  Development of the liver bud.


(Рис. 4.)
 |  Transcriptional cascades that control the differentiation of hepatoblasts into hepatic lineages.

(Box.1) Formation and patterning of the endoderm

Гепатогенез осуществляется в несколько стадий: компетентность, детерминация, дифференцировка и морфогенез. Это тесно связанные, взаимозависимые и перекрывающиеся процессы. Начало гаструляции примерно 6.5 день у мышей дает 3 зародышевых слоя, включая образование дефинитивной эмбриональной энтодермы, из которой происходит клон гепатоцитов. Установлено, что у кур прекардиальная мезенхима можеи индуцировать эксплантанты вентральной энтодермы передней кишки в гепатоцито-подобные клетки. У мышей также инструктивная роль кардиальной мезодермы по печеночной спецификации начинается на 8.25 день эмбриогенеза (4-6 сомитов). FGF1 или FGF2 могут заменить инструктивные свойства кардиальной мезодермы.В результате индукции часть вентральной энтодермы специфицируется к адаптации печеночной судьбы и начинает пролиферировать. По мере пролиферации клетки покидают вентральную энтодерму передней кишки и принимают звездчато-образую морфологию. Это гепатобласты или прегепатоциты, они мигрируют и проникают в окружающую мезенхиму septum transversu. Возникает зачаток печени, который становится обнаружимым на Е9.5 у мышей. Гепатобласты способны давать как гепатоциты, так и клетки желчного эпителия.
Показано, что мезенхима необходима и для второго индуктивного события, которое дает ткань, гистологически напоминающую гепатоциты. Этот сигнал скорее пермиссивный, чем инструктивный, так как его источник не ограничивается мезенхимой поперечной перегородки. Возможно, что этот второй сигнал является паракринным взаимодействием прегепатоцитов с окружающим ВКМ, который как известно оказывает выраженное влияние на экспрессию генов в культивируемых первичных фетальных гепатоцитах. Экспрессия антисмысловой РНК, направленная на субъединицу α3 интегрина, блокирует ВКМ-индуцированную дифференцировку клеток Н2.35 в гепатоциты. Клетки с отсутствием β1-integrin гена неспособны колонизировать печень химерных мышей.
Итак, образуются печеночные пластинки, синусоиды и сложная сосудистая желчная сеть. Пре-гепатоциты в течение ранних стадий беременности остаются звездчатыми с большими нерегулярными ядрами и с относительно небольшим количеством органелл. Между 12 и 17 днем беременности пре-гепатоциты постепенно становятся кубовидными. Позднее они начинают формировать поляризованный эпителий. Во время этой последней стадии возникает сеть желчных каналикул и экспрессируются плотные соединения, промежуточные соединения и обнаруживаются клеточные адгезивные белки. По мере созревания гепатоциты начинают экспрессировать больше белков, связанных с нормальной печеночной функцией. Darlington (1999); Анализ передачи сигналов между кардиальной мезодермой и предшественниками гепатоцитов в энтодерме передней кишки показал, что FGF, по-видимому, является флагмaном, управляющим миграцией клеток и печеночной дифференцировкой. Предшественники гепатоцитов в противоположность другим типам клеток чувствительны к секретируемым FGF из кардиальной мезодермы. Частично специфичность реакции предопределяется hepatocyte nuclear factor (HNF). HNF3 белки активируют какскад транскрипционных факторов, включая HNF1 и HNF4, важных для функции печени. Получены иммортализованые мильтипотентные линии клеток мышей, спосолные дифференцироваться in vitro в гепатоциты или клетки желчных протоков.
FGF сигналы в ранних событиях развития печени
Эмбриональная передняя кишка, ко-культивируема с кардиальной мезодермой, обнаруживает печеночную спецификацию и дифференцировку, начинает экспрессировать альбумин и α fetoprotein (AFP). AFP активируется раньше альбумина на ст. 4-х сомитов. Активация альбумина корелирует в этих клетках с изменениями типов белков, которые связываются с областью альбуминового промотора, обладающего энхансерной активностью. Одна и та же область энхансера альбумина связвает различные транскрипционные факторы в двух тестируемых тканях (энтодерме кишки и головном мозге). В клетках печеночных предшественников обнаруживаются белки HNF3 и GATA, которые связаны с область энхансера альбумина, тогда как в головном мозге эти 2 области незаняты.
У нокаутных HNF3β мышей происходит эмбриональная гибель из-за неспособности формировать энтодерму и хорду. Делеция GATA у мышей также обусловливает эмбриональную гибель из-за нарушений морфогенеза вентральной части передней кишки. Соединение HNF3 и GATA с промотором альбумина происходит еще до морфологической идентификации печеночной ткани. В ходе дальнейшего развития альбуминовый ген экспрессируется и несколько других сайтов альбуминового энхансера также оказываются занятыми в дополнение к HNF3 и GATA.
Определены сигналы от кардиальной мезодермы. Ими оказались FGFs, продуцируемые локально кардиальной мезодермой и стимулирующие миграцию и дифференцировку печеночных предшественников. FGF1 или FGF2, но не FGF8 специфицируют активацию печеночных генов ( альбумина, AFP и transthyretin).


   Duncan, (2000)
Роль Нех во время коммитирования печеночной судьбы энтодермы
Факт, что кардиальная мезодерма индуцирует экспрессию характерных печеночных генов, таких как альбумин и альфа-фетопротеин, указывает на то, что экспрессия или активация транскрипционных факторов сопровождает это событие. Нех (hematopoietically expressed homeobox), известный также как Prh, является транскрипционным фактором семейства дивергентных гомеобоксных генов. Это один из самых ранних маркеров в передней эмбриональной энтодерме. Экспрессия hex обнаруживатеся на средней стадии первичной полоски в дефинитивной энтодерме, когда она мигрирует из этой полоски. Вскоре после этого hex мРНК обнаруживается в пред-печеночной вентральной энтодерме, окружающей передний кишечный портал. В этом отношениии экспрессия hex сходна с gata-4. Печень полностью отсутствует у hex-/- эмбрионов на 13.5 день. Установлено, что презумптивный печеночный дивертикул на Е9.5 сформирован, но мРНК альфа фетопротенина в нем не обнаруживается. На Е10.5 обнаруживается и миграция клеток из энтодермы, также не обнаруживающих альфа фетолпротеина.
HNF-3 и компетентность энтодермы адоптировать печеночную судьбу
Помимо печеночного поля вентральной энтодермы дорсальная энтодерма также компетентна следоватеь печеночному пути. Первые указания, что HNG-3 м. действовать как фактор компетентности получены благодаря обнаружению hnf-3α и 3β мРНК а денфинитивной энтодерме (Рис. 2)еще до начала печеночного развития. Их ранняя экспрессия обнаруживается как вентральной, так и дорсальной энтодерме. Энхансер альбумина, содержащий сайт для связывания hnf-3, необходим для экспрессии гена альбумина в гепатоцитах. В начале развития печени экспрессия мРНК альбумина ограничивется печеночной энтодермой. Показана на рис. 3, модель компетентности, согласно которой HNF-3 может метить регуляторные области молчащих "печеночных генов" потенциалом быть экспрессированными, если энтодерма встретит соответствующую среду развития.
Предполагается, что HNF-3 контролирует печеночную компетентость за счет модулирования структуры хроматина вокруг энхансеров генов, экспрессирующихся в развивающейся печени (риc. 3). Основной структурной единицей хроматина является нуклеосома, которая содержит 146 п.н. ДНК обернутой вокруг октамера гистоновых белков. Хроматин далее конденсируется за счет добавления линкерных гистоновых белков, которые связывают нуклеосомы в компактную хроматиновую структуру, которая в основном транскрипционно неактивна из-за блокады доступа транскипционным факторам. Реорганизация хроматина для усиления экспрессии генов может регулироваться несколькими способами. Ацетилирование гистонов изучено лучше всего. Коактиваторы гистоновой ацетилазы рекрутируются в регуляторные области путем взаимодействия со связанными транскрипционными факторами. Показано, что HNF-3 является таким фактором, его взаимодействие с нуклеосомной ДНК более устойчиво, чем со свободной ДНК. Более того он способен вызывать хроматином-обусловленную репрессии альфа-фетопротеина. Однажды связанный HNF3 управляет позиционированием нуклеосом внутри контекста альбуминового энхансера. Эффект репозиционирования нуклеосом способствует связыванию вторичного транскрипционного фактора GATA-4 с альбуминовым энхансером. Gata-4 мРНК экспрессируется в anterioe intestinal portal (AIP), куда входит и энтодерма печеночного поля. Сайт связывания gata-4 в альбуминовом энхансере является критическим для функции энхансера. Предполагается, что HNF-3 и GATA-4 кооперируют в контроле адаптирования энтодермой программы экспрессии печеночных генов. Мыши с отсутствием HNF-3β или GATA-4 имеют тяжелые нарушения морфогенеза передней кишки. Darlington (1999);
HNF3 белки регулируют HNF4
HNF3, участвующий в нуклеосомной организации альбуминового гена, оказывается регулирует также HNF4 промотор. В этом отношении HNF3α менее эффективный активатор, чем HNF3β. Обычно HNF3β экспрессируется перед HNF3α. Затем HNF3α начинает конкурентно снижать транскрипционную активность HNF3β.
Инсулин усиливает экспрессию HNF3β и ослабляет экспрессию HNF3α. Это ведет к усилению экспрессии HNF4 вместе с некоторыми другими печено-специфичными генами, чьи продукты важны для метаболизма глюкозы. HNF4 является членом семейства стероидныхгормональных рецепторов, его нокаут у мышей ведет к аномальному эмбриогенезу и гибели. У взрослых животных HNF4 экспрессируется в нескольких тканях, включая печень, почки, кишечник панкреатические островки. Созревание HNF4α отвечает за раннее начало диабета типа 2.


   Duncan, (2000)
HNF-4α необходим для завершения дифференцировки гепатоцитов
Детерминированные к печеночной судьбе клетки начинают дифференцироваться. Начинается постепенный переход к высоко специализированному типу клеток, экспрессирующему гены, контролирующие множественные аспекты метабаолизма, детоксификации и секреции сывороточных факторов. Дифференцирующиеся гепатоциты формируют поляризованный эпителий и взаимодействует с окружающими клетками для создания функциональной печеночной архитектуры.
Идентифицировано несколько гепатоцитарных ядерных транскрипционных факторов, действующих во взрослой печени. Сюда входят HNF-1α и β, c/EBP famioly, HNF-3α,-β, -γ, HNF-4α и HNF-6. неожиданным оказалось, что развитие печени в основном не нарушено у большинства из этих мутантов. У эмбрионов с отсутствием транскрипционного фактора HNF4α, члена ядерных гормональных рецепторов, нарушена экспрессия многих печеночных генов. Он активирует экспрессию HNF-1α, в котором найден соответствующй сайт для связывания HNF-4α в промоторе. Экспрессия HNF4α впервые обнаруживается в печеночном дживертикуле на ст Е8.5 (12 сомитов), это предшествует экспрессии HNF-1α. Эмбрионы мыши с отсутствием HNF4α неспособны заканчивать гаструляцию из-за дефектов висцеральной энтодермы. Установлено, что hnf-4α мРНК ограничивается экстраэмбриональной висцеральной энтодермой и не экспрессруется в плодных тканях до начала печеночного развития. С этим связано нарушения гаструляции. Это было преодолено на специальных химерах и как показано на рис.4, hnf-4&alpha-/-ES эмбрионы (Е12) образуют печень, морфологически неотличимую от контрольной. На этой стадии развития пре-гепатоциты начинают дифференцировку. Рис. 4е показывает состояние уровней мРНК 14 генов важных для функции гепатоцитов и которые сильно подавлены или необнаружимы в печени hnf-4α. Следовательно, HNF-4α ненужный на ранних стадиях необходим для плной дифференцировки гепатобластов в гепатоциты. 2 гена нуждаются в HNF-4α для нормальной экспрессии, кодирущие HNF-1α и pregnane-x-receptor (PXR).
Показано, что усиление экспрессии HNF-4α в дедифференцированных Н5 клетках гепатомы индуцирует экспрессию некоторых cytokeratin генов и E-cadherin. Эти трансфицированные клетки были компетентны затем формировать печеночный эпителий в культуре в ответ на воздействие дексаметазона. Очевидно, что HNF-4α необходим и для установления в клетках полярности внутри печеночной паренхимы.
Транскрипционные факторы играют важную роль в росте и морфогенезе печени
Дифференцировка гепатоцитов споровождается драматическим увеличением роста печени, что отражает высокую скорость деления клеток пре-гепатоцитов. Между Е13 и Е20 у крыс пре-гепатоциты проходят в среднем 8 удвоений, а печень увеличивается в объеме в 84 раза. Факторы роста, высвобождаемые мезенхимными клетками поперечной перегородки активируют пути передачи сигналов в гепатоцитах, которые индуцируют экспрессию или активируют АР-1 транскрипционный фактор. Цепь ээфектов активирует экспрессию генов, необходимых для обеспечения клеточного цикла и контролируют деления гепатоцитов. нарушение c-Jun, HGF (hepatocyte growth factor), cMet receptor, Hlx (a homeo box transcroption factor)? которые экспрессируются в пезенхиме развивающейся печени, SEK1 (mitogen-activated kinase kinase4, MKK4) и Xbp-1(X-box binding protein-1) вызывает печеночную гипоплазию. так, у Xbp-1-/- эмбрионов печень плодов на Е13.5 содержит только 15% клеток от нормы. Это связано с уменьшением скорости делений гепатоцитов, усилением апоптоза и снижением числа кровяных клеток.
Мутации в NF-kBp65 субъединице (Re1A), IkB Kinase 2 (IKKβ b NF-kB essential modulator (NEMO, IKKγ) которые являются компонентами NF-kB сигнального пути, обусловливают тяжелые нарушения гепатогенеза. У этих мутантов печень развивается нормально вплоть до сeредины беременности (более 12.5 дней развития). Печень подвергается дегенерации в результате апоптоза гепатоцитов и эмбрионы вскоре погибают. Рис. 5 иллюстрирует аспекты NF-kB пути передачи сигнлов, которые вызывают данный фенотип. В покоящихся клетках NF-kB транскрипционный фактор остается неактивным в цитоплазме связанным с белком, называемым IkB. В ответ на многие разные внеклеточные лиганды IkB фосфорилируется с помощью IkB киназы, что обусловливает его ассоциацию от NF-kB. Это позволяет ему транслоцироваться в ядро, где он активирует экспрессию разлиыных генов. Он вызывает различные реакции в том числе и анти-апоптическую акивность. Роль NF-kB во время развития печени заключается в специфической защите развивающихся гепатоцитов от TNFα-индуцируюемого апоптоза. В дифференцирующихся гепатоцитах TNFα сигналы через TNFR1 (TNF-receptor 1) активирует как апоптическую программу, так и NF-kB, противодействующую апоптозу. Апоптоз играет важную роль в поддержании оборота гепатоцитов во взрослой печени. Мутация fas, которая обусловливает обычно Fsa лигандом-индуцируемый апоптоз, вызывает гиперплазибю печени в результате накопления старых гепатоцитов. Darlington (1999);
Культивируемые гепатомы и иммортализованные гепатоциты выявляют каскад транскрипционных факторов
В Н5 клетках гепатомы крыс, в которых отсутствует экспрессия печень-специфических генов, трансфекция HNF4 активирует ген HNF1 и некоторые нижестоящие печень-специфичные мишени. В Н5 клетках однако присутствуют такие печеночные факторы как C/EBPα и HNF3. Это указывает на то, что печень-специфические гены регулируются комбинациями транскрипционных факторов. Для печеночной функции необходимы помимо C/EBPα и HNF3β и HNF4 и/или HNF1.
Получены множественные клональные линии из сМЕТ трансгенной печени. Из них полуыена иммортальная линия, не обнаруживающая экспресси и HNF4 и HNF1. При росте на Matrigel palmate клетки принимали эпителиальную морфологию и экспрессировали эпителиальные маркеры ZO1 и Е-кадхерин, а также печеночные маркеры HNF4 и HNF1. Это указывает на роль внеклеточного матрикса в печеночной дифференцировке.
Новый протеолитический механизм генерации C/EBPβ изоформ
Белки семейства C/EBP связываются с ДНК как гомодимеры и гетеродимеры. С-терминальный домен всех C/EBP белков обладают способносью к димеризации, а трансактивационная активность располагается на N-конце. ДНК-связывающий домен расположен между двумя функциональными элментами C/EBPα и C/EPBβ, оба экспрессируются в печени. C/EBPα важный активатор некоторых печеночных генов, тогда как C/EBPβ важен для регенерации печени и является позитивным регулятором глюконеогенеза путем активации гена фосфоенолпируват карбоксикиназы. Ни один из генов не содержит итронов Множественные белковые изоформы, по-видимому, результат наличия нескольких внутренних точек старта трансляции.
Среди белковых изоформ C/EBPβ liver enriched inhibytory protein (LIP) форма, у которой отсутствует N-концевой домен трансактивации. LIP (21 кДа)действует как доминантная негативная молекула, димеризуясь с C/EBPβ полной длины (35 кДа) снижает способность к активации транскрипции. LIP димеризуется и с др. С/ЕВР белками. LIP возникает в результате ribosome scanning ( с использованием альтернативного стартового сайта). В печени новорожденных обнаружен и другой механизм, протеолитического расщепления. Эта протеолитическая активность обусловлена calpain, экспрессия которого зависит от C/EBPα.
Установлено, что клетки костного мозга крыс обладают потенциалом развиваться в овальные клетки (предшественники гепатоцитов и клеток желчных протоков), и гепатоциты. Этот путь м.б. совсем отличным от обычного. Тем не менее эти клетки м.б. использованы в качестве донорских при тирозинемии.


Сайт создан в системе uCoz